background image

Wydział Chemiczny Politechniki Gda

ń

skiej 

Katedra Technologii Leków i Biochemii 

 

 

Kultury tkankowe i komórkowe ro

ś

lin i zwierz

ą

 
 

Mikrorozmna

Ŝ

anie ro

ś

lin prowadzonych w kulturach in vitro 

 
 

Wst

ę

p. 

 

Mikrorozmna

Ŝ

anie  jest  metod

ą

  rozmna

Ŝ

ania  wegetatywnego  w  kulturze  

in vitro, u

Ŝ

ywan

ą

 do masowego mno

Ŝ

enia ro

ś

lin na skal

ę

 produkcyjn

ą

. Dynamicznie 

rosn

ą

ce 

komercyjne 

znaczenie 

tej 

gał

ę

zi 

produkcji 

ro

ś

linnej 

znajduje 

odzwierciedlenie w jej współczesnej nazwie: przemysł in vitro (ang. in vitro industry, 
the micropropagation industry).  

Metoda  kultury  in  vitro  była  doskonalona  od  pocz

ą

tku  XX  wieku,  

lecz rozmna

Ŝ

anie ro

ś

lin na skal

ę

 produkcyjn

ą

 z jej zastosowaniem stało si

ę

 mo

Ŝ

liwe 

dopiero  od  1965  roku,  kiedy  to  Murashige  w  USA  opracował  sposób  klonalnego 
rozmna

Ŝ

ania storczyków. Metod

ę

 t

ę

 zaadoptowano do rozmna

Ŝ

ania innych wa

Ŝ

nych 

gospodarczo ro

ś

lin, głównie ozdobnych i sadowniczych. Obecnie jest ona najszerzej 

wykorzystywan

ą

 technik

ą

 w biotechnologii. Znalazła zastosowanie przede wszystkim 

w  produkcji  takich  ro

ś

lin,  które  trudno  rozmna

Ŝ

aj

ą

  si

ę

  wegetatywnie  za  pomoc

ą

 

metod  tradycyjnych  (ro

ś

liny  ozdobne,  drzewa  le

ś

ne,  odmiany  heterozygotyczne), 

oraz  ro

ś

lin  elitarnych,  o  du

Ŝ

ej  warto

ś

ci  jednostkowej.  Tylko  w  niewielkim  stopniu 

słu

Ŝ

y  ona  dotychczas  w  rozmna

Ŝ

aniu  ro

ś

lin  rolniczych  (ziemniaków,  zbó

Ŝ

,  ro

ś

lin 

tropikalnych.  Mikrorozmna

Ŝ

anie  mo

Ŝ

na  te

Ŝ

  wykorzysta

ć

  do  rozmna

Ŝ

ania  form 

poliploidalnych  czy  aneuploidalnych,  których  rozmna

Ŝ

anie  generatywne  daje 

niejednolite potomstwo). 

Liczba  gatunków  rozmna

Ŝ

anych  za  pomoc

ą

  kultury  in  vitro  wynosi  obecnie 

około  300,  natomiast  na 

ś

wiecie  produkuje  si

ę

  za  pomoc

ą

  kultury  in  vitro  około  

800  mln  sztuk  ro

ś

lin,  z  czego  90%  stanowi

ą

  ro

ś

liny  ozdobne.  Ocenia  si

ę

,  

Ŝ

e  produkcja  europejska  wynosi  około  200  mln  sztuk  rocznie,  a  najwa

Ŝ

niejszym 

producentem  europejskim  jest  Holandia  (62  mln  sztuk  rocznie),  nast

ę

pnie  Francja, 

Polska,  Włochy  i  Niemcy.  Oprócz  krajów  europejskich,  czołowymi  producentami 
ro

ś

lin w laboratoriach in vitro s

ą

 USA (110 mln szt.) i Indie (130 mln szt.). W krajach 

tych  głównym  produktem  mikrorozmna

Ŝ

ania  s

ą

  ozdobne  ro

ś

liny  doniczkowe  

o dekoracyjnym ulistnieniu, a tak

Ŝ

e ro

ś

liny wa

Ŝ

ne gospodarczo np. ziemniaki, byliny, 

ro

ś

liny przyprawowe.  

W  Polsce  działa  obecnie  około  20  laboratoriów  zajmuj

ą

cych  si

ę

 

mikrorozmna

Ŝ

aniem,  głównie  ro

ś

lin  ozdobnych  (gerbera,  ró

Ŝ

anecznik,  azalia, 

storczyk,  fikus,  lilia,  chryzantema,  gloksynia,  go

ź

dzik,  papro

ć

,  primula),  a  tak

Ŝ

borówki wysokiej, truskawki, 

Ŝ

urawiny i je

Ŝ

yny.  

Krajowa  produkcja  sadzonek  in  vitro  jest  jedn

ą

  z  najwi

ę

kszych  w  Europie  i 

szacunkowo  wynosi  około  70  –  100  mln  sztuk  na  rok.  Zaspokaja  ona  potrzeby 
rynkowe  naszego  kraju,  ale  w  wi

ę

kszo

ś

ci  jest  eksportowana  do  Holandii,  Anglii, 

Izraela,  W

ę

gier,  Czech,  Białorusi,  Bułgarii,  Turcji,  USA  oraz  na  Ukrain

ę

,  Litw

ę

  i 

Łotw

ę

.  

background image

Laboratoria  włoskie  dostarczaj

ą

  na  rynek  około  20  mln  sztuk  ro

ś

lin 

sadowniczych,  szczególnie  winoro

ś

li  i  brzoskwi

ń

.  Laboratoria  belgijskie  specjalizuj

ą

 

si

ę

 w produkcji ozdobnych ro

ś

lin drzewiastych (Rhododendron). 

   
Rozmna

Ŝ

anie  wegetatywne  ro

ś

lin  w  kulturach  in  vitro  mo

Ŝ

na  prowadzi

ć

  w 

oparciu o: 

a)  pobudzanie rozwoju p

ą

ków bocznych (metoda najlepiej poznana) 

b)  formowanie p

ą

ków przybyszowych bezpo

ś

rednio lub po

ś

rednio przez kalus 

c)  embriogenez

ę

 somatyczn

ą

 

 
Embriogeneza  somatyczna  to  proces  biologiczny,  podczas  którego  w 

warunkach in vitro formuj

ą

 si

ę

 zarodki z komórek wegetatywnych. Otrzymane w ten 

sposób zarodki mog

ą

 posłu

Ŝ

y

ć

 do produkcji sztucznych nasion.  

Sztuczne  nasiona  to  specjalnie  spreparowane  zarodki  somatyczne  (komórki 
somatyczne,  zacz

ą

tki  ro

ś

liny)  zdolne  do  regeneracji  na  skal

ę

  komercyjn

ą

umieszczone w osłonce ochronno – od

Ŝ

ywczej.  

 

Sposób prowadzenia kultury

 
 

Bardzo  istotne  znaczenie  w  procesie  mikrorozmna

Ŝ

ania  ro

ś

lin  ma  skład 

po

Ŝ

ywki (głównie zawarto

ść

 hormonów) oraz jej rodzaj (stała czy płynna). Najcz

ęś

ciej 

stosuje  si

ę

  po

Ŝ

ywk

ę

  według  Murashige’a  i  Skooga  (1962)  lub  jej  modyfikacj

ę

rzadziej po

Ŝ

ywk

ę

 B

5

 według Gamborga i in. (1968).  

 

 

W procesie mikrorozmna

Ŝ

ania mo

Ŝ

na wyró

Ŝ

ni

ć

 nast

ę

puj

ą

ce etapy: 

1.  zało

Ŝ

enie kultury – obejmuje wyło

Ŝ

enie sterylnych eksplantatów pierwotnych 

na po

Ŝ

ywk

ę

 stymuluj

ą

c

ą

 wytwarzanie p

ą

ków lub cebulek przybyszowych. 

2.  namna

Ŝ

anie – najcz

ęś

ciej prowadzi si

ę

 na po

Ŝ

ywkach z wysok

ą

 zawarto

ś

ci

ą

 

cytokinin indukuj

ą

cych tworzenie nowych p

ę

dów (mikrocebulek). Wytworzone 

p

ę

dy mog

ą

 by

ć

 ponownie wykładane na tak

ą

 sam

ą

 po

Ŝ

ywk

ę

, gdzie proces ten 

si

ę

 powtarza. Subkultur

ę

 najcz

ęś

ciej zakłada si

ę

 co 4 tygodnie i przeprowadza 

od 10 do 15 razy.  

3.  ukorzenianie  p

ę

dów  –  przeprowadza  si

ę

  w  zale

Ŝ

no

ś

ci  od  gatunku  ro

ś

liny 

zarówno in vitro, jak i in vivo. Stosuje si

ę

 cz

ę

sto po

Ŝ

ywki z wysokim st

ęŜ

eniem 

auksyn,  obni

Ŝ

on

ą

  zawarto

ś

ci

ą

  soli  mineralnych  oraz  dodatkiem  w

ę

gla 

aktywnego.  

 
Celem  mikrorozmna

Ŝ

ania  jest  uzyskanie  du

Ŝ

ej  liczby  genetycznie 

jednolitych ro

ś

lin. W trakcie trwania kultury in vitro mo

Ŝ

e by

ć

 zachowana stabilno

ść

 

genetyczna  materiału  ro

ś

linnego  lub  mo

Ŝ

e  wyst

ą

pi

ć

  spontaniczna  zmienno

ść

  (tzw. 

zmienno

ść

 somaklonalna), w wyniku której regenerowane ro

ś

liny mog

ą

 wykazywa

ć

na pewien czas lub na trwałe, inne cechy ni

Ŝ

 wyj

ś

ciowy materiał rodzicielski.  

W mikrorozmna

Ŝ

aniu zmienno

ść

 jest wad

ą

, ale stwierdzono, 

Ŝ

e mo

Ŝ

e ona by

ć

 

nowym 

ź

ródłem  zmienno

ś

ci  genetycznej  mo

Ŝ

liwym  do  wykorzystania  w  hodowli 

twórczej.  Zmienno

ść

  somaklonalna  pozwala  znacznie  poszerzy

ć

  zakres  zmienno

ś

ci 

genetycznej  ro

ś

lin  uprawnych,  co  jest  szczególnie  wa

Ŝ

ne  przy  ograniczonej  puli 

genowej  lub  w  przypadku  gatunków  u

Ŝ

ytkowych,  które  utraciły  zdolno

ść

  do 

rozmna

Ŝ

ania  generatywnego.  Zmiany  w  kulturach    in  vitro  mog

ą

  dotyczy

ć

  tak

Ŝ

takich  wła

ś

ciwo

ś

ci  ro

ś

lin,  których  nie  mo

Ŝ

na  osi

ą

gn

ąć

  na  drodze  konwencjonalnej. 

background image

Zalet

ą

  zmienno

ś

ci  somaklonalnej  jest  tak

Ŝ

e  mo

Ŝ

liwo

ść

  uzyskania  ro

ś

lin  ró

Ŝ

ni

ą

cych 

si

ę

 tylko jedn

ą

 cech

ą

 przy zachowaniu innych cech odmianowych. Jej wykorzystanie 

jest równie

Ŝ

 ta

ń

sz

ą

 od innych metod

ą

 manipulacji genetycznej.  

 

 
Zalety i wady mikrorozmna

Ŝ

ania

 

 

Podstawow

ą

 zalet

ą

 stosowania tej techniki jest mo

Ŝ

liwo

ść

 uzyskania w krótkim 

czasie  bardzo  du

Ŝ

ej  ilo

ś

ci  ro

ś

linek  z  materiału  wyj

ś

ciowego.  Liczba  namno

Ŝ

onych 

ro

ś

linek  zale

Ŝ

y  od  odmiany,  rodzaju  eksplantatu,  warunków  fizycznych  kultury, 

składu po

Ŝ

ywki oraz liczby przeprowadzonych subkultur. Np. teoretyczna wydajno

ść

 

namna

Ŝ

ania  ze 

ś

redniej  wielko

ś

ci  cebuli  w  kulturze  wytrz

ą

sanej  wynosi  2000 

mikrocebulek w ci

ą

gu 45 dni. 

 

Stosowanie  do  mikrorozmna

Ŝ

ania  kultur  merysystemów  wierzchołkowych 

stwarza  mo

Ŝ

liwo

ść

  uwalniania  materiału  hodowlanego  od  wirusów  i  innych 

patogenów.  Im  mniejszy  jest  izolowany  merystem  (0,5  do  1  mm),  tym  wi

ę

ksza 

skuteczno

ść

 eliminacji wirusa. W celu zwi

ę

kszenia prawdopodobie

ń

stwa otrzymania 

zdrowych  ro

ś

lin  stosuje  si

ę

  cz

ę

sto  kultur

ę

  merysytemów  ł

ą

cznie  z  termoterapi

ą

  

lub chemoterapi

ą

.  

 

Inn

ą

  korzy

ś

ci

ą

  stosowania  tej  techniki  jest  mo

Ŝ

liwo

ść

  przechowywania 

zregenerowanych  ro

ś

linek  przez  kilka  miesi

ę

cy  w  obni

Ŝ

onej  temperaturze.  Pozwala 

to  na  spokojn

ą

,  rozło

Ŝ

on

ą

  w  czasie  produkcj

ę

  in  vitro  i  wysadzanie  ro

ś

lin  

w optymalnym terminie. Stosuje si

ę

 równie

Ŝ

 długoterminowe przechowywanie in vitro 

merysystemów lub p

ę

dów przez okres 2-5 lat w banku genów.  

 

Kolejn

ą

  zalet

ą

  mikrorozmna

Ŝ

ania  jest  łatwy  transport  rozmno

Ŝ

onego 

materiału.  Szacunkowo  około  40  000  ro

ś

linek  mo

Ŝ

na  umie

ś

ci

ć

  w  paczce  wa

Ŝą

cej  

15 kg. Ułatwia to transport i mi

ę

dzynarodow

ą

 wymian

ę

 materiału ro

ś

linnego.  

 

 

Trudno

ś

ci, z jakimi spotyka si

ę

 w trakcie mikrorozmna

Ŝ

ania: 

a)  bakteryjne i grzybowe ska

Ŝ

enie eksplantatów pierwotnych; 

b)  witryfikacja (zeszklenie) zregenerowanych ro

ś

lin; 

c)  trudno

ś

ci ukorzeniania i adaptacji do warunków normalnej uprawy; 

d)  wyst

ę

powanie niekorzystnych fizjologicznych modyfikacji w

ś

ród namno

Ŝ

onych 

ro

ś

lin  (np.  słaby  wigor  tych  ro

ś

lin,  słaby  rozwój  systemu  korzeniowego, 

opó

ź

nienie kwitnienia). 

 

Cz

ęść

 praktyczna. 

 

 

Celem 

ć

wiczenia  jest  mikrorozmna

Ŝ

anie  ro

ś

lin,  pochodz

ą

cych  z  hodowli  

in 

vitro 

zało

Ŝ

onych 

przez 

studentów 

na 

wcze

ś

niejszym 

laboratorium.  

Do  mikrorozmna

Ŝ

ania  wykorzystane  zostan

ą

  merystemy  wierzchołka  p

ę

du  

i fragmenty łodygi.   
 

 
 

background image

Materiał ro

ś

linny

3 mm eksplantaty wierzchołkowe dowolnej ro

ś

liny 

1 – 3 mm fragmenty łodygi 
 
Materiały sterylne
Płytki Petriego 
Penseta, skalpel  
Po

Ŝ

ywka MS bez hormonów 

Po

Ŝ

ywka MS zawieraj

ą

ca auksyn

ę

 (NAA – kwas naftalenooctowy, 0.1 mg/l)  

oraz cytokinin

ę

 (BAP – 6 –benzyloaminopuryn

ę

, 0.5 mg/l), pH 5.8 

 
Wykonanie 

ć

wiczenia

 

Ć

wiczenie  wykonuje  si

ę

  pod  wyci

ą

giem  laminarnym  z  nawiewem  sterylnego 

powietrza. 
 

1.  Za  pomoc

ą

  sterylnej  pensety,  dobrze  opalonej  w  płomieniu  palnika,  wyj

ąć

 

ro

ś

lin

ę

 ze słoika i umie

ś

ci

ć

 j

ą

 na płytce Petriego. 

2.  Odci

ąć

  przy  pomocy  skalpela  około  3  mm  merystem  wierzchołkowy  

oraz 1- 3 mm fragment łodygi, a reszt

ę

 ro

ś

liny umie

ś

ci

ć

 z powrotem w słoiku. 

3.  U

Ŝ

ywaj

ą

c  dobrze  opalonej  pensety  wyło

Ŝ

y

ć

  pobrane  eksplantaty  pierwotne  

na  po

Ŝ

ywk

ę

  MS:  merystem  wierzchołkowy  na  po

Ŝ

ywk

ę

  MS  bez  hormonów,  

a fragment łodygi na po

Ŝ

ywk

ę

 MS z hormonami. 

4.  Słoiki  zabezpieczy

ć

  dodatkowo  parafilmem,  dobrze  opisa

ć

  i  umie

ś

ci

ć

  

w fitotronie na około 8 tygodni.  

5.  Obserwowa

ć

  wygl

ą

d  ro

ś

lin,  liczb

ę

  ro

ś

lin  uzyskanych  z  eksplantatu,  szybko

ść

 

powi

ę

kszania si

ę

 hodowli. 

 
 

Przygotowanie sprawozdania. 

1.  Opisa

ć

 sposób wykonania 

ć

wiczenia. 

2.  Rola jednego dowolnie wybranego fitohormonu we wzro

ś

cie i rozwoju ro

ś

lin.  

3.  Wymieni

ć

  znane  (poza  mikrorozmna

Ŝ

aniem)  rodzaje  kultur  in  vitro.  Opisa

ć

 

któr

ąś

 z nich.  

4.  Opisa

ć

 sposoby uwalniania ro

ś

lin od patogenów. 

 
Literatura uzupełniaj

ą

ca: 

1.  Biotechnologia ro

ś

lin. S. Malepszy, PWN 2004. 

2.  Wprowadzenie do biotechnologii w genetyce i hodowli ro

ś

lin. Praca zbiorowa 

pod  kierownictwem  S.  Malepszego,  Wydawnictwo  SGGW-AR,  Warszawa 
1990. 

3. 

www.horticentre.pl

 - Skierniewicki Portal Ogrodniczy