Izolacja limfocytów ze śledziony:
Ułożyć mysz na prawym boku.
Odkazić skórę etanolem.
Naciąć a następnie odciągnąć skórę.
Przeciąć otrzewnę i uwidocznić śledzionę.
Wyciąć śledzionę (nożyczki i pęsetka).
Umieścić śledzionę na szalce Petrie’go z 10% MEM.
„Wyczesać” śledzionę igłą preparacyjną lub nożyczkami.
Zebrać płyn (z limfocytami) do probówki.
Odstawić zawiesinę na 15 min. w celu oddzielenia się większych fragmentów tkanki.
Zebrać klarowny płyn do probówek.
Wirować – 1500 rpm przez 5 min.
Zlać supernatant.
Osad komórek zawiesić w 0,5-1ml 10% MEM.
Określenie żywotność limfocytów:
Poprać próbkę zawiesiny komórek i rozcieńczyć 1:10 w PBS .
Dodać 4 krople 0,1% wodnego roztworu błękitu trypanu.
Kroplę zabarwionej zawiesiny nanieść na szkiełko podstawowe i nakryć szkiełkiem
nakrywkowym.
Policzyć 100 komórek, określając jaki procent komórek zabarwił się koloidowym
barwnikiem (są to komórki martwe).
Wynik wyrazić w procencie żywych komórek.