RoslinyModelowe

background image

Biologia molekularna roślin

Rośliny modelowe

background image

Specyfika roślin: co je wyróżnia spośród innych

organizmów?

background image

Specyfika roślin: biologia komórki

fotosyneza

• Rośliny są

fotoautotrofami

– ta cecha wyróżnia je

najbardziej; komórki roślin zawierają chloroplasty (plastydy)
umożliwiające fotosyntezę.

• Plastydy zawierają własne

genomy

determinujące ważne

cechy, przede wszystkim związane z fotosyntezą

• Genomy plastydów współpracują z genomem jądrowym (

ko-

ewolucja genomów

)

background image

Komórki roślin i komórki zwierząt zasadniczo się

różnią

background image

Specyfika roślin: biologia komórki

ograniczenia rozwoju wynikające z występowania

ściany

komórkowej

• Komórki roślin są ograniczone celulozowymi ścianami

zewnętrznymi.

• W przeciwieństwie do zwierząt (sztywna forma przestrzenna =

szkielet zewnętrzny lub wewnętrzny + mięśnie + wypełniająca

tkanka łączna) sztywna forma roślin wynika z turgoru, obecności

ścian komórkowych i substancji nierozpuszczalnych, np lignin.

• Rośliny naczyniowe, podobnie jak zwierzęta, mają system krążenia

umożliwiający rozprowadzania substancji pokarmowych i usuwanie

zbędnych produktów przemiany materii. (Właściwości takich nie

mają grzyby, dlatego ich rozmiar podlega silnym ograniczeniom).

• Ściana komórkowa roślin stwarza ograniczenie dla dyfuzji. Wielkość

porów w ścianie (3,5-5,2 nm) silnie ogranicza ruch cząsteczek o

masie powyżej 15Kd. W celu komunikacji międzykomórkowej

rośliny muszą w większym stopniu niż zwierzęta polegać na

związkach drobno cząsteczkowych.

background image

System krążenia u roślin

• Łyko (floem) przewodzi

organiczne substancje
pokarmowe;

struktura: żywe

rurki sitowe

• Drewno (ksylem) rozprowadza

wodę i sole mineralne;

struktura: martwe naczynia

background image

Różne rozwiązania systemu krążenia u roślin naczyniowych

- korzenie jedno- i dwuliściennych

Łyko (floem) przewodzi

organiczne substancje

pokarmowe

Drewno (ksylem) rozprowadza

wodę i sole mineralne

Dwuliścienne

Jednoliścienne

background image

Specyfika roślin: sposoby integracji organizmu;

komunikacja międzykomórkowa

• Występowanie

plazmodesmów

powoduje, że roślina nie jest

zbiorem indywidualnych komórek, lecz obejmującym cały
organizm połączonym obszarem, tzw.

symplastem

, w

którym komórki mogą się z sobą komunikować za pomocą
sygnałów chemicznych.

• Apoplast

jest połączonym obszarem na zewnątrz symplastu.

• Ruch cząsteczek przez plazmodesmy jest ściśle

kontrolowany

.

background image

Ruch cząsteczek w apoplaście podlega prawom

chemii i fizyki

Symplast

background image

Ruch cząsteczek w symplaście podlega także

prawom biologii

background image

Większość objętości komórki zajmuje wakuola

• Wakuola = 50-95% obj.

komórki

• Wielkość komórki nie zależy

od zwiększania ilości

cytoplazmy (biosyntezy

makrocząsteczek) i nie

wiąże się z obniżeniem

szybkości dyfuzji w komórce

• Ważne dla: przewodzenia

sygnałów od błony do jądra,

syntezy i transportu białek,

syntezy błon, ruchów

cytoplazmy, wyrównywanie

stężeń substancji

pokarmowych i gazów

Komórka
Zwierzęca

Wakuola

background image

Merystemy (linia zarodkowa)

• Zwierzęta –

wyspecjalizowane

tkanki zarodkowe

(spermatogonia,

oogonia), różnicują z

komórek

somatycznych we

wczesnej

embriogenezie,

izolowane od presji

selekcyjnej

• Rośliny kwiatowe –

znaczną część

niezróżnicowanej tkanki

stanowi

merystem

,

tkanka zdolna do

wzrostu wegetatywnego

i różnicowania (na ogół

pod wpływem

specyficznych bodźców

ze środowiska, jak

długość dnia) w organy

generatywne, które

następnie wytwarzają

komórki zarodkowe

(pokolenie

gametofitowe)

background image

Pokolenie gametofitowe i sporofitowe

• Zwierzęta – końcowe

produkty mejozy

(spermatydy i kom. jajowe)

są w większości

nieaktywne metabolicznie,

po dojrzeniu ekspresja

genów ustaje. Komórki

jajowe zwierząt mają

wystarczające zapasy

mRNA i rRNA na kilka

podziałów po-zygotycznych

(po zapłodnieniu )

• Rośliny kwiatowe maja

dwuetapowy cykl życiowy.

• Diploidalne stadium

sporofitu i haploidalne

stadium gametofitu:

żeńskiego (komórka

macierzysta magaspory (2N)

– megaspora (1N) –

megagametofit – kom.

jajowa) i męskiego (komórka

macierzysta mikrospory (2N)

– mikrospora (1N) – ziarno

pyłku – gameta męska)

Komórki gametofitów

roślin przechodzą szereg

podziałów komórkowych

w stadium 1N, w trakcie

których prowadzą

aktywny metabolizm!

background image

Cykl życiowy roślin kwiatowych

background image

Konsekwencje

• U zwierząt

recesywne allele letalne

przenoszone są do

zygoty, heterozygotyczność uniemożliwia selekcję
przeciwko tym allelom.

• U roślin, większość recesywnych alleli letalnych (np dot.

szlaków metabolicznych, kontroli cyklu komórkowego) jest
eliminowana podczas gametofitowego pokolenia
haploidalnego.

• Z gamet roślinnych można wyprowadzać pokolenie

haploidalne (u niektórych gatunków)

background image

Totipotencja (zdolność komórek do różnicowania)

• U zwierząt komórki

somatyczne przechodzą na
ogół końcowe różnicowanie
już we wczesnym rozwoju i
mogą podlegać
rearanżacjom mat.
genetycznego, eliminującego
totipotencję, np. selektywna
utrata chromosomów
(bezkręgowce), selektywna
politenizacja części
chromosomów, somatyczna
amplifikacja genów rRNA,
rearanżacja genów
immunoglobulin

• Komórki somatyczne roślin

zachowują totipotencję w
ciągu całego życia rośliny.

• Nie dysponują zatem

systemem regulacji
genetycznej (końcowe
różnicowanie, rearanżacje
mat. genetycznego).

• Stwarzają wyjątkowo

wygodny system do
uzyskiwania organizmów
zmodyfikowanych
genetycznie (nauka,
technologia)

background image

System ontogenezy (rozwoju organizmu)

• U zwierząt, w trakcie

embriogenezy komórki
migrują.

• Komórki w zarodku roślin

są ograniczone ścianami
kom. i pozostają stale w
tym samym miejscu

• Różnicowanie u roślin

dokonuje się bez migracji
komórek

.

• Zasadnicza różnica w

systemach ontogenezy:
Implikacje ewolucyjne

background image

Zamknięty i otwarty program rozwojowy

background image

Programy rozwoju:

zdeterminowany

vs.

ciągły

• U zwierząt program

różnicowania doprowadza
do formy ostatecznej
tkanki lub narządu i kończy
się (nieodwracalność
różnicowania).

• Program rozwoju można

uważać za
zdeterminowany i
kompletny plan budowy
organizmu.

• Totipotencji komórek roślin

towarzyszy brak stadium
końcowego zróżnicowania.

• U roślin program

różnicowania i rozwoju w
trakcie życia ma charakter
ciągły (przechodzi wiele
następujących po sobie,
powtarzających się cykli –
zwykle w odpowiedzi na
bodźce ze środowiska.)

• Plan budowy roślin jest

odbiciem powtarzania
programów rozwojowych
(węzły, merystemy kwiatowe)

background image

Wzrost wegetatywny i wzrost generatywny

• U zwierząt różnicowanie

linii komórek płciowych i
wykształcenie narządów
płciowych dokonuje się we
wczesnej fazie rozwoju.

• U roślin kwiatowych

sporofit rośnie przez

dłuższą część cyklu

życiowego

wegetatywnie.

Przełączenie z wzrostu

wegetatywnego na

generatywny zachodzi

późno, pod wpływem

bodźców środowiska.

• Organy generatywne

powstają w trakcie

kwitnienia.

background image

Kwitnienie

background image

U roślin podział komórkowy nie jest niezbędny do

nabycia przez komórki nowej specjalizacji

• U zwierząt, podział

komórkowy jest niezbędny
do różnicowania

• U roślin, komórki miękiszu

mogą różnicować w
komórki przewodzące
wodę poprzez rozkład
cytoplazmy i wakuoli i
zgrubienie ścian
komórkowych.

background image

Arabidopsis thaliana – organizm modelowy w

biologii roślin

• Mały jednoroczny chwast z

rodziny Brassicaceae
(krzyżowe); 15-20 cm
wysokości, nasiona dł. 0,5
mm.

• Wytwarza do 5000

nasion/roślinę.

• Diploid (2N), mały genom

125 Mbp DNA

• Krótki cykl życiowy (ok. 6

tygodni „od nasiona do
nasiona”.

• Samopylny

background image

Arabidopsis thaliana (Johannes Thal, góry Harzu XVI w.)

background image

A. thaliana – rozpowszechnienie na świecie

background image

A. thaliana – Ekotypy najczęściej używane w

laboratorium

• Landsberg
• Columbia
• CN24
• Wassilewskija

background image

Arabidopsis w fazie kwitnienie

Rozeta

Pędy kwiatowe

background image

Kwiatostany i pojedynczy kwiat

background image

Hodowla na dużą skalę - szklarnia

background image

Hodowla na dużą skalę - fitotron

background image

Hodowla na szalce na pożywce selekcjonującej

background image

Hodowla na szalce na pożywce selekcjonującej

(powiększenie)

background image

Siewki przed przeniesieniem do ziemi

(wykształcone liście i korzenie)

background image

Wzrost w ziemi

background image

Hodowla z nasion od razu w ziemi

background image

Identyfikacja mutantów (nadmiar kwiatów, wt, brak

kwitnienia)

background image

Mutacje w budowie kwiatu

background image

Mutacje w budowie kwiatu

background image

Mutacje w genie MET1 kodującym

metylotransferazę DNA

background image

Kultury komórkowe Arabidopsis

background image

Projekt sekwencjonowania genomu Arabidopsis

THE ARABIDOPSIS GENOME INITIATIVE
  (2000)

Analysis of the genome sequence of
the flowering
plant Arabidopsis
thaliana
. Nature 408: 796 - 815

background image

Genom Arabidopsis

• Sekwencjonowane obszary

chromosomów – czerwone

• Telomery/centromery –

jasno niebieskie

• Skupienia

heterochromatynowe –
czarne

• Powtórzenia rDNA –

amarantowe

• Gęstość od max do min –

czerw-nieb

• TE – transpozony, MT/CP –

geny mitoch/chloropl.

background image

Relacje miedzy chromosomami (duplikacje)

background image

Statystyka

• Wielkość: 125Mb (milionów par zasad).
• 25 498 przewidzianych produktów genów należących

do 11 000 rodzin genowych (W zasadzie tak samo, jak

w genomie człowieka!).

• 69% genów zaklasyfikowanych na podstawie

podobieństwa do genów innych gatunków.

• Tylko 8-23% białek związanych z transkrypcją jest

ściśle spokrewnionych z białkami innych eukariontów.

W przeciwieństwie do tego, aż 48 - 60% genów

związanych z biosyntezą białka ma odpowiedniki u

innych gatunków.

• Dowody kilku wielkich wydarzeń duplikacyjnych, w tym

wskazujące na starożytnego tetraploidalnego przodka.

background image

Rozkład sekwencji genowych

background image

Porównanie trzech genomów obecnych w komórce

Arabidopsis

background image

Białka – przewidywane funkcje

background image

Polimorfizmy w genomie Arabidopsis

25 274 SNPs (Single Nucleotide Polymorphisms)~ 1 SNP na 3.3kb

• 52,1% A/T -> tranzycje G/C

• 17,3% transwersje AT-TA

• 22,7% transwersje AT-CG

• 7,9% transwersje CG-GC

14 570 InDeli (Inwersji/Delecji) w odległości śr. 6.1 kb

.

• 95% o długości poniżej 50bp.

• Przypuszczalnie 30% InDeli dłuższych niż 250bp to insercje

transpozonowe.

• Transpozony stanowią co najmniej 10% genomu, czyli 1/5

międzygenowego DNA!

• Rejony bogate w geny są ubogie w transpozony. Transpozony

częstsze w rejonach ubogich w geny. Przyczyna czy skutek: czy

transpozony integruja się w rejony ubogie w geny, czy wysoka

liczna transpozonów przeciwdziała występowaniu genów?

background image

Bazy danych dotyczące Arabidopsis

Arabidopsis

MATDB

 - searchable index and visualization of positional information for BAC clones

and single genes

TIGR Arabidopsis Database

Arabidopsis Functional Genomics Consortium (AFGC) 

Plant Plasma Membrane Database (PPMdb)

- Arabidopsis plasma membrane proteins

with expression and sequence data

Arabidopsis Genomics, TAIR

Plant Plasma Membrane Database (PPMdb)

- A. thaliana plasma membrane proteins with

expression and sequence data

AtDB (TAIR)

- genetic/physical mapping data

Arabidopsis thaliana chromosomes 4 & 5

- genetic/physical maps 

The Arabidopsis Information Resource

Arabidopsis cDNA Sequence Analysis Project

The Arabidopsis Genome Center (ATGC)

Everything Arabidopsis

The TIGR Arabidopsis Database Project

background image

TAIR database- zasoby

DNA/Clones

– Search for any DNA, which includes clones, libraries, genomic DNA, and filters.

Ecotypes

– Identify natural variants of Arabidopsis and closely related species using various

parameters.

Genes

– Genes may be searched by name, keywords, features, and/or location.

GO Annotations

– Retrieve Gene Ontology annotations and draw gene function pie charts for your

list of AGI locus codes.

Keywords

– Search or browse the terms used by TAIR to annotate genes, germplasms and

microarray experiments, which include Gene Ontology, Plant Ontology and

Experimental Method terms.

Locus History

– Discover whether a particular AGI locus identifier is currently in use and whether

it has been split or merged with another locus.

Markers

– The TAIR Marker Search window provides three ways of searching for a marker:

simple search by name only, feature search using mo re limits, and search by

position.

Microarray Elements

– Find information about the microarray elements (AFGC clones and amplicons,

Affymetrix probe sets, CATMA GSTs, and Agilent oligos ) contained on the AFGC,

Affymetrix AG (8K) and ATH1 (25K) GeneChip, CATMA and Agilent arrays

background image

Zasoby TAIR

Microarray Experiments

– Search microarray experiments by name, description, experimenter's last name,

array manufacturer and keywords.

Microarray Expression

– Search for microarray gene expression profiles.

People/Labs

– Find contact information for a colleague, register or update your profile.

Polymorphisms and Alleles

Search by name, features, and/or location.

Proteins

Search using a variety of parameters, including gene information, domain information, and

genome position.

Protocols

Search for protocols, experimental methods and classroom activities.

Publications

The publications in the TAIR database are derived primarily from PubMed. Entries with the word

'Arabidopsis' in the title, abstract, or MeSH headings are downloaded on a monthly basis.

Seeds/Germplasms

Search for ABRC seed stocks or other mutant lines.

Sequences

Download a variety of sequences from the Arabidopsis Genome Initiative (AGI) in FASTA or tab-

delimited formats.

background image

Plant genome

bioinformatics group

MIPS plant genome databases

Arabidopsis thaliana

Zea mays
Medicago truncatula
Lotus japonicus
Oryza sativa
Solanum lycopersicum

background image

Statistics for selected plant genomes

Maize

Rice

Arabidopsis

Medicago

• AVG gene size(kb) 2892 2713 2287

2407

• AVG gene density/10kb 0.32 1.66 2.74

2.31

• AVG exon size(bp) 245 340 286 469
• Predicted genes 457 60666 32739

6821

• AVG exons per gene 4.39 4.32 9.30

3.28

• AVG introns per gene 3.39 3.32 8.30

2.28

• Total Nr. of BACs 100 - 1578

1133

Statistics created: February, 15th, 2005

background image

„Dwudziesty wiek zaczął się od

powtórnego odkrycia praw Mendla

dotyczących dziedziczenia u

grochu, a zakończył odczytaniem

genomu rośliny modelowej –

Arabidopsis thaliana


Document Outline


Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
ROS wykorzystanie roslin do unieszkodliwiania osadow
ROŚLINY ZAWSZE ZIELONE
Znaczenie liści dla roślin
83 rośliny, mchy, widłaki, skrzypy, okryto i nagonasienne
rosliny GMO
Wykład8 morfogeneza roślin
TECHNIKA OCHRONY ROŚLIN
skrócony Wzrost i rozwój roślin
Metody pozyskiwania, konserwacji i przechowywania surowców roślinnych
Rośliny transgeniczne
komórka roślinna i tkanki roślinne
Zasady przechowywania ziarna zbóż, nasion roślin strączkowych i oleistych
13 Uprawa roślin ozdobnych w gruncie
11 Wzrost i rozwój roślin

więcej podobnych podstron