Ciałko Barra. Barwienie komórek nabłonka
jamy ustnej na obecność ciałek Barra.
Teoria Lyon.
Aleksandra Włoskiewicz
gr.5
Pielęgniarstwo rok I
CIAŁKO BARRA
• Ciałka Barra są to płasko wypukłe grudki
chromatyny położone przy błonie jądrowej
komórki, występujące np. w komórkach nabłonka
jamy ustnej, w krwinkach białych („pałeczki
dobosza”) i w innych. W warunkach prawidłowych
stwierdza się je jedynie u kobiet. Okazało się,
bowiem, że ciałko Barra to nieczynny, odłożony
chromosom X. Jak pamiętamy, geny leżące na
chromosomie X są niezbędne do życia, dlatego
też każda komórka, która ma utrzymać się przy
życiu musi posiadać ten chromosom.
• Jeżeli jednak w komórce są dwa chromosomy
X, jeden z nich może pozostać nieczynny,
odłożony w postaci heterochromatyny,
albowiem geny odczytywane są na drugim,
czynnym chromosomie X. A zatem w
organizmie kobiety (XX) występują ciałka
Barra, a w organizmie mężczyzny (XY) ich nie
ma. Poszukując chromatyny płciowej
możemy określić płeć chromatynową. Jeśli
występują ciałka Barra, płeć chromatynowa
jest żeńska, gdy jest ich brak – męska.
Hipoteza inaktywacji chromosomu X
• Hipotezy inaktywacji chromosomu X
Badania były prowadzone w Anglii na myszach
przez Mary Lyon w 1961roku. Zaproponowała
ona, że:
• 1.Skondensowany chromosom X w
somatycznych kom. żeńskich ssaków jest
genetycznie nieaktywny.
• 2.Inaktywacja zachodzi we wczesnych
etapach rozwoju(w stadium 32 lub 64
komórek), chromosom pochodzenia
matczynego lub ojcowskiego ulega inaktywacji z
jednakowym prawdopodobieństwem.
• 3.Inaktywacja zachodzi w sposób niezależny,
losowy i nieodwracalny w każdej komórce
embrionu. Wzór inaktywacji zostaje zachowany w
komórkach potomnych tzn., że gdy inaktywacji
ulega pierwotnie X matczyny, to we wszystkich
komórkach potomnych inaktywowany pozostanie
chromosomom pochodzenia matczynego.
• Proces inaktywacji chromosomu X- lyonizacaja,
prowadzi do zrównoważenia fenotypu męskiego
i żeńskiego przez kompensację dawki(kobiety
posiadające 2 X mają taką samą liczbę
aktywnych kopii genów sprzężonych z X jak
mężczyźni.
• Lyonizacji towarzyszy metylacja
cytozyny w kontrolujących obszarach DNA,
w wyniku kondensacji chromosom X zostaje
wyłączony ( nie zachodzi transkrypcja
genów)
• Inaktywacja obejmuje większość genów
chromosomu X z wyjątkiem genów w
obszarze psedoautosomalnym oraz
położonych w proksymalnej części ramienia
krótkiego i długiego.
Etapy inaktywacji:
• -inicjacja- wymaga obecności dwóch
chromosomów XX
• -zliczenie całkowitej ilości chromosomów X w
jądrze
• -wybór chromosomu który ulegnie inaktywacji
• -zablokowanie centrum inaktywacji chromosomu,
który pozostanie czynny
• -rozprzestrzenienie się inaktywacji na drugim
chromosomie
• -utrzymanie stanu inaktywacji podczas podziałów
komórkowych
Dowody na losową inaktywację chromosomu X - badania
nad żeńskimi osobnikami będącymi heterozygotami pod
względem cech sprzężonych z płcią
• badania Lyona na myszach. Jednolicie zabarwieni
rodzice -XX ciemna, XY -jasny, łaciate potomstwo tylko
samiczki, komórki z nieaktywnym Xmat wytwarzały
barwnik jasny, Xpat wytwarzały barwnik ciemny.
• -Efekt wariegacji (fenotypowej mozaikowatości)
obserwowany u kotek. Tylko u heterozygotycznych samic
pojawia się futro łaciate czarno- żółto- białe. Kotka
otrzymuje od rodziców jeden gen- barwa czarna, a drugi-
barwa żółta) na skutek losowej inaktywacji jednego z X
w pewnych klonach komórek dochodzi do ekspresji
genów barwy czarnej, w innych glonach- genów barwy
żółtej. Barwę sierści warunkują tez inne geny dlatego
zwykle na futerku pojawiają się białe plamy
• Anhydrotyczna ektodermalna dysplazja- choroba
recesywna u ludzi. Chorzy mężczyźni nie mają gruczołów
potowych, zębów i owłosienia na ciele. Heterozygotyczne
kobiety cechuje brak gruczołów potowych na skórze oraz
utrata lub uszkodzenie pojedynczych zębów. Miejsca
pozbawione gruczołów są rozmieszczone nieregularnie na
skórze w zależności od tego, który z chromosomów X
został wyłączony.
• Objawy dysplazji manifestują się zmianami w zakresie
skóry, błon śluzowych, włosów, paznokci i zębów. Chorzy
mają bladą, cienką skórę, często z pigmentacjami powiek,
łokci i kolan, skąpą podściółkę tłuszczową, szeroki,
siodełkowaty nos, odstające, nisko osadzone małżowiny
uszne, skąpe i jasne owłosienie głowy, często brak rzęs i
brwi, grube wywinięte wargi, zniekształcone płytki
paznokci, niekiedy zaburzenia neurologiczne i niedorozwój
soczewki oka.
• Rozróżnia się: postać hydrotyczną – dziedziczoną
na drodze autosomalnej dominującej oraz postać
anhydrotyczną – dziedziczoną na drodze
autosomalnej recesywnej, sprzężoną z płcią
męską kobiety są nosicielkami.
• Badanie poziomu enzymu dehydrogenazy
glukozo-6-fosforanowej (metabolizm glukozy)
kodowanej przez gen G6PD znajdujący się na
chromosomie X, wykazały że poziom tego
enzymu jest inny u kobiet i mężczyzn. U kobiet
46, XX i mężczyzn 46, XY oraz 47, XXY, poziom
enzymu jest jednakowy, co może świadczyć o
aktywności tylko jednego allelu u kobiet,
mężczyzn i mężczyzn z zespołem Kinefeltera.
BADANIA CHROMATYNY PŁCIOWEJ
X
(Test CHX)
• Uwagi ogólne:
Testy chromatynowe są proste w wykonaniu,
nie są obciążające dla badanego dziecka lub
pacjenta dorosłego, pozwalają na szybkie
wykluczenie aberracji liczbowych
chromosomów płciowych X i Y oraz
niektórych typów ich aberracji strukturalnych.
Ocenie podlegają jądra komórek w okresie
między podziałowym (interfazy), dzięki
czemu nie jest potrzebna hodowla materiału
pobranego do badań.
• Testy chromatyny płciowej X (test CHX) oraz
chromatyny płciowej Y (CHY) umożliwiają
określenie płci chromatynowej pacjenta. Są
szczególnie przydatne w przypadkach
stwierdzenia wad rozwojowych narządów
płciowych, zwłaszcza u noworodków, u
których konieczne jest szybkie podjęcie
decyzji dotyczących ustalenia płci
fenotypowej, a w ślad za tym płci
metrykalnej dziecka. Wszystkie
nieprawidłowe wyniki testów CHX i CHY
muszą być zweryfikowane w pełnym
badaniu kariotypu.
• Chromatyna X jest efektem inaktywacji jednego z
dwóch chromosomów X u zdrowej kobiety (kariotyp
46,XX) celem zapobieżenia efektowi "dawki genów"
w stosunku do jednego chromosomu X u mężczyzny
(kariotyp 46,XY). W jądrach wielu typów komórek
widoczna jest jako grudka chromatyny X lub jako
"pałeczka dobosza" w granulocytach
obojętnochłonnych krwi obwodowej. Liczba grudek
(pałeczek) jest zawsze o jeden mniejsza niż liczba
chromosomów X w kariotypie. Test jest zatem ujemny
przykładowo u mężczyzny z kariotypem 46,XY ale i u
pacjentki z kariotypem 45,X (zespół Turnera). Będzie
natomiast dodatni zarówno u kobiety (46,XX) jak i u
mężczyzny z zespołem Klinefeltera (47,XXY),
u którego jeden X ulega inaktywacji.
Badania na CHX
• Badanie na CHX wykonuje się na nabłonku
jamy ustnej, który pobiera się plastikową
szpatułką w postaci tzw. wyskrobiny.
Natomiast test CHY przeprowadza się na
jądrach limfocytów krwi obwodowej - kropla
pobrana z opuszka palca. Wynik zwykle jest
nastęnego dnia.
WYBARWIANIE
• Wybarwianie ciałek Barra to jedna z metod
rozróżniania płci. Liczba ciałek Barra = liczba X – 1.
Najłatwiej ciałka Barra uzyskać z nabłonka błony
śluzowej jamy ustnej lub z płynu owodniowego
zrobić rozmaz na szkiełku i wybarwić.
• pałeczka dobosza X – są to grudki chromatyny
chromosomu X wyrzucone poza obręb jądra, ale
pozostające z nim w łączności. Występują w
granulocytach obojętnochłonnych, które mają
segmentowane jądra. U kobiety pałeczka dobosza
tworzy tą część chromatyny jądrowej, z której
powstałby chromosom (nieczynny).
• u mężczyzn:
• pałeczka dobosza Y – u mężczyzn pałeczka dobosza
tworzona jest przez tą część chromatyny jądrowej, z
której powstałby chromosom Y – u mężczyzn fluoryzuje.
• Dystalna część ramion dolnych chromosomu Y ma
zdolność silnej fluorescencji. Aby odróżnić pałeczkę
dobosza X od Y wystarczy wybarwić preparat barwnikiem
fluorescencyjnym i jeżeli pałeczka dobosza zaświeci, jest
to Y.
• ciałko Y (chromatyna Y) – występuje w jądrze
komórkowym komórek męskich wybarwionych
barwnikami fluorescencyjnymi – stanowi je dystalna
hetero chromatynowa część ramion długich chromosomu
Y, która ma dolność silnej fluorescencji. Liczba ciałek Y =
liczba chromosomów Y. Jest to ta część, z której
powstałby chromosom Y.
Barwienie ciałek Barra
• Fuksyna zasadowa:
• roztwór podstawowy
-fuksyna zasadowa 3 g
-70% alkohol etylowy – 100 ml
• roztwór fuksyny
-roztwór podstawowy – 10 ml
-5% wodny kwas karbolowy (FENOL) – 30 ml
-kwas octowy lodowaty – 10 ml
-37% formaldehyd (cz.d.a.) – 10 ml
• (roztwór nadaje się do użycia po 24 godzinach)
Wykonanie
• 1. Alkohol absolutny - 3 min
• 2. Alkohol 70% - 3 min
• 3. H
2
O destylowana – 5 min
• 4. H
2
O destylowana – 5 min
• 5. Fuksyna – 5 – 10 – 20 min
• 6. Alkohol 95% - 1 min
• 7. Alkohol absolutny – 3 min
• 8. Alkohol absolutny – 3 min
• 9. Ksylen
• 10. Ksylen
Przygotowanie kwasu karbolowego: wstawić fenol do
cieplarki, odważyć 5 g i uzupełnić do 100 ml wodą.
Barwienie pałeczek dobosza
X
• Wykonanie rozmazu:
• 1. Kroplę krwi umieścić na jednym końcu szkiełka przedmiotowego.
• 2. Oprzeć brzeg szkiełka szlifowanego kroplę krwi tak, aby rozpłynęła
się wzdłuż jego krawędzi. Szkiełko ustawić pod kątem 20-30⁰ w stosunku
do szkiełka przedmiotowego.
• 3. Trzymając szkiełko szlifowane w prawej ręce a przedmiotowe w lewej
podpierając je palcem środkowym, jednym ruchem rozmazać kroplę krwi.
• 4. Po wykonaniu rozmazu szkiełko wysuszyć na powietrzu.
• Barwienie:
• 1. Utrwalić w alkoholu metylowym absolutnym – 10 min.
• 2. Zalać barwnikiem May – Grunwalda, zbuforowanym do pH 6,8 na 5
min.
• 3. Płukać w wodzie destylowanej.
• 4. Barwić 3% roztworem Giemsy przez 10-20 min.
• 5. Płukać w wodzie destylowanej.
• 6. Wysuszyć i przechowywać na sucho.
• Analizować należy ok. 500 leukocytów. U osobników żeńskich stwierdza się
co najmniej 12% granulocytów z typowymi pałeczkami dobosza X.
Barwienie ciałek Y w rozmazach nabłonka jamy
ustnej
• 1.Rozmazy z komórek nabłonka jamy ustnej utrwalać
w metanolu lub w mieszaninie etanolu z eterem (1:1).
• 2.Barwić przez 5 minut w 0,5% roztworze wodnym
atebryny (Q).
• 3.Płukać 3 min w bieżącej wodzie.
• 4.Opłukać w buforze McIlvane’a o pH 5,5 lub 4,2,
zamknąć preparat w nim lub w mieszaninie glicerolu z
buforem 1:1.
• 5. Oceniać w mikroskopie fluorescencyjnym.
• Wynik: ciałko Y ma średnicę 0,25 µm, występuje w
25-50% komórek.
DZIĘKUJĘ ZA
UWAGĘ!