mikro 2 (1)

HODOWLA I WZROST MIKROORGANIZMÓW

Mikroorganizmy hodujemy na specyficznych podłożach.

Wymagania odżywcze mikroorganizmów:

  1. Źródła węgla:

  1. Chemoorganotrofy: metabolizują organiczne źródła węgla (najczęściej celuloza, maltoza, ale też aminokwasy, białka)

  2. Autotrofy: korzystają z nieorganicznych źródeł węgla: CO2 (najczęściej bakterie purynowe i siarkowe)

  1. Źródła azotu: -NH3, -NH2, -NO3, NO2, -N2

  2. Źródła siarki: SO4, S203, S

  3. Źródła energii:

  1. Chemautotrofy: pochodząca z utleniania:

  1. Fotoautotrofy: energia świetlna

IZOLOWANIE CZYSTYCH KULTUR

Klon – mikroorganizmy pochodzące od jednej komórki – jednorodne genetycznie (czysta kultura)

Szczep – mikroorganizmy jednego gatunku wyprowadzone z różnych klonów (poszczególne szczepy tego samego gatunku mogą różnić się właściwościami, dlatego mogą rosnąć na różnych pożywkach)

  1. Posiew redukcyjny na agarze odżywczym (zestalenie agar-agarem – ciekły do 44st.C, topi się 85st.C) – robi się różne wzorki na płytkach, żeby rozcieńczyć naszą hodowle na płytce.

  2. Metoda płytek lanych – rozcieńczamy hodowlę komórek w probówkach z użyciem płynu fizjologicznego (najczęściej 10^-1), następnie z kilku kolejnych probówek pobieramy komórki i wylewamy na płytkę, którą zalewamy płynnym agarem, mieszamy pipetą, by równomiernie rozprowadzić komórki, gdy agar się zestala, kom zatrzymują się w tych miejscach, w których się obecnie znajdują, przechowuje się je do góry dnem

  3. Metoda szeregu rozcieńczeń – różni się tym, że posiew wylewamy na gotową płytkę z agarem. Na płytkę posiew wylewamy pipetą i rozprowadzamy równomiernie. Dążymy do tego, żeby kolonii było jak najmniej.

PRZECHOWYWANIE MIKROORGANIZMÓW

Przechowywanie nie powinno wpłynąć na cechy morfologiczne i chemiczne naszej hodowli

  1. Skosy mikrobiologiczne – podłoża stałe w probówkach – najprostszy sposób, probówki zakleja się i umieszcza w lodówce

  2. Wkłucia w podłoża stałe – stosuje się do mikroorganizmów beztlenowych, bo wprowadza się je do dna naszej probówki i zakleja ją parafiną – odcina się tlen, zmniejsza ich metabolizm

  3. Liofilizacja – I etap: schładza się hodowle szybko do -700 stopni (nie niszczą się struktury), następnie II etap: suszy się pod próżnią (wody nie może być więcej niż 1%), ważne jest stosowanie czynników ochronnych stabilizujących białka, enzymy, żeby ich nie uszkodzić

  4. Ciekły azot – stabilizacja glicerolem lub DMSO – w stężeniu 5-10% w stosunku do roztworu. Glicerol jest dobry, bo utrwala białko

PODŁOŻA MIKROBIOLOGICZNE

skład podłoża zawsze jest podawany dla podłoża płynnego

  1. Syntetyczne – zdefiniowane:- minimalne – bazowe; optymalne – pełne; minimalne składa się z szeregu związków organicznych, takich, które są potrzebne tylko do przeżycia i minimalnego wzrostu; aby uzyskać maksymalny wzrost stosuje się optymalne, które nie jest zazwyczaj specyficznie określone

  2. Niezdefiniowane – kompleksowe; naturalne

- bulion odżywczy – najprostsze podłoże naturalne – wyciąg mięsny, pepton, NaCl, zasady organiczne, kreatynina, witaminy

- agar odżywczy – to co wyżej z dodatkiem agaru (agar stosuje się, bo nie jest on wykorzystywany przez mikroorganizmy)

HODOWLE WZBOGACAJĄCE, NAMNAŻAJĄCE

Stosuje się je, gdy chcemy wyizolować czystą kulturę, ważne jest częste przeszczepianie hodowli, pożywkę stosuje się pod tylko jeden typ mikroorganizmów, preferując ich wzrost

Selektywne faworyzowanie jednego gatunku – izolacja – inhibitor będzie faworyzował jeden mikroorganizm, a hamował wszystkie inne

Podłoża selektywnie różnicujące (np. Podłoże Mac Conkey’a – rozróżnienie w obrębie pałeczek – koliformy (E. coli, Salmonella, Shigella))

Przebieg procesu różnicowania:

CZYNNIKI WPŁYWAJĄCE NA WZROST MIKROORGANIZMÓW

  1. pH – nawet najmniejsza zmiana ich stężenia może bardzo wpłynąć na właściwości pożywki (są to najszybciej poruszające się jony), ważne jest też, żeby pH nie zmieniało się znacząco podczas hodowli– bakterie preferują alkaiczne pH=8, a grzyby poniżej 7, neutrofile w pH obojętnym, acydofile w kwaśnym, alkalofile w zasadowym. Może dojść do samozatrucia hodowli, dlatego pożywki muszą być wcześniej buforowane (np. bakterie preferujące wyższe pH mogą wydalać jakiś kwas i może dojść do samozatrucia)

  2. Stosunek do obecności tlenu – stężenie tlenu w probówkach jest najwyższe na górze, a najniższe na dole (wyróżniamy: aeroby – wymaga obecności tlenu, anaeroby – tlen jest dla nich toksyczny, anaeroby fakultatywne, anaeroby tolerujące O2 te dwie mogą rosnąć przy obecności i przy braku tlenu – energie pobierają albo na zasadzie fermentacji albo z oddychania komórkowego, mikroacerofile – wymagają niskich stężeń tlenu)

  3. Stosunek do temperatury

4. Ciśnienie

DYNAMIKA WZROSTU BAKTERII

  1. Szybkość wzrostu – czas generacji – czas potrzebny komórce do podzielenia się (czas pomiędzy podziałami)

  2. Charakterystyka wzrostu w hodowli stacjonarnej (ograniczenia: ubytek składników odżywczych; toksyny)

DIAUKSJA – WZROST DWUFAZOWY – PODWÓJNY CYKL WZROSTU

Wymaga indukcji enzymów umożliwiających wykorzystanie nowego źródła węgla dostarczonego do podłoża

Wzrost dwufazowy obserwowany jest przy mieszaninie substratów. Najpierw wytwarzane są enzymy do trawienia np. glukozy, dopiero gdy stężenie glukozy spadnie do zera rozpoczyna się syntetyzowanie enzymu rozkładającego np. sorbitol i znowu mamy wzrost logarytmiczny dopóki on się nie skończy w pożywce

OZNACZANIE LICZBY MIKROORGANIZMÓW W OKREŚLONEJ OBJĘTOŚCI (INOCULUM)

Liczbę mikroorganizmów wyznacza się najczęściej dla hodowli synchronicznych – populacja komórek dzieląca się w tym samym czasie (temperatura, składniki odżywcze, światło, filtry)

  1. Wyznaczanie całkowitej liczby komórek mikroskopowo – liczy się zarówno komórki żywe i martwe – próbkę dzieli się na kwadraty i liczy w nich komórki, następnie wydziela się średnią. Nie powinno się brać pod uwagę kwadratów stykających się by uzyskać jak najwiarygodniejszy wynik

  2. Wyznaczanie liczby żywych komórek – metoda płytkowa szeregu rozcieńczeń

PRZEDŁUŻANIE HODOWLI – HODOWLE CIĄGŁE – UKŁAD OTWARTY

  1. Chemostat – w nim prowadzi się hodowle, jest ciągle napowietrzany, gdyż napowietrzanie sprawia, że metabolity i pożywka są równo rozmieszczone, podobnie stężenie tlenu – nie da się rozróżnić faz jak dla stacjonarnego

  2. Turbidostat – stała gęstość optyczna hodowli – ciężej jest utrzymać hodowlę o stałej gęstości optycznej, dlatego jest stosowany rzadziej

KONTROLA WZROSTU MIKROORGANIZMÓW

Sterylność – brak wszelkich form mikroorganizmów

Aseptyczność – brak organizmów zakażających i czynników infekcyjnych

Wzrost bakterii można kontrolować poprzez:

Filtry membranowe – pory są mniejsze niż średnica bakterii, bakterie zostają na filtrze:

TEORIA STERYLIZACJI – ZABIJANIE MIKROORGANIZMÓW

Wynikiem sterylizacji jest zamieranie expotencjalne

Skuteczność zależy od:

  1. Czasu ekspozycji

  2. Gatunku

  3. Liczebności populacji

  4. Typu czynnika

Szczepy diagnostyczne: Bacillus stearothermophilus; Clostridum – za ich pomocą sprawdza się skuteczność sterylizacji, wkłada się je do rzeczy, które się sterylizuje, a potem, jeżeli na bibułce zawierającej spory coś rośnie, to sterylizacja źle poszła

Czynnik Warunki Zastosowanie

Temperatura

- Suche powietrze

160st./3h

180/2h

szkło laboratoryjne

suszarki

Temperatura

- Wilgotne powietrze

121st/15

1,5atm

Podłoża,

autoklaw

Temperatura

- wilgotne powietrze

Pasteryzacja

Tyndalizacja

62st/30’

71,7st/15’’

- flash

3x pasteryzacja

podłoża żywność, których walory mogłyby ulec zmianie w wyższej temperaturze

do przetrwalników

Filtracja pory: 00,5-02mikom substancje płynne, które nie mogą być podgrzewane
Promieniowanie UV sterylizacja gazów, powierzchni
Promieniowanie γ zabezpieczenie żywności

ZAHAMOWANIE WZROSTU:

  1. Związki nieselektywne – syntetyczne – hamują wszystko – syntetyzowane w laboratorium

  1. Związki selektywne – antybiotyki – hamują tylko wybrane mikroorganizmy – zazwyczaj pochodzenia naturalnego

DZIAŁANIE ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH (linia ciągła – komórki żywe, linia przerywana – wszystkie komórki)

ANYTSEPTYKI I DEZYNFEKANTY

  1. ALKOHOLE – denaturują białka, rozpuszczają lipidy – antyseptyki skóra – spory i wirusy oporne (np. etanol – wysoki koszt, izopropanol)

  2. Aldehydy – alkilują: -NH2, -SH, -COOH – dezynfektanty zabijają spory – toksyczne

  3. Halogenowce – dezaktywują białka, reagują z Tyr, czynniki silnie utleniające – antyseptyk, skóra, oczyszczanie wody, żywności – barwią skórę, poprzez reakcję z wodą stają się toksyczne (np. jodyna, betadyna (roztwór jodu w detergencie), chlor)

  4. Metale ciężkie – chronią przed grzybami, glonami, strącanie białek, reakcja z –SH – glono-, grzybobójcze, antyseptyki do oczu oraz dezynfektanty – toksyczne ( w postaci soli np. CuSO4, AgNO2, chlorki rtęci)

  5. Gazy – reagują z wieloma składnikami komórek, alkilują związki organiczne – dodatki do żywności, soków, sterylizacja substancji wrażliwych na temperaturę, dobra penetracja, sporobójcze – drażniące oczy, układ oddechowy, palne, potencjalne kancerogeny (np. tlenek siarki(IV), tlenek etylenu, propiolactone)

  6. Detergenty kationowe (z długim łańcuchem węglowodorowym, czwartorzędowe aminy) – niszczą błony cytoplazmatyczne – antyseptyki- skóra dezynfektanty – łatwo inaktywowane- niskie pH, związki organiczne, fosfolipidy (aktywne tylko w okolicach pH neutralnego)

  7. Fenole – denaturacja białek, niszczą błony cytoplazmatyczne – dezynfektanty w wysokich stężeniach, dodatki do mydeł w niskich stężeniach (setne procenta) – bardzo toksyczne

METRIOLAT – ANTYSEPTYK – TIOSALICYLANRTĘCIOWY

Związek, który jest stosowany w postaci soli sodowej, jest to również pochodna fenolu

HEKSACHLOROFENOL

Bardzo toksyczny związek. Toksyczność 1/1000000 1PPM Staphylococci

WYZNACZANIE SKUTECZNOŚCI DZIAŁANIE DEZYNFEKTANTÓW

TEST FENOLOWY; WSPÓŁCZYNNIK FENOLOWY

MODEL Staphylococcus aureus – bo bardzo odporny na wszelkie dezynfektanty

Roztwór bakterii pobiera się do dwóch probówek. W jednej dodatkowo roztwór fenolowy, w drugim dezynfektant. Po pewnym czasie nie jesteśmy w stanie ocenić, czy bakterie w danych probówkach bakterie wyrosły, czy nie. Dlatego z każdej probówki wykonuje się posiew na osobną szalkę i dopiero się sprawdza. Porównuje się wartość, dla której nie obserwowano wzrostu w teście fenolowym.

ANTYBIOTYKI – HAMOWANIE WZROSTU; ZABIJANIE

Antyseptyki i dezynfektanty działały powierzchniowo. Do związków działających selektywnie należą antybiotyki. Mają one działanie albo bakteriostatyczne, albo bakteriobójcze.

W 1941 Fleming odkrył penicylinę, ale nigdy nie użył jej klinicznie. Dopiero Florey i Chain wyizolowali penicylinę i testowali ją na myszach. Z izolacją penicyliny był problem, ponieważ uważano, że czynnikiem bakteriobójczym był enzym lizozym. Dopiero potem okazało się, że nie jest to enzym, a związek chemiczny. Aleksander Fleming w 1945 otrzymał Nagrodę Nobla w dziedzinie medycyny, razem z Howardem Floreym i Ernstem Chainem. Dodatkowo Flemingowi zawdzięczamy odkrycie lizozymu.

ANTYBIOTYK NAURALNY – produkowany przez jeden mikroorganizm by zabić lub zahamować wzrost innego. Substancje, które eliminują konkurentów do zasobów pokarmowych.

Selektywność działania obejmuje unikalne struktury i procesy charakterystyczne wyłącznie dla mikroorganizmów. (czyli do czegoś, co nie występuje w naszym organizmie) – założenie, nie zawsze da się to zrobić

INDEKS TERAPEUTYCZNY LEKU – minimalna dawka, która jest toksyczna dla gospodarza podzielona przez minimalną dawkę terapeutyczną

Spektrum działania, można określić poprzez antybiogram – pozwala na określenie, które bakterie są wrażliwe na działanie antybiotyku i w jakim stężeniu musi on być użyty; powinno się najpierw zrobić antybiogram, dopiero podawać antybiotyk:

  1. Szerokie

  2. Wąskie – najczęściej, działają na jeden gatunek lub rodzaj bakterii (np. na bakterie o strukturze ściany komórkowej Gramm dodatniej, a ujemnej już nie)

TYP DZIAŁANIA:

  1. Inhibitory syntezy ściany komórkowej – idealny cel, bo komórki zwierzęce nie posiadają ściany komórkowej

  2. Biosyntezy białek- może być toksyczny również dla organizmu eukariotycznego

  3. Biosyntezy DNA – jak wyżej

  4. Zaburzające struktury i funkcje błon cytoplazmatycznych – jak wyżej

INHIBITORY SYNTEZY ŚCIANY KOMÓRKOWEJ

Skutek – autoliza komórek – bo brak ściany prowadzi do lizy komórek, można powiedzieć, że są też bakteriolityczne

Cel: G(+); Spirochetae; niektóre ziarniaki G(-)

Obrona – penicylinaza – beta – laktamaza Staphylococcus; G(-) – bardzo często mikroorganizmy mają systemy obronne, syntetyzują enzym hydrolizujący antybiotyk, naturalny mechanizm obronny

Penicillium chrosogenum, Penicillium notatum – grzyby, które syntetyzują penicylinę

Cephalosporium – grzyb – cefalosporyna C- pierwszy wyizolowany antybiotyk

Wrażliwe na cefalosporynazę – też beta – laktanaza

Pochodna: IMIPENEM – odporny na beta-laktamazy, penicylinazy, cefalosporynazy

Inhibitory bata-laktamaz: Streptomyces clavuligenes – Inihibitor kompetycyjny – kwas klawulinowy przy antybiotykach, dzięki niemu antybiotyk jest skuteczny, bo znosi działania hydrolityczne beta-laktamazy

INHIBITORY BIOSYNTEZY BIAŁEK

  1. Chloramphenicol

  2. Makrolidy – erytromycyna

AMINOGLIGOZYDY – BAKTERIOBÓJCZE

Wpływają na wydłużanie łańcucha polipeptydowego:

  1. Streptocycyna; wiąże 30s i białko Streptomyces grisens

  2. Gentamycyna Micromonospora purpurea – zupełnie inny niż beta-laktan

  3. Kanamycyna Streptomyces kanamyceticus

  4. Syntetyczne – obecnie najszersze spektrum, stosowane są pod kontrolą lekarza, klinicznie

Tetracykliny – Streptomyces sp. – wpływają na biosyntezę białek, wysoka toksyczność (wywołują ogólne złe samopoczucie, nudności), inicjacja biosyntezy białek – silnie wiążą się z białkami; szerokie spektrum działania

ANTYBIOTYKI WPŁYWAJĄCE NA BŁONY KOMÓRKOWE

Polimyksyna B – bacillus poplymyxa (prokariotyczny organizm) – wysoka toksyczność, łączy się z fosfolipidami. Cel: G(-); Pseudomonas aeruginosa

ANTYBIOTYKI WPŁYWAJĄCE NA BIOSYNTEZĘ RNA

Rifampina – Streptymces mediterranei (pochodzenia prokariotycznego) – hamuje biosyntezę bakteryjnego RNA – może być skuteczna w stosunku do bakterii, a dla eukariotycznego bezpieczna (synteza RNA w jądrze)

SYNTETYCZNE CHEMIOTERAPEUTRYKI SULFONOWE – SULFONOAMIDY

Najstarszy znany antybiotyk – stosowany już podczas II Wojny Światowej.

Kwas paraaminobenzoesowy jest kluczowy przy syntezie kwasu foliowego B9 (witaminy B9). Te leki będą skuteczne w stosunku do bakterii, które same sobie nie mogą jej syntetyzować

SYNTETYCZNE LEKI SULFONOWE. SZLAK SYNTEZY KWASU FOLIOWEGO

Paraaminosulfonamid – stosowano w czasie I Wojny Światowej

Te związki działają na wszystkie organizmy, które muszą dostarczać jakoś witaminę B9. Zawsze są to związki sulfonowe

INNE ZWIĄZKI SYNTETYCZNE

  1. Inhibitory biosyntezy kwasu foliowego – nie oparte o strukturę sulfonoamidu. (np. kwas paraaminosalicylowy, trimethoprim- bardzo skuteczny związek stosowany zewnętrznie)

  2. Przeciw Mycobacterium sp. – hamują syntezę kwasu mykolowego (np. isoniazid, ethambutol)

  3. Hamuje replikację DNA u bakterii (np. quinolon- jego część aktywna, analog kwas azotowych, wbudowywany w miejsce zasad azotowych). U bakterii DNA wyeksponowany – znajduje się w cytoplazmie. U eukariotów znajduje się w jądrze, co stanowi barierę

ANTYBIOTYKI SKIEROWANE PRZECIWKO GRZYBOM

Bardzo ciężko stworzyć taki, aby był też bezpieczny dla człowieka, ponieważ są to organizmy eukariotyczne, mają podobne struktury związane z biosyntezą białek, DNA.

  1. Nystatyna – Streptomyces noursei – nie jest wchłaniana w układzie pokarmowym, działa w układzie moczo-płciowym, podaje się razem z antybiotykiem przeciw bakteriom, żeby utrzymać w równowadze populacje grzybów i bakterii

  2. Amphoterycyna B – Streptomyces nodosus

  3. Griseofulvin – Penicillium griseofulvum

WRAŻLIWOŚĆ NA CZYNNIKI ANTYBAKTERYJNE

MIC – minimalne, efektywne – inhibitorowe stężenie czynnika

MLC – minimalna dawka śmiertelna (stężenie) – letalna

  1. Metoda dyfuzyjna – bibułki nasiąknięte antybiotykami; dyfunduje on z krążka, im dalej od niego tym mniejsze stężenie antybiotyku. Umieszcza się je na podłożu z posiewem bakterii. Na jednej płytce umieszcza się kilka różnych antybiotyków i obserwuje, który antybiotyk działa bakteriobójczo. Dzięki temu wykonuje się antybiogram. Może być też ten sam antybiotyk, a inne stężenia.

  2. Metoda rozcieńczeń – wyznaczanie MIC – wyjściowa hodowla drobnoustrojów do kilku probówek. Pozwala wyznaczyć stężenie, ale mamy tylko jeden antybiotyk. Po 24h kontaktu bakterii z antybiotykiem – posiew na płytkę i sprawdzamy, gdzie jest wzrost bakterii.

  3. Metoda łączona – test dyfuzyjny w połączeniu z testem rozcieńczeń


OBSERWACJE MIKROORGANIZMÓW

PREPARATY MIKROSKOPOWE

  1. Przyżyciowe – bezpośrednio z hodowli, nie musimy niczego przygotowywać

  2. Barwione (utrwalone) – aby móc go wykonać, trzeba zakotwiczyć bakterie na szkiełku podstawowym (utrwalanie), bo nakłada się barwnik, a potem się usuwa, spłukując go (gdyby bakterie nie były utrwalone, zostały by spłukane)

UTRWALANIE PREPARATÓW

  1. Utrwalanie temperaturowe – ogrzewa się preparat od dołu (z przeciwnej strony od tej gdzie znajdują się bakterie), następnie się spłukuje

BARWIENIE POZYTYWNE PROSTE

- używa się fiolet krystaliczny – niezależnie od tego czy gram + czy gram –

BARWIENIE NEGATYWNE

- komórki żywe barwnika nie przyjmują, komórki martwe mogą czasami się wybarwić

PRZYKŁADY BARWIENIA ZŁOŻONEGO (RÓŻNICUJĄCEGO)

RÓŻNICUJĄCE BARWIENIE GRAMA – podstawowe pierwsze barwienie diagnostyczne, daje informacje o biochemicznej strukturze ściany komórkowej bakterii

Procedura G(-) G(+)
Utrwalenie płomieniem, barwienie fioletem krystalicznym – 1min Odbarwiają się Odbarwiają się
Płyn Lugola – 1min – utrwala barwnik, chemicznie wiąże się z barwnikiem Wciąż jest zabarwione, ale zostanie wymyte Pozwala na zatrzymanie barwnika tylko dla G(+)
Przemycie alkoholem odbarwienie G(-) Cały barwnik znika Barwnik pozostaje
Barwnik kontrastowy dobarwienie G(-) – etap, który tylko ułatwia obserwację, najczęściej barwnik bardzo jasno różowy, najczęściej jest to fuksyna Lekkie zabarwienie Mocne zabarwienie

WIELKOŚĆ BAKTERII [mikrometry]

Małe bakterie:

Bdellovbrie bacteriovorus 0,2-0,5 x 0,5-1,4

Bordetella pertussis 0,2-0,5 x 0,5-1,0

Coxiella burnetii 0,2-0,4 x 0,4-1,0

Treponema pallidum

Średnich rozmiarów – do 5 mikrometrów

Staphylococcus aureus

Streptococcus pyogenes

Duże bakterie – 5 do 100 mikrometrów

KSZTAŁTY BAKTERII

  1. Cylindryczne – pałeczki, laseczki

  2. Ziarniaki – owalne łańcuszki, dwoinki, czworaczki (tetracoccus), pakietowce (sześcianki) – po podziale zostają połączone, nie oddzielają się od siebie

  3. Śrubowce – formy największe, olbrzymie bakterii, ale występują też małe (zawierają wić, wić peryplamatyczną)

BAKTERIE WŁAŚCIWE – WIELKOŚĆ I FORMA

Eubacteriae

JAK TWORZA SIĘ SKUPISKA?

Podział poprzeczny – Bacillus subtilis – odrębne organizmy, które pozostają w skupisku po podziale dzięki wydzielaniu pochodnych węglowodanów

PROMIENIOWCE – WIELKOŚĆ I FORMA – ACRINOMYCETALES

SINICE – WIELKOŚĆ I FORMA – CYJANOBACTERIE

BAKTERIE POCHEWKOWE – WIELKOŚĆ I FORMA – CHLAMYDOBACTERIE

BAKTERIE SIARKOWE – WIELKOŚC I FORMA

BAKTERIE STYLISKOWE – WODNE – FORMA I KSZTAŁT

KRĘTKI – FORMA I KSZTAŁT – SPIROCHAETEAE

BAKTERIE SŁUZOWE – KSZTAŁT I FORMA, PLEOMORFIZM – MYXOBACTERIALES

BAKTERIE AMEBOIDALNE – KSZTAŁT I FORMA – HYPHOMICROBIALES

MYKOPLAZMY – FORMA I KSZTAŁT – MYCOPLASMATALES

RIKETSJE – FORMA I KSZTAŁT


BUDOWA BAKTERII

SCHEMAT BUDOWY KOMÓRKI PROCARYOTA

BUDOWA I SKŁAD CHEMICZNY BAKTERII

Cecha diagnostyczna bakterii – DNA: A+T/C+G

INNE CECHY DNA:

ROLA WITAMIN U BAKTERII

POZOSTAŁE SKŁADNIKI CHEMICZNE

  1. Cukry charakterystyczne dla bakterii polimery:

Granuloza, glikogen bakteryjny – materiały zapasowe, polimery glukozy, glukoza w różny sposób zmodyfikowana

Budulcowe – ściana komórkowa:

Lewany – polimery fruktozy

Mannany – polimery mannazy

  1. Lipidy, ciała tłuszczowe (woski – bardzo dużo u prątków; estry fitoglicerolu, kwas tuberkulostearynowy (kwas tłuszczowy stearynowy zestryfikowany określonym ..), was fitonowy)

Brak steroli (tylko u sinic, bakterii zdolnych do fotosyntezy i pasożytniczych Mycoplasamtales)

Brak wielokrotnych wiązań nienasyconych – tylko i wyłącznie nasycone tłuszcze

Polimer kwasu hydroksymasłowego - materiał zapasowy, rezerwuar energii i szkieletów węglowych

OTOCZKI I ŚLUZY ZEWNĘTRZNE

Rola otoczek – czasami warunkują patogenność, odporność na fagocytozę (nie mogą być fagocytowane przez białe krwinki krwi)

Streptococcus – te które wytwarzają otoczki są patogenne

ŚLUZY BAKTERYJNE:

STUKTURA ŚLUZÓW

POCHEWKI BAKTERYJNE

Zewnętrzne rurkowate osłonki, głównie heteropolisacharydy: glukoza, kwas glukuronowy, galaktoza, fruktoza

CHARAKTERYSTYCZNE DLA:


Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
prezentacja mikro Kubska 2
Mikro w 1
7 Mikro i makro elementy naszej diety
Wykład 3 Mikro 1 Econ
wyk ad4 Mikro
mikro wykresy super
02a MIKRO
Zestaw 4 Mikro
SCCIAGI Z EKO!, studia UMK, Podstawy ekonomii (mikro i makro)
MIKRO ŚCIĄGI Z WYKŁADU, studia, studia II rok, mikrobiologia, mikro egz, Ściągi RAZY 2
mikro c 5 sc, Weterynaria Lublin, Weterynaria 1, Mikrobiologia
EGZAMIN Z MIKRO!!!, Medycyna Warszawski Uniwersytet Medyczny, Mikrobiologia
10.11.2009, semestr 1, makro i mikro ekonomia
przedsiębiorstwo mikro, UE Katowice FiR, inne I semestr
odp mikro, mikrobiologia, egzaminy

więcej podobnych podstron