USZKODZENIE DNA
Uszkodzenie DNA jest to zmiana jego prawidłowej budowy chemicznej lub struktury fizycznej. Niektóre z atomów azotu i węgla w heterocyklicznych pierścieniach zasad i niektóre / egzocyklicznych grup funkcjonalnych (np. grupy aminowe i ketonowe zasad) wykazują znaczną reaktywność chemiczną.
Zmiana budowy chemicznej i właściwości zasad może prowadzić do :
utraty ich zdolności do tworzenia komplementarnych par
do niewłaściwego łączenia w pary zasad
uszkodzenia DNA mogą być mutagenne i/lub letalne.
Uszkodzenia powstają: spontanicznie z powodu naturalnej reaktywności DNA i obecności wewnątrz komórki normalnych reaktywnych związków chemicznych. Depurynacje zachodzą częściej niż depirymidynacje.
Uszkodzenia oksydacyjne
Do uszkodzeń tego rodzaju dochodzi w normalnych warunkach wskutek obecności, we wszystkich komórkach tlenowych, reaktywnych związków tlenu:
ponadtlenku i nadtlenku wodoru
rodnika hydroksylowego
Alkilacja
Czynniki alkilujące są związkami elektrofilowymi, które łatwo wprowadzają grupy alkilowe (np. metylowe) do różnych pozycji kwasów nukleinowych, innych od pozycji metylowanych przez normalne enzymy etylujące.
Typowym przykładem są:
metylosulfonian metylu (MMS)
etylonitrozomocznik
Duże związki addycyjne
Pod wpływem światła UV z sąsiednich pirymidyn na jednej nici DNA poprzez cyklizację, połączonych podwójnym wiązaniem, atomów węgla C5 i C6 każdej z zasad tworzone są cyklobutanowe dimery pirymidynowe. W ten sposób powstaje pierścień cyklobutanowy.
Zasady wchodzące w skład pierścienia cyklobutanowego nie mogą się parować z zasadami nici przeciwnej, co wywołuje lokalną denaturację DNA. Powstaje duże uszkodzenie.
Inny typ dimeru pirymidynowego: 6,4-fotoprodukt powstaje w wyniku utworzenia wiązania pomiędzy C6 jednej zasady pirymidynowej a C4 sąsiedniej zasady
Wiele innych aromatycznych czynników arylujących tworzy z DNA kowalencyjne związki addycyjne.
NAPRAWA DNA
Fotoreaktywacja
Cyklobutanowe dimery pirymidynowe mogą ulegać ponownej monomeryzacji pod wpływem fotoliaz (enzymów fotoreakty wujących) w obecności światła widzialnego. Enzymy te mają grupy prostetyczne, które absorbują światło niebieskie i przenoszą energię na pierścień cyklobutanowy, który następnie ulega rozszczepieniu.
Fotoreaktywacja jest:
swoista dla dimerów pirymidynowych
bezpośrednie usuwania uszkodzenia
jest wolna od błędów
Alkilotransferaza
bezbłędny mechanizm usuwania uszkodzeń
element odpowiedzi adaptacyjnej na czynniki alkilujące
indukowana przez czynniki alkilujące
Ochrony przed mutagennymi skutkami dostarcza alkilotransferaza,
iż grupa alkilowa jest przenoszona na sam enzym i inaktwuje go.
każda alkilotransferaza może być użyta tylko raz
Białko to występuje również w komórkach ssaków. Obrona przed letalnymi mutacjami wymaga indukcji glikozydazy DNA, która usuwa alkilowano zasady na drodze naprawy przez wycinanie zasad
Naprawa przez wycinanie
wolny od błędów
Istnieją dwa typy tego median izm u
Przez wycięcie nukleotydu (NER- nucleotide excision repair)- endonukleaza rozcina precyzyjnie nić DNA po obu stronach uszkodzenia w miejscach odległych od niego o ściśle określoną liczbę zasad. Oligonukleotyd zawierający
uszkodzenie jest usuwany, co powoduje utworzenie się luki o rozmiarach
usuniętego fragmentu DNA
Przez wycięcie zasady (BER- base excision repair)- , modyfikowane zasadysą rozpoznawane przez względnie specyficzną glikozydazę DNA, która przecina wiązanie N-glikozydowe między zmienioną zasadą a cukrem,pozostawiając miejsce apurynowe lub pirymidynowe. Następnie endonukleaza AP rozcina DNA w tych miejscach, a dzięki aktywności egzonukleazowej powstała przerwa może zostać poszerzona do luki. Luka jest zwykle większa w przypadku NER. Od tego momentu, obie formy naprawy przez wycinanie są zasadniczo takie same.
U eukariotów uzupełnianie luki w przypadku mechanizmu BRR wymaga najczęściej obecności polimerazy DNA .W mechanizmie NER u eukariotów rozpoznanie i wycięcie uszkodzonego DNA jest złożonym procesem wymagającym przynajmniej 18 czynników białkowych, w tym czynnika transkrypcyjnego TFIIH Naprawa przez wycinanie jest połączona z transkrypcją, dzięki czemu transkrybowane (genetycznie aktywne) regiony DNA są naprawiane szybciej niż DNA nie ulegający transkrypcji. Umożliwia to ograniczenie wytwarzania produktów uszkodzonych genów.
Naprawa źle sparowanych zasad
wycinanie, dotyczący źle sparowanych zasad tworzonych podczas replikacji, które wymknęły się spod systemu korekty polimerazy DNA
W parach zasad źle dobranych podczas replikacji, niewłaściwa zasada znajduje się na nici potomnej. Dlatego też system naprawczy musi mieć sposób na odróżnienie nici rodzicielskiej od potomnej po przejściu widełek replikacyjnych, aby zapewnić usuwanie źle sparowanych zasad tylko z nici potomnej.
U Prokaryota pewne reszty adeniny są normalnie metylowane w sekwencji GATC na obu niciach. Metylacja nici potomnej jest opóźniona o kilka minut w stosunku do replikacji. Zatem nowo replikowany DNA jest hemimetylowany — nić rodzicielska jest metylowana, ale potomna jeszcze nie, dzięki czemu mogą być one rozróżnione. Błędnie sparowana para zasad (np. GT lub CA) jest rozpoznawana i wiązana przez kompleks białek MutS i MutL, który następnie łączy się z endonuklcazą MutH, specyficznie nacinając nić siostrzaną w pobliżu miejsca GATC. To nacięcie rozpoczyna wycinanie regionu zawierającego niewłaściwą zasadę.
Mechanizm rozróżniania nici starej od nowej u Eukariota jest nieznany.
Dziedziczne efekty mechanizmów naprawy
Xeroderma pigmentosum (XP) :
choroba autosomalna recesywna,
objawiaja się fenotypowo skrajną wrażliwością na światło słoneczne i dużą częstością występowania raków skóry.
U osób cierpiących na XP wadliwie działa mechanizm NER, wskutek czego duże uszkodzenia DNA, w tym spowodowane działaniem światła UV, pozostają nie naprawione.
XP jest powodowana uszkodzeniami przynajmniej siedmiu różnych genów, co wskazuje na złożoność mechanizmów naprawy przez wycinanie, działających w komórkach ssaków.
Wariant xeroderma pigmentosum (XP-V) jesl klinicznie bardzo podobny do klasycznej odmiany XP, ale komórki pochodzące od osobników z XP-V mają normalny mechanizm NER.
W celu utrzymania integralności DNA, po uszkodzeniu na skutek promieniowania, komórki XP-V muszą najprawdopodobniej polegać na alternatywnych mechanizmach syntezy naprawczej DNA. Osoby cierpiące na zespół Cockayne'a również są wrażliwe na światło słoneczne, co wynika z defektów mechanizmu naprawy przez wycinanie sprzężonego z transkrypcją, ale zaburzenia te nie są rakotwórcze