Produkcja antybiotyków
Wiele drobnoustrojów i roślin wydziela produkty nie związane z podstawowym
metabolizmem tych organizmów. Produkty takie zwane są
metabolitami wtórnymi. Bakterie i grzyby wytwarzają wiele tego rodzaju
„wtórnych metabolitów". Dużo z tych substancji znalazło istotne za-
stosowania jako leki, dodatki pokarmowe czy czynniki stymulujące.
W związku z tym wiele drobnoustrojów zyskało ogromne znaczenie
ekonomiczne. Odkrycie penicyliny i innych antybiotyków dało początek
nowej dziedziny mikrobiologii przemysłowej. Badania nad antybiotykami
oraz rozwój ich półsyntetycznych pochodnych przyniósł wielkie korzyści
w terapii medycznej. Praktycznie nie ma ograniczeń, jeśli chodzi o nowe
odkrycia, modyfikacje i zastosowania wtórnych metabolitów. Dalsze
możliwości w tej dziedzinie tkwią w selekcji mutantów z defektywnymi
mechanizmami regulacji metabolicznej.
Organizmy i odkrycia
Symbiotyczne i antagonistyczne stosunki między drobnoustrojami znane
są od XIX wieku. Punktem wyjścia do wyjaśnienia podstaw antybiozy
było zaobserwowanie przez A. Fleminga (1928), że kolonia grzyba
(Penicillium notatum) hamowała wzrost gronkowca. Związek wydzielany
przez Penicillium i dyfundujący do agaru nazwano penicyliną. Od tamtego
czasu otrzymano wiele związków o właściwościach antybiotyczych.
Antybiotyki zdefiniowane są jako substancje pochodzenia biologicznego,
które w małych stężeniach hamują wzrost drobnoustrojów. Rozróżnia się
aktywność hamującą wzrost (efekt bakteriostatyczny i fungistatyczny)
i aktywność „zabójczą" (efekt bakteriobójczy lub grzybobójczy), objawiającą
się zmniejszeniem liczby żywych komórek.
Drobnoustroje wytwarzające antybiotyki. Zdolność wytwarzania antybiotyków
wykazują głównie grzyby należące do grupy Aspergillales,
promieniowce i kilka innych bakterii. Spośród bakterii Streptomycetes
zadziwiają chemiczną różnorodnością wytwarzanych antybiotyków. Do
tej pory dobrze scharakteryzowano około 2000 antybiotyków, z których
w lecznictwie stosuje się około 50. Całkowita liczba dotychczas opisanych
antybiotyków jest znacznie większa, a są grupy drobnoustrojów, m.in.
bakterie trudne do hodowania i niektóre niższe grzyby, których dotychczas
nie zbadano pod kątem produkcji antybiotyków.
Znaczenie antybiotyków dla organizmu produkującego. O znaczeniu
antybiotyków dla organizmu producenta w jego środowisku glebowym
w zasadzie prawie nic nie wiadomo. Antybiotyki zazwyczaj powstają
w specjalnych szlakach syntetycznych będących częścią tzw. metabolizmu
wtórnego. Wtórne metabolity są produkowane w wyniku mechanizmów
syntezy i przez enzymy nie będące niezbędne do wzrostu i podstawowych
funkcji komórki. Stąd też wydawałoby się, że aparat genetyczny służący
syntezie antybiotyków byłby czymś uciążliwym dla organizmu i zatem
wyeliminowanym w trakcie ewolucji. Wychodząc z założenia, że jedynie
korzystne cechy zostają zachowane, antybiotyki muszą w naturalnym
środowisku ich producenta nadawać mu jakieś cechy korzystne, być może
we współzawodnictwie o ograniczone substraty. Jednakże tego rodzaju
stosunki antagonistyczne są prawie niemożliwe do wykazania w glebie,
gdyż ilości wytwarzanych antybiotyków są bardzo niewielkie, a w wielu
wypadkach hamują one nawet wzrost producenta.
Stopniowo przyjmowany jest pogląd, że w trakcie ewolucji czasem
zostaje zachowany jakiś bezużyteczny materiał genetyczny, nawet jeśli
wydaje się utrapieniem dla danego organizmu w dostępnych warunkach
eksperymentalnych. Być może przyroda jest nieco bardziej zachowawcza
niż sądzono we wczesnym okresie biologii molekularnej. Obecnie
antybiotyki i inne wtórne metabolity, których użyteczność dla organizmu
producenta nie jest zrozumiała, zaliczane są do produktów „powstających
na placu zabaw metabolizmu" lub uważane za „odpady metabolizmu".
Produkty tego typu pokazują jednakże, iż nawet wtórny metabolizm
bakterii, grzybów i roślin może być owocnym tematem badań w kierunku
zrozumienia ewolucji drobnoustrojów.
Wykazanie produkcji antybiotyku. Pierwsze antybiotyki wykryto w zasadzie
przez przypadek, obserwując strefy zahamowania wzrostu organizmów
będących w zasięgu ich działania. Tak więc na płytce z agarem
odżywczym, gęsto posianym szczepem indykatorowym (wskaźnikowym),
wzrost w pobliżu kolonii grzyba lub promieniowca ulega zahamowaniu.
Antybiotyk, dyfundując z organizmu producenta do agaru, powoduje
pojawienie się strefy zahamowania gęstego wzrostu bakteryjnego szczepu
wskaźnikowego (ryc. 10.4). Jako organizmy wskaźnikowe wykorzystuje
się w badaniach reprezentatywne drobnoustroje. Jakościowo można
wykazać produkcję antybiotyku przez dany organizm nanosząc go na
środek odpowiedniej płytki agarowej, a następnie posiewając szczepy
wskaźnikowe w postaci linii promieniście rozchodzących się od środka
(ryc. 10.5). Określenie, po odpowiednim czasie inkubacji, linii zahamowania
dla poszczególnych szczepów daje obraz zakresu aktywności
danego antybiotyku. Antybiotyki wykazują charakterystyczne różnice
skuteczności wobec gramdodatnich i gramujemnych bakterii, drożdży,
dermatofitów i innych organizmów.
Większość antybiotyków odkryto w trakcie intensywnego „skriningu".
Poszczególne etapy tej metody przedstawiono na rycinie 10.6.
Ilościowe oznaczenia. Główne metody ilościowego określenia siły
antybiotyku to dyfuzja na płytkach (ryc. 10.7) oraz mniej dokładna
metoda seryjnych rozcieńczeń. W metodzie płytkowej wypełnia się
szalki, do dokładnie odmierzonej wysokości, podłożem agarowym zawierającym
organizm wskaźnikowy (inokulum). Po zastygnięciu agaru
roztwory badanego antybiotyku wprowadza się albo do studzienek
wydrążonych w agarze, albo do metalowych cylinderków umieszczonych
na jego powierzchni. W trzeciej metodzie stosuje się krążki bibuły
nasączone roztworem antybiotyku. Jeśli wynik jest pozytywny, po
odpowiednim czasie inkubacji pojawiają się strefy zahamowania wzrostu.
Średnica strefy jest wprost proporcjonalna do logarytmu stężenia antybiotyku.
Ważne jest zapewnienie stałości wszystkich warunków, tj. składu
podłoża, grubości warstwy agaru, stężenia organizmu wskaźnikowego
w inokulum, czasu inkubacji i temperatury (ryc. 10.7).
W metodzie seryjnych rozcieńczeń badany antybiotyk rozcieńcza się
w stosunku 1: 2 w zaszczepionym roztworze odżywczym. Po odpowiednim
czasie inkubacji najmniejsze rozcieńczenie, które całkowicie zahamowało
wzrost bakterii, określane jest jako „minimalne stężenie hamujące"
antybiotyku = MIC (wobec konkretnego organizmu testowego).
Znanych jest kilka metod określania synergistycznego lub antagonistycznego
działania różnych substancji oraz badania ich skuteczności
wobec innych organizmów (np. pierwotniaki, glony, robaki, komórki
w hodowli tkankowej, wirusy).
Antybiotyki ważne w lecznictwie
W tym miejscu zostaną omówione jedynie nieliczne pożyteczne antybiotyki.
Naczelne miejsce nadal zajmuje penicylina (β-laktam) wytwarzana
przez Penicillium notatum, P. chrysogenum i kilka innych grzybów,
szczególnie od czasu pojawienia się penicylin półsyntetycznych. Te
ostatnie uzyskuje się rozszczepiając cząsteczkę penicyliny acylazą i wprowadzając
do powstałego kwasu 6-aminopenicylanowego jeden z licznych
łańcuchów bocznych (ryc. 10.8). Etap metabolizmu bakteryjnego hamowany
przez penicylinę omówiono wcześniej (rozdz. 2.2.4). Penicylina jest
w zasadzie nietoksyczna dla ludzi, z wyjątkiem małego odsetka osób,
u których rozwijają się reakcje alergiczne. Wiele bakterii wytwarza
enzym zwany penicylinazą (β-laktamaza), który rozszczepia pierścień
β-aktamowy penicyliny czyniąc antybiotyk nieskutecznym. Wiele spośród
półsyntetycznych penicylin wytwarzanych z kwasu 6-aminopenicylanowego
jest niewrażliwych na działanie penicylinazy. W dodatku, są na tyle
stabilne w środowisku kwasowym, że mogą być podawane doustnie.
Cefalosporyny są wydzielane przez gatunki grzyba Cephalosporium.
Cefalosporyna C zawiera pierścień β-laktamowy i wykazuje podobieństwo
do penicyliny; jest zaliczana do grupy antybiotyków β-laktamowych (ryc.
10.9). Niektóre cefalosporyny półsyntetyczne są produkowane przez
podstawienie kwasu 7-aminocefalosporanowego, uzyskanego z cefalosporyny,
różnymi grupami bocznymi. Działanie półsyntetycznych cefalosporyn
jest podobne do działania półsyntetycznych penicylin.
Streptomycynę wyizolowano z podłoża hodowlanego Streptomyces
griseus, lecz syntetyzują ją też inne gatunki Streptomyces. Cząsteczka
składa się z trzech ugrupowań: N-metylo-L-2-glukozoaminy, metylopentozy
i pochodnej inozytolu zawierającej dwie reszty guanidylowe (ryc. 10.9).
Streptomycyna jest skuteczna wobec wielu bakterii gramujemnych i kwasoopornych
niewrażliwych na działanie penicyliny. Może ona jednak
powodować u ludzi dość poważne skutki uboczne o charakterze alergii.
Streptomycyna z powodzeniem jest stosowana również w praktyce
weterynaryjnej i w chorobach roślin.
Chloromycetynę (chloramfenikol) po raz pierwszy odkryto w hodowli
Streptomyces venezuelae, lecz obecnie jest otrzymywana syntetycznie
(ryc. 10.9). Jest to bardzo stabilny antybiotyk, skuteczny wobec wielu
bakterii gramujemnych, krętków, riketsji, promieniowców i dużych
wirusów.
Tetracykliny są wydzielane przez różne promieniowce, także przez
Streptomyces aureofaciens. Są one spokrewnione chemicznie i są pochodnymi
szkieletu naftacenowego. Do najlepiej znanych należą chlorotetra-
cyklina (aureomycyna), oksytetracyklina (terramycyna) i tetracyklina.
Charakteryzują się szerokim spektrum aktywności i są dobrze tolerowane
przez ludzi.
Pochodzenie antybiotyków makrolidowych (erytromycyna, karbomycyna
A, pikromycyna itp.) jest zróżnicowane. Antybiotyki te mają
stosunkowo dużą masę cząsteczkową, wynikającą z obecności wieloczłonowego
pierścieniowego laktonowego.
Pierwszym antybiotykiem wyizolowanym z hodowli promieniowców
(w 1940 r.) była aktynomycyna. Jest to właściwie mieszanina kilku
związków zawierających fenoksazonowy chromofor, lecz podstawionych
różnymi łańcuchami polipeptydowymi (ryc. 10.9).
Ostatnią grupę w tym krótkim omówieniu tworzą antybiotyki polipeptydowe
(gramicydyna S, polimyksyny, bacytracyna, rystocetyna itp.).
Polimyksyna Β składa się z pierścienia zbudowanego z siedmiu aminokwasów
oraz łańcucha bocznego połączonego z pierścieniem wiązaniem
peptydowym (ryc. 10.10). Antybiotyki polipeptydowe charakteryzują się
dużym powinowactwem do błony cytoplazmatycznej, w związku z czym
są toksyczne zarówno dla bakterii, jak i dla organizmów eukariotycznych.
Cecha ta silnie ogranicza ich użyteczność. Niektóre z antybiotyków
polipeptydowych, z powodu ich zdolności selektywnego transportu jonów
przez błony biologiczne (rozdz. 7.7), znajdują zastosowanie w badaniach
naukowych jako jonofory. Na przykład, walinomycyna ułatwia transport
potasu przez błony. Antybiotyk ten jest zbudowany z dwunastoczłonowego
pierścienia zawierającego walinę i 2-hydroksyizowalerianę. Jego struktura
przestrzenna pozwala na umiejscowienie atomu potasu wewnątrz cząsteczki.
Z powodu obecności waliny i izowaleriany kompleks walinomycy-
na-K+ charakteryzuje się lipofilnością i łatwo przechodzi przez błonę
lipidową. Dodatek walinomycyny do zawiesiny komórek powoduje zatem
utratę jonów potasu.
W przemyśle farmaceutycznym stosującym nowoczesne technologie
w produkcji antybiotyków nigdy nie używa się oryginalnych organizmów,
lecz mutanty zapewniające znacznie większą wydajność procesu. Pleśń
badana przez Fleminga dawała około 3 μg penicyliny w 1 ml hodowli,
podczas gdy obecnie stosowane szczepy produkują jej co najmniej 2000
razy więcej. Tak wysoka wydajność jest wynikiem mutacji i selekcji
bardziej aktywnych szczepów, lepszych podłoży hodowlanych oraz efektem
badań w kierunku optymalizacji procesu produkcyjnego. W miarę poznawania
szlaków produkcji wielu antybiotyków rozwijają się dalsze
badania zmierzające do zwiększenia wydajności w wyniku izolacji
i selekcji mutantów.
Mikotoksyny
Mikotoksyny są wtórnymi metabolitami grzybów, trującymi dla ludzi
i zwierząt. Znanym producentem mikotoksyn jest buławinka czerwona
Claviceps purpurea (rozdz. 5.4). Wytwarza ona alkaloidy, pochodne
kwasu lizergowego (ergotamina, ergotoksyna) o dużym znaczeniu
w leczeniu schorzeń sercowo-naczyniowych i migren. Są one również
używane jako środki halucynogenne. Podczas gdy wspomniane alkaloidy
nadal są produkowane przez sztuczne zakażenie zboża buławinką,
coraz większego znaczenia zaczynają nabierać hodowle innych
szczepów, m.in. C. paspali.
Wiele grzybów, łącznie z niektórymi podstawczakami oraz mniej
znanymi przedstawicielami Myxomycetes, wytwarza bardzo silne toksyny
oraz inne związki organiczne o często nieznanym składzie chemicznym,
które mogą mieć inne interesujące właściwości. Do toksyn należą m.in.
amanitatoksyna wytwarzana przez trujący grzyb Amanita phalloides oraz
mikotropina i muskaryna (A. patherina, A. muscaria i Inocyte patouillardi).
Badania nad wtórnymi metabolitami grzybów rozpoczęto dopiero niedawno.
Ostatnio miksotoksyny stały się przedmiotem ogólnego zainteresowania,
gdy na skutek zatrucia aflatoksyną wyginęły tysiące indyków.
Aflatoksyny są pochodnymi kumaryny wytwarzanymi przez szczepy
Aspergillus flavus, A. parasiticus i A. oryzae, jak również przez inne
grzyby. Mogą się znajdować w różnych zapleśniałych produktach spożyw-
czych, jak orzeszki ziemne, zboże, nasiona roślin oleistych i karma
zwierzęca. Związki te mają również charakter rakotwórczy.