Oznaczanie aktywności aminotransferazy asparaginianowej i alaninowej.
Wykonanie:
Celem ćwiczenia jest zapoznanie praktyczne ze spektrofotometryczną metodą oznaczania aktywności aminotransferazy asparaginianowej i alaninowej, mające podstawowe znaczenie przy przenoszeniu grup aminowych aminokwasów.
Oznaczanie aktywności aminotransferazy asparaginianowej.
Otrzymany w kolbce roztwór uzupełniamy wodą destylowaną do kreski i dokładnie mieszamy. Do czterech 1,5 ml probówek Eppendorfa (2 próby pełne i 2 materiałowe) dodajemy 0,5 ml zbuforowanego roztworu L-asparaginianu i 2-oksoglutaranu, probówki wstawiamy do łaźni wodnej o temp. 30°C i po 5 minutach do prób pełnych odmierzamy 0,5 ml enzymu z kolbki. Zawartość szybko mieszamy i wstawiamy do łaźni wodnej na 30 minut. Po tym czasie do wszystkich probówek dodajemy po 0,5 ml 4% kwasu trichlorooctowego, a dodatkowo do prób materiałowych po 0,5 ml wyciągu z enzymu z kolbki. Zawartość każdej probówki mieszamy i odwirowujemy w wirówce przez 5 minut. Następnie z każdej probówki przenosimy po 0,5 ml klarownego płynu znad osadu do kolejnych czterech probówek Eppendorfa i dodajemy do każdej 1 ml roztworu NADH + H+ oraz 10 μl mieszaniny dehydrogenaz (jabłczanowej i L-mleczanowej). Po upływie 10 minut od momentu dodania enzymu odczytujemy absorbancję dla prób przy długości fali 340 nm w fotometrze wyzerowanym wobec wody destylowanej.
Oznaczanie aktywności aminotransferazy alaninowej.
Postępujemy podobnie jak w przypadku oznaczania aminotransferazy asparaginowej. Najpierw do czterech probówek Eppendorfa dodajemy 0,5 ml zbuforowanego roztworu L-alaniny i 2-oksoglutaranu, probówki wstawiamy do łaźni wodnej na 5 minut, dodajemy do prób pełnych wyciąg z enzymu, całość zostawiamy na 30 minut. Po tym czasie do prób materiałowych dodajemy 0,5 ml wyciągu z enzymu, wszystkie probówki mieszamy i wstawiamy do wirówki na 5 minut. Następnie przenosimy po 0,5 ml klarownego płynu znad osadu do czystych probówek Eppendorfa, dodajemy po 1 ml roztworu NADH + H+ oraz 10 μl dehydrogenazy L-mleczanowej. Po upływie 10 minut badamy absorbancję dla prób przy długości fali 340 nm.
Wyniki i obliczenia:
Dla aminotransferazy asparaginianowej:
Próba materiałowa I |
Próba materiałowa II |
Próba pełna I |
Próba pełna II |
Użyta różnica absorbancji |
0,428 |
0,473 |
0,170 |
0,117 |
0,258 |
Dla aminotransferazy alaninowej:
Próba materiałowa I |
Próba materiałowa II |
Próba pełna I |
Próba pełna II |
Użyta różnica absorbancji |
0,459 |
0,466 |
0,142 |
0,223 |
0,280 |
Obliczenia dla aminotransferazy asparaginianowej:
0,258 / 6,22 = 0,04148 μmoli produktów 2-oksokwasów
0,5 ml - 0,04148
1,5 ml - x
x = 0,12444 μmola szczawiooctanu
0,5 ml - 0,12444 μmola
10 ml - y
y = 2,4888 μmola szczawiooctanu
2 ml - 2,4888 μmola szczawiooctanu
1 ml - z
z = 1,2444
dla 1,5 g siewek 124,44 μmola szczawiooctanu
dla 1 g siewek, więc 82,96 μmola szczawiooctanu
po uwzględnieniu czasu reakcji 30 min aktywność aminotransferazy asparaginianowej:
2,77 μmola szczawiooctanu / min * g siewek
Obliczenia dla aminotransferazy alaninowej:
0,280 / 6,22 = 0,0450 μmoli produktów 2-oksokwasów
0,5 ml - 0,0450 μmol
1,5 ml - x
x = 0,135 μmola pirogronianu
0,5 ml - 0,135 μmola
10 ml - y
y = 2,7 μmola pirogronianu
2 ml - 2,7 μmola szczawiooctanu
1 ml - z
z = 1,35
dla 1,5 g siewek 135 μmola szczawiooctanu
dla 1 g siewek, więc 90 μmola szczawiooctanu
po uwzględnieniu czasu reakcji 30 min aktywność aminotransferazy asparaginianowej:
3 μmola szczawiooctanu / min * g siewek
2,77 / 3 = 0,923 (stosunek aktywności aminotransferazy asparaginianowej do alaninowej)
1