Raport mikroby (1), mikrobiologia przemysłowa


Raport z ćwiczenia I

Grupa II

Temat: Skrining środowiskowy.

  1. Wstęp teoretyczny

Skrining srodowiskowy jest to poszukiwanie mikroorganizmów (grzybów, promieniowców o znaczeniu biotechnologicznym). Obejmuje proces zabiegów mających na celu wykrycie i wyizolowanie spośród ogromnej liczby drobnoustrojów tych, które odpowiadają stawianym wymaganiom biotechnologicznym.

Przydatne biotechnologicznie mikroorganizmy powinny być:

-dostępne w postaci czystej kultury i łatwe do przechowywania przez dłuższy okres

czasu

-stabilne genetycznie i łatwo ulegać manipulacjom genetycznym

-proste w hodowli na dużą skale i na łatwo dostępnych podłożach przemysłowych

-mikroorganizm nie może być patogenny

Preparaty enzymatyczne należą do najlepiej rozwiniętego działu biotechnologii. Ich produkcja jest możliwa dzięki naturalnej zdolności mikroorganizmów do produkcji szerokiej gamy enzymów, np. lipazy i proteazy.

Technologia produkcji preparatów enzymatycznych obejmuje m. in. wybór mikroorganizmu, przygotowanie hodowli, zaszczepienie podłoża produkcyjnego, biosyntezę enzymu, wydzielenie i zagęszczenie preparatu enzymatycznego.

  1. Materiały i metody

Selekcje szczepów bakteryjnych wykonano poprzez serie rozcieńczeń próbek pochodzących z różnych środowisk: woda, gleba, osad czynny, osad denny.

Z dwóch ostatnich rozcieńczeń danej próby wykonano wysiew tarty na pożywkę stałą. Pożywka do izolacji bakterii lipolitycznych zawierała trójbutrynę, a do izolacji bakterii proteolitycznych odtłuszczone mleko w proszku. Płytki z pożywkami inkubowano przez 7 dni w temperaturze 20°C. Następnie po upływie 7 dni zliczano kolonie bakterii oraz przenoszono 3 najbardziej aktywne szczepy lipolityczne i proteolityczne z każdego środowiska do pożywki płynnej. Próby inkubowano przez kolejne 7 dni w temperaturze 26°C.

Po upływie 7 dni oznaczano aktywność lipazy i aminopeptydazy w hodowlach. Użyto 2 substratów: MUF-butyrate do oznaczania lipazy i MCA-lecine do oznaczania aminopeptydazy.

Hodowle bakterii lipolitycznych i proteolitycznych poddano wirowaniu 10tys obrotów/min przez 10 minut w temperaturze 4°C aby oddzielić płyn pohodowlany zawierający dany enzym (lipazy lub aminopeptydazy) od biomasy komórek.

Następnie przygotowano mieszaninę reakcyjną w dwóch próbach dla każdego enzymu. W tym celu pobrano po 1ml płynu pohodowlanego i dodano do niego 0,125ml buforu fosforanowego i 0,125ml odpowiedniego substratu. Wykonano także próbę kontrolną nie zawierającą substratu.

Po wykonaniu prób mierzono ich aktywność.

  1. Wyniki:

Strefy przejaśnienia wokół bakterii są charakterystyczne dla drobnoustrojów proteolitycznych i lipolitycznych dzięki czemu łatwiej odróżnić je od pozostałych.

T-pożywka z trójbutryną, M-pożywka z odtłuszczonym mlekiem

X=a*R/v

a-średnia ze zliczonych bakterii

R-rozcieńczenie

v-objętość

Nr.próby

Środowisko

Pożywka

Rozcieńczenie

Ilość bakterii

Średnia ilość bakterii

X

1

woda

T

10^3

8

2

woda

T

10^3

4

6

60000

3

woda

M

10^3

14

4

woda

M

10^3

7

10,5

105000

5

woda

T

10^2

26

6

woda

T

10^2

8

17

17000

7

woda

M

10^2

21

8

woda

M

10^2

20

20,5

20500

Nr.próby

Środowisko

Pożywka

Rozcieńczenie

Ilość bakterii

Średnia ilość bakterii

X

1

osad czynny

T

10^6

1

2

osad czynny

T

10^6

1

1

10.000000

3

osad czynny

M

10^6

1

4

osad czynny

M

10^6

0

0,5

5.000000

5

osad czynny

T

10^5

1

6

osad czynny

T

10^5

1

1

1.000000

7

osad czynny

M

10^5

2

8

osad czynny

M

10^5

1

1,5

1.500000

Nr.próby

Środowisko

Pożywka

Rozcieńczenie

Ilość bakterii

Średnia ilość bakterii

X

1

gleba

T

10^3

11

2

gleba

T

10^3

12

11,5

115000

3

gleba

M

10^3

0

4

gleba

M

10^3

0

0

0

5

gleba

T

10^4

2

6

gleba

T

10^4

3

2,5

250000

7

gleba

M

10^4

1

8

gleba

M

10^4

0

0,5

50000

Nr.próby

Środowisko

Pożywka

Rozcieńczenie

Ilość bakterii

Średnia ilość bakterii

X

1

osad denny

T

10^4

1

2

osad denny

T

10^4

0

0,5

50000

3

osad denny

M

10^4

16

4

osad denny

M

10^4

8

12

1200000

5

osad denny

T

10^5

0

6

osad denny

T

10^5

0

0

0

7

osad denny

M

10^5

0

8

osad denny

M

10^5

0

0

0

Pochodzenie szczepu

Aktywność lipazy μmol MUF/l/h,

aktywność całkowita

Aktywność aminopeptydazy μmol MLA/l/h,

aktywność całkowita

Gleba

2,305

3,908

2,410

3,346

Woda

2,264

5,228

1,026

Osad czynny

2,931

4,662

2,59

2,898

Osad denny

2,662

0

0

4) Wnioski: Szczepy występujące w glebie charakteryzują się wysoką aktywnością enzymów.

Brak jakiejkolwiek aktywności aminopeptydazy, w przypadku bakterii występujących w osadzie dennym, może świadczyć o nieobecności aminopeptydazy w podłożu bądź o źle zaszczepionych próbach.



Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
Lab 2 Dezintegracja mechaniczna, PWr, Mikrobiologia przemysłowa laboratorium, Instrukcje
Clostridum, Mikrobiologia przemysłowa, Mikrobiologia
Ćwiczenie 1. immobilizacja, Mikrobiologia przemysłowa
dezintegracja2, mikrobiologia przemysłowa
Mikrobiologia przemysłowa opracowanie labolatoria I
mikrobiologia przemyslowa egzam Nieznany
Rozpiska Mikrobiologia Przemyslowa 09, BIO, PCR - DGGE, In Situ, API, Lab 1
Mikrobiologia przemysłowa egz
(), mikrobiologia przemysłowa L, Metody?zintegracji komórek
Mikrobiologia w przemyśle kosmetycznym
MIKROBIOLOGIA PRZEMYSŁOWA wykłady 12 2013
Mikrobiologia przemyslowa wykłady
Mikrobiologia przemysłowa W03, mikrobiologia, mikroprzem
Zagadnienia na kolokwium z laboratoriów nr 2 by G.K., Mikrobiologia przemysłowa
mik, Studia, semestr IV, BKiIG, Mikrobiologia przemysłowa, Laborki, lab1

więcej podobnych podstron