Testy biodegradacji
Prowadzone są w celu określenia podatności związków chemicznych i ich mieszanin na mikrobiologiczny rozkład.
Brak rozkładu - związki są odporne na biodegradację lub toksyczne dla mikroorganizmów
Łatwa rozkładalność - obecność takiego związku w mieszaninie może hamować rozkład innych na skutek prawie wyłącznego żywienia się przez mikroorganizmy tym związkiem i nie pobieraniu pozostałych
W procesach biodegradacji pojawiają się często produkty pośrednie toksyczne dla mikroorganizmów lub inhibitujące dalsze przemiany
Rozkład wielu związków zachodzi w drodze kometabolizmu - jeden związek stanowi rzeczywiste źródło węgla i energii, a drugi rozkładany jest „przy okazji”
Badania biodegradacji zanieczyszczeń służą do:
atestacji związków chemicznych i innych wyrobów
wyznaczania dopuszczalnych stężeń zanieczyszczeń w środowisku
prognozowania możliwości biorozkładu w środowisku
prognozowania możliwości usuwania zanieczyszczeń na drodze biologicznej ze ścieków i wód uzdatnianych dla celów spożywczych
Polegają one na określeniu przebiegu rozkładu testowanego związku organicznego przez mikroorganizmy, dla których stanowi on jedyne źródło węgla i energii
Sposób wykonania testu zależy od celu któremu ma on służyć:
badanie rozkładu związku w wodach powierzchniowych pod kątem samooczyszczania wód: małe stężenia związku i niewielkie zaszczepienie
badanie podatności związku na rozkład biologiczny w procesie oczyszczania ścieków: duże stężenia związku, duże zaszczepienie
określenie podatności na biodegradację związku na składowisku odpadów, w osadach dennych zbiorników wodnych itp.: warunki beztlenowe, średnie lub duże zaszczepienie
Środowisko dla testów: woda lub gleba
Wytyczne wykonywania testów - różne organizacje, np.:
najczęściej OECD (Section 3: Degradation and Accumulation: http://www.oecd.org/document/57/0,3343,en_2649_34377_2348921_1_1_1_1,00.html)
krajowe Zał. do rozp. Ministra Zdrowia z dnia 28 lipca 2003 roku (Dz. U. Nr 232 poz. 2343) METODY PRZEPROWADZANIA BADAŃ WŁAŚCIWOŚCI FIZYKOCHEMICZNYCH, TOKSYCZNOŚCI I EKOTOKSYCZNOŚCI SUBSTANCJI I PREPARATÓW CHEMICZNYCH
normy EN / ISO, np.: ISO 9439:1999 Water quality -- Evaluation of ultimate aerobic biodegradability of organic compounds in aqueous medium -- Carbon dioxide evolution test
Badania w wodzie
Wg. OECD (sekwencja testów)
testy przesiewowe
potwierdzające
symulacyjne
Testy przesiewowe:
niewielkie zaszczepienie i niespecyficzne metody oceny postępu procesu
Związek jest biodegradowalny: jeżeli w czasie 28 dni nastąpi eliminacja RWO w 70 %, BZT w 60 % lub wytworzone zostanie 60 % CO2 ;
Testy potwierdzające:
badania dłuższe i specyficzne metody kontroli ubytku; jeżeli rozkładowi ulegnie 20 % substancji to wstępnie uznaje się że jest ona biorozkładalna
Testy symulacyjne:
najczęściej w laboratoryjnych reaktorach imitujących moduł biologiczny oczyszczalni ścieków, kompostowników, komór fermantacyjnych
Oprócz testów biodegradowalności OECD podaje też testy bioakumulacji, np. związków lipofilnych (tłuszczolubnych charakteryzujących się dużymi wartościami współczynniku podziału oktanol/woda)
Nieco inne postępowanie proponuje Grady: C.P.L. Grady, Biodegradation: its measurement and microbiological basis, Biotechnology and Bioengineering 27 (1985), pp. 660-674
testy wstępne w podłożu mineralnym z użyciem mikroorganizmów nie zaadoptowanych
testy pośrednie w podłożu z dodatkowym węglem z użyciem mikroorganizmów zaadoptowanych do rozkładu badanego związku
testy ostateczne w podłożu mineralnym z użyciem mikroorganizmów zaadoptowanych
symulacyjne
Badania w środowisku glebowym
Przewiduje je m.in. OECD w środowisku gleb: piaszczystych kwaśnych, gliniastych słabo kwaśnych, obojętnych lub zasadowych
Czynniki limitujące biodegradowalność
budowa związku i wynikające z niej właściwości fizyko-chemiczne
skład podłoża (środowiska rozwoju): w tym:
skład podłoża mineralnego
obecność innych źródeł węgla
odczyn podłoża
stężenie substancji
stężenie tlenu po warunki beztlenowe
temperatura i naświetlenie
Elementy struktury związku wpływające na biodegradowalność
rozgałęzienia łańcucha związku organicznego
czwartorzędowy atom węgla
grupy izopropylowe na końcu łańcucha
liczba wiązań podwójnych i ich wzajemne usytuowanie
podstawniki: halogenowe, nitrowe i nitrozowe, cyjanowe, aminowe
podstawniki metylowe, hydroksylowe, halogenowe na pierścieniu aromatycznym
liczba pierścieni aromatycznych i ich wzajemne usytuowanie
heteroatomy w cząsteczce
budowa cykliczna
budowa polimerowa
wiązania epoksydowe
Jak zwiększyć efektywność biodegradacji
Poprzez wykorzystanie synergicznego działania różnych organizmów szczepiąc podłoże mieszaną kulturą mikroorganizmów pobranych z naturalnych biocenoz poddawanych działaniu substancji które chcemy rozłożyć
Poprzez zaadoptowanie mikroorganizmów do danych związków; mają one czas na wytworzenie enzymów indukowanych. Proces ten można wspomagać dodając odpowiednio dobrane mikroelementy i witaminy oraz inne aktywatory enzymów
Niespecyficzne mierniki postępu biodegradacji
ChZT - chemiczne zapotrzebowanie tlenu; ilość mg tlenu / dm3 cieczy koniecznego dla utlenienia w zdefiniowanych warunkach badanego związku
BZT - biologiczne zapotrzebowanie tlenu; ilość mg tlenu / dm3 cieczy zużytego w określonym czasie (najczęściej 5 dób) przez mikroorganizmy
RWO - rozpuszczalny węgiel organiczny; mg związku org. przeliczone na C / dm3
wytworzony CO2 - ilość dwutlenku węgla wytworzona w wyniku rozkładu testowanej substancji w czasie trwania pomiaru; mg O2 / mg substancji
Dla oceny postępu biodegradacji tlenowej poprzez pomiar ilości wydzielonego CO2 konieczne jest wyznaczenie (obliczenie) ilości tlenu niezbędnego dla całkowitego utlenienia substancji. Teoretyczne zapotrzebowanie tlenu - TZT - można obliczyć posługując się równaniem chemicznym procesu utleniania lub gotowymi wzorami. Obliczmy obiema metodami TZT dla glikozy (C6H12O6), sacharozy (C12H22O11), glicyny (C2H5O2N), standardowego ścieku (C44H85O21N7)
Produktami mikrobiologicznego utleniania związków organicznych zawierających węgiel, wodór, tlen i azot są odpowiednio: CO2, H2O, NH3
Wzór ogólny dla takiego utleniania:
CcHhOoNn + (c+(h - 3n)/4 - o/2)O2 → c CO2 + (h - 3n)2 H2O + n NH3
Metodyki badania postępu biodegradacji celem odniesienia uzyskanych wyników w konkretnym teście do standardowej sytuacji przewidują użycie w tym celu substancji porównawczych. Często wykorzystuje się w tym celu anilinę, octan sodu, benzoesan sodu, kwas cytrynowy, kwas adypinowy, 3-nitrofenol, dodecylosulfonianu i in. Jak różne wyniki można uzyskać w poszczególnych testach i jak one różnią się między sobą ukazuje poniższa tabela.
Związek |
Test OECD |
Test zamkniętych butelek |
Test MITI |
Test STURMA |
Test AFNOR |
Test Zahn- Wellens |
|
% O2 |
% TZT |
% TZT |
% CO2 |
% O2 |
% O2 |
anilina |
93 |
90 |
99 |
92 |
- |
100 |
2-chloro-anilina |
0 |
0 |
0 |
0 |
- |
94 |
kwas cytrynowy |
100 |
90 |
0 |
97 |
100 |
85 |
kwas adypinowy |
96 |
83 |
92 |
91 |
- |
100 |
3-nitro-fenol |
95 |
2 |
56 |
60 |
98 |
84 |
dodecylo-sulfonian |
100 |
85 |
70 |
82 |
100 |
97 |
Klasyfikacja biodegradowalności:
|
łatwo rozkładalny |
rozkładalny |
oporny |
% przemiany |
> 80 |
> 60 |
< 20 |
Podatność na biodegradowalność w środowisku wodnym często wyrażana jest stosunkiem BZT5 do ChZT oraz spadkiem ChZT
BZT5 / ChZT |
Spadek ChZT |
Klasa |
> 0,5 |
> 90 |
łatwo rozkładalny |
0,4-0,5 |
50-90 |
rozkładalny |
0,2-0,4 |
10-50 |
słabo rozkładalny |
< 0,2 |
< 10 |
oporny |
Podatność na biodegradowalność może być też wyrażona czasem półtrwania rozkładu τ1/2 , czyli czasem niezbędnym dla rozłożenia
50 % początkowej ilości substratu. Dla reakcji I rzędu jest on niezależny od stężenia, a dla reakcji innych rzędów zależy od stężenia początkowego
Wyniki badań biodegradowalności i toksyczności substancji chemicznych pozwalają na zakwalifikowanie ich do odpowiedniej klasy podawanej w kartach charakterystyki substancji i innych dokumentach
8