..... uuspoaarKa azotowa
1 Mo
NO,
roślin nie jest w stanie tolerować. Ponadto w większości gleb jon NH4+ jest utleniany do azotanu przez żyjące w nich bakterie chemosyntetyzujące, np. Nitrosomonas i Nit-robacter.
Pobieranie N03~, tak jak i wszystkich innych jonów, odbywa się z wydatkowaniem energii (patrz rozdz. 4.3.1.2). Roślina czerpie energię z procesów oddechowych, jej podaż zależy zatem od dostępu tlenu. W glebach słabo przewietrzanych i w niskiej temperaturze produkcja energii może być za mała i na skutek tego mogą wystąpić trudności w pobieraniu azotanów.
Redukcja azotanów poprzedza ich właściwą asymilację, czyli redukcyjną aminację 2-ok-sokwasów (a-ketokwasów). Redukcja N03~ do NH. wymaga wydatkowania dużej ilości energii: sumarycznie redukcja 1 jonu N03~ zużywa 8 elektronów:
N+s N+s N+1 N."1 N"3
(NO3-) (NH4+)
Proces redukcji azotanów przebiega dwustopniowo. Jest on przykładem ścisłej kooperacji pomiędzy różnymi przedziałami komórki roślinnej. Pierwszy etap tego procesu, redukcja azotanów do azotynów:
NO3- i NAD(P)H I H+ »N02~ + NAD(P) + H20
zachodzi w cytoplazmie. Etap ten katalizuje reduktaza azotanowa. Typowym donorem elektronów dla reduktazy azotanowej jest NADH. Organizmy roślinne mogą zawierać więcej niż jedną reduktazę azotanową. W glonach eukariotycznych i w korzeniach traw obok enzymu specyficznego względem NADH stwierdzono także występowanie niespecyficznej reduktazy, mogącej korzystać
z NADH lub NADPH. Główne cechy reduk-taz azotanowych pochodzących z roślin wyższych i glonów są bardzo podobne. Enzym ten jest homotetramerem zawierającym po jednej cząsteczce FAD, hemu (cytochrom 6557) i molibdenopteryny w każdej z czterech podjednostek białkowych. Kofaktory te pośredniczą w przeniesieniu elektronów na cząsteczkę N03“ według schematu:
NAD(P)H\ / FAD y § cyt bred v / Mo5
NAD(P)+ § 'FADH2' v cyt ba
Rośliny rosnące w środowisku pozbawionym molibdenu nie są zdolne do korzystania z jonów N03“ jako źródła azotu.
Reduktaza azotanowa jest jednym z niewielu enzymów roślinnych, których syntezę reguluje egzogenny substrat na poziomie ekspresji genu. Jeśli rośliny otrzymują azot w postaci jonu NH4+, to nie syntetyzują reduktazy azotanowej, natomiast po podaniu N03“ we wszystkich tkankach następuje indukcja syntezy tego enzymu. Azotan musi być stale obecny, aby utrzymać stacjonarny poziom enzymu w komórce, ponieważ białko reduktazy ulega szybkiej degradacji. W wielu typach komórek jon amonowy jest represo-rem syntezy reduktazy azotanowej.
Równolegle z regulacją przez substrat syntezę de novo, a także aktywność istniejącej już reduktazy azotanowej kontroluje światło. Na przykład w gorczycy (Sinapis alba) właściwym induktorem syntezy enzymu jest azotan, natomiast światło absorbowane przez system fitochromowy moduluje ten proces.
Aktywność enzymu można stwierdzić albo zarówno w częściach nadziemnych, jak i podziemnych, albo też wyłącznie w korzeniach lub w pędach. Różnice te określone są genetycznie. Wydaje się, że istnieje związek między środowiskiem, w którym występuje