2906542989

2906542989



[10] ROŚLINNE nukleazy 207

DNA. W warunkach stabilizujących strukturę drugorzędową DNA nukle-aza z fasoli złocistej katalizuje hydrolizę natywnego DNA faga T7 do kilkudziesięciu liniowych fragmentów, które w tych warunkach są oporne na dalsze działanie enzymu. Zmiana warunków reakcji na sprzyjające rozluźnieniu podwójnego heliksu powoduje całkowitą degradację dwuni-ciowych fragmentów do jedno-, dwu- i trójnukleotydów. G h a n g a s i wsp. (51) wykazali również, że nukleaza z fasoli złocistej hydrolizuje „lepkie końce” faga X, które są właśnie jednoniciowymi fragmentami na końcach dwuniciowej cząsteczki DNA.

Uwagi końcowe

Zebrane i omówione w niniejszym artykule dane wskazują, że właściwości enzymów z roślin wyższych rozkładających DNA odbiegają od właściwości analogicznych enzymów drobnoustrojów i zwierząt. Z materiału roślinnego udało się wyizolować, jak do tej pory, jedynie jeden typ enzymów degradujących DNA. Enzymy te charakteryzują się brakiem specyficzności wobec cukrowej reszty substratu, a wykazują dość wysoką specyficzność wobec określonych struktur przestrzennych DNA. Dokładne poznanie mechanizmu regulacji aktywności oraz sposobu działania nukleaz typu I na DNA jest interesujące z uwagi na możliwość badań nad regulacją ekspresji genów w komórkach roślin wyższych. Enzymy te mogą również służyć do badania drugo- i trzeciorzędowej struktury różnych DNA. Niektóre z nukleaz typu I znalazły już zastosowanie w tego rodzaju badaniach (15).

Zaakceptowano 23.12.1978

PIŚMIENNICTWO

1.    And o T., (1966), Biochim. Biophys. Acta 114, 158—168.

2.    Sutton W. D., (1971), Biochim. Biophys. Acta 240, 522—531.

3.    V o g t V. M., (1973), Eur. J. Biochem. 33, 192—200.

4.    Rushizky G. W., Shaternikow V. A., Mozejko J. H., Sober H. A., (1975), Biochemistry, 14, 4221-^1226.

5.    G od son G. N., (1973), Biochim. Biophys. Acta, 308, 59—67.

6.    Linn S., Lehman I. R., (1965), J. Biol. Chem. 240, 1287—1293.

7.    Kato A. C., Bartok K., F ras er M. J., Denhardt D. T., (1973), Biochim. Biophys. Acta, 308, 68—78.

8.    Johnson    P. H., Laskowski    M.,    Sr., (1970),    J. Biol. Chem., 245, 891—898.

9.    Kroeker    W. D., Kowalski    D.,    Laskowski M., Sr., (1976), Bioche

mistry, 15, 4463—4467.

10.    Hanson D. M., Fairley J. L.,    (1969), J. Biol.    Chem., 244, 2440—2449.

11.    Kroeker    W. D., Hanson D.    M.,    Fairley    J. L., (1975), J. Biol. Chem.,

250, 3767—3772.



Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
[5] ROŚLINNE NUKLEAZY 201 jonów Zn2+ w stężeniu co najmniej 10-4M jest absolutnie konieczna do
07 Ćwiczenie 10.14. Jednoczesne izolowanie DNA i RNA z materiału biopsyjnego, kultur komórkowych, r
[5] ROŚLINNE NUKLEAZY 201 jonów Zn2+ w stężeniu co najmniej 10-4M jest absolutnie konieczna do
10010 IRANSFORMACJA ROŚLIN: METOD/ POŚREDNIA (DNA w konstrukcji genowej)Transformacja roślin z użyc
Otoczenie a struktura organizacyjna Zdaniem Burnsa i Stalkera w warunkach stabilnego otoczenia spraw
Grażyna Łaska Piórkowski H. 2002. Kształtowanie szaty roślinnej, warunków siedliskowych i struktury
IMG98 UKŁAD RÓWNOWAGI ŻELAZO - WĘGIELPRZEMIANA EUTEKTOIDALNAAUSTENITU warunki stabilne
IMG22 (3) Rodzaje oddziaływań stabilizujących strukturę oddziaływania winlorowe ^ oddziaływania
Testy Gramatyczne dla Gimnazjalistów  bmp PHOIWOPJAtiLfc Test 10    (15 punktów) 1.
32 A EJCHART Małe białka, Mcz < 10 kDa Przepisanie sygnałów *H i ident fikacja więzów strukturaln
skanuj0063 (10) Roślinność siedlisk leśnych 124 ząbkowane, szorstkie. Kwiatostan przypomina baldach
IMG 78 (3) Bez szczegółowej analizy warunków społeczno-strukturalnych dla powstania i istnienia świę
geodezjaKaska0006 10. Wij ni ki sprawdzenia warunku IL H cc .    po ropzApr ó£q.c/ ni

więcej podobnych podstron