background image

Immunologia 

– prelekcja 8.10.2007 

 
Podział odporności: 
 

ODPORNOŚĆ 

 
 
 
 

Humoralna 

 

 

Komórkowa 

 

Swoista  

Wrodzona 

Swoista 

Wrodzona 

Limfocyty B 
Przeciwciała 

CRP 

Lizozym 

etc. 

Limfocyty T 

APC 

Fagocytoza 

Kom. NK 

 

Budowa immunoglobulin 
 
 

 

IgA, IgG, IgD posiadają trzy regiony C

H

 i region zawiasowy (ang. „hinge region”), natomiast IgM i IgE – cztery regiony C

H

IgM, IgA, IgD posiadają w łańcuchu ciężkim strukturę „ogonka”. 
Fragment Fab służy wiązaniu antygenu, natomiast Fc pełni funkcje efektorowe i transportowe. 
Obraz domeny to pętla złożona z ok. 110 aminkowasów. 
IgA w wydzielinach przeważa jako forma dimeryczna, w surowicy natomiast jako forma monomeryczna.  
 
Właściwości immunoglobulin 

 
 

IgG 

IgA 

IgM 

IgD 

IgE 

Masa cz. x10

3

 

150 

160 

970 (5 x 194) 

185 

190 

Liczba cz. cztero 
łańcuchowych 

1,2 

Łańcuch ciężki 

γ 

α 

μ 

δ 

ε 

Łańcuch lekki 

κ lub λ 

κ lub λ 

κ lub λ 

κ lub λ 

κ lub λ 

Wartościowość 
dla antygenu 

2,4 

5-10 

Stężenie w 

8-16 mg/ml 

1-4,4 mg.ml 

0,5-2 mg/ml 

0-0,04 mg/ml 

5*10^-9 

background image

surowicy 

mg/ml 

% Ig surowicy 

80 

13 

0-1 

0,002 

Wiązanie 
dopełniacza 

++ 

+++ 

Przechodzenie 
przez łożysko 

++ 

Wiązanie z kom. 
tucznymi i 
neutrofilami 

Wiązanie z 
monocytami i 
makrofagami 

++ 

Czas półtrwania 
(dni) 

23 

5,5 

15 

2,8 

Występowanie 
w mleku 

0-ślad 

 
Właściwości podklas IgG 
 
 

IgG1 

IgG2 

IgG3 

IgG4 

% całkowitego 
IgG 

43-75 

16-48 

1,7-7,5 

0,8-11,7 

Przechodzenie 
przez łożysko 

Ag białkowe 

++ 

+/- 

++ 

+/- 

Ag 
polisacahrydowe 

++ 

(-) 

(-) 

Alergeny 

(-) 

(-) 

Akt dopełniacza 

++ 

+++ 

(-) 

 

Łączenie się IgG z docelowymi komórkami 

 

Fcγ RI (CD64): monocyty, makrofagi, neutrofile, kom. dendrytyczne 

 

Fcγ RII (CD32): monocyty, makrofagi, neutrofile, eozynofile, trombocyty, limf. B, kom. dendrytyczne, kom. 
endotelialne 

 

Fcγ RIII (CD16): neutrofile, eozynofile, makrofagi, komórki NK, limf. T 

 
Markery antygenowe immunoglobulin 
 
Izotypy – występowanie Ig z uwględnieniem zróżnicowania w budowie łańcuchów ciężkich i lekkich, umożliwiające podział na 
klasy i typy. 
 
Allotypy – występowanie różnic w obrębie części stałych łańcuchów ciężkich i lekkich (głównie ciężkich) różnych aminokwasów 
w określonych pozycjach łańcucha peptydowego. 
 
Idiotypy – występowanie różnic w obrębie części zmiennych łańcuchów ciężkich i lekkich. 
 
Przeciwciała monoklonalne – są to przeciwciała o tym samym izo-, allo- oraz idiotypie, produkowane przez ten sam klon 
limfocytów B i plazmocytów. Możemy dzięki nim otrzymywać w dużych ilościach przeciwciała o dużej swoistości. W tym celu 
immunizujemy zwierzę, np. mysz danym antygenem, po czym łączymy jej limfocyty B z komórką szpiczaka (nowotworu 
pochodzącego z szeregu rozwojowego limfocytów B), w której brak HGRPTazy. Zachodzi fuzja tych dwóch komórek, wskutek 
czego otrzymujemy hybrydy – komórki hybridoma. Następnie oczyszczamy hybrydę z komórek szpiczaka stosując medium HAS 
(hipoksantyna-aminopterydyna-tymidyna) przez co zabijamy komórki nowotworowe – hybrydy mają HGPRTazę dzięki czemu 
przeżywają. Następnie przeprowadzamy testy swoistości wobec antygenu przeciwko któremu dane próbki komórek hybridoma 
produkują przeciwciała. Po uzyskaniu odpowiednio swoistego klonu możemy go namnażać in vitro bądź in vivo. Limfocyt B 
określa swoistość hybrydy, natomiast szpiczak jako „motor napędowy” nadaje jej „nieśmiertelność” i dostarcza rybosomów i 
aparatu Golgiego niezbędnego do syntezy białek. 
 
Zastosowanie przeciwciał monokolonalnych: 

 

diagnostyka mikrobiologiczna chorób zakaźnych 

 

oznaczanie stężeń białek i leków w płynach ustrojowych 

 

typowanie tkanek i krwi 

 

diagnostyka nowotworów, białaczek, chłoniaków, chorób autoimmunologicznych 

background image

 

ocena układu odpornościowego 

 

oznaczanie stężenia hormonów 

 

terapia – uwaga na HAMA – human anti-mouse antibodies, p/ciała wytwarzane przez nasz organizm przeciwko białkom 
pochodzącym bądź co bądź z mysich komórek 

 
Preparaty immunoglobulinowe: 

 

ludzkie 

 

obcogatunkowe 

 

chimerowe – 33% mysie (od strony Fab) + 67% ludzkie 

 

humanizowane, 5-10% mysie (od strony Fab), reszta ludzka 

 
Stosowane preparaty immunoglobulinowe: 

 

Ig ludzkie nieswoiste – od osób nieimmunizowanych (zlewanie surowicy od minimum 1000 dawców i pobieranie z niej 
przeciwciał) – leczenie pierwotnych i wtórnych niedoborów odpornościowych typu humoralnego, zakażeń bakteryjnych i 
wirusowych zagrażających życiu, profilaktyka WZW typu A i odry. 

 

Ig ludzkie swoiste (o wysokiej zawartości przeciwciał) – przeciw HBV (antygen HBSPa), VZV (odra, półpasiec), 
wirusowi kleszczowego zapalenia mózgu, wirusowi wścieklizny, CMV (cytomegalia), toksynie tężcowej, Ig anty Rh 

 
Mogą to być Ig chimerowe lub humanizowane. Przykłady: 

 

Immunoglobulina 

Skład 

Wskazania 

anty TNF-alfa 

chimerowe 

terapia RZS, choroby Crohna, 
colitis ulcerosa 

anty HER 2 

humanizowane 

terapia raka piersi z przerzutami 

przeciwko receptorowi 
aktywnych płytek krwi (GP 
IIb/IIIa) 

chimerowe 

terapia i profilaktyka ostrych 
stanów niedokrwiennych serca 

przeciwko receptorowi CD20 

humanizowane 

leczenie chłoniaków 
pochodzących z limfocytów B 

anty CD 52 

humanizowane 

przewlekła białaczka 
limfocytarna 

anty IgE 

humanizowane 

nadwrażliwość typu I 

przeciwko receptorowi CD25 
(IL-2R) 

humanizowane 

profilaktyka ostrego odrzucenia 
przeszczepu 

anty CTLA4 

humanizowane 

terapia RZS, melanoma 

 

CTL4 – powstaje podczas aktywacji limfocytów T. Po zadziałaniu na CTL4 klon limfocytów T ulega delecji. 
 

Odczyn precypitacji 

 
Jest to odczyn w którym antygen jest w postaci rozpuszczonej, w przeciwieństwie do aglutynacji gdzie jest upostaciowiony. 
Charakteryzuje go mniejsza czułość niż aglutynację. Wymaga udziału wielowartościowego antygenu i co najmniej 
dwuwartościowego przeciwciała tak jak w aglutynacji. Musi być także zachowany odpowiedni stosunek antygen:p/ciało, 
ponieważ reakcja najlepiej zachodzi w strefie ekwiwalencji ilościowej ich stężeń. W strefie nadmiaru antygenu bądź przeciwciała 
tworzą się rozpuszczalne kompleksy immunologiczne. 
 
Podział precypitacji: 

 

W środowisku płynnym – USR, VDRL stosowane w screeningu kiły (nie musi być swoisty, ale czuły, bowiem dodatni 
wynik zawsze weryfikujemy).  

 

W środowisku półpłynnym 

Immunodyfuzja podwójna 

o  Immunodyfuzja pojedyncza 
o  Immunoelektroforeza 

 

Western-blot 

 

Nefelometria 

 

Turbidymetria 

 
Percypitacja w środowisku płynnym 
 
Metody te są głównie jakościowe. Zalicza się do nich np. wykrywanie antygenów Baccillus antracis w skórach i innych tkankach 
zwierzęcych – tzw. odczyn Ascoliego. Antygen jest ekstrahowany z tkanki, po czym przeprowadza się reakcję surowicy 
odpornościowej z roztworem zawierającym antygen. Powstanie pierścienia precypitacyjnego oznacza wynik dodatni. 

background image

Odczyny nieswoiste – USR, VDRL – stosujemy w screeningowej serodiagnostyce kiły. Poszukiwanym antygenem są reaginy 
kiłowe. Są to tzw. odczyny kłaczkujące. Ponieważ jest to metoda screeningowa, aby potwierdzić wynik pozytywny musimy w 
następnej kolejności przeprowadzić swoisty test TPHA.  
 
Immunodyfuzja podwójna (metoda Otcherlonyego) 
 
Jest to metoda pozwalająca określić stopień pokrewieństwa antygenów 

 

 

W przypadku gdy oba antygeny (oznaczone A) są identyczne linia precypitacyjna ma kształt łuku, gdy są częściowo identyczne – 
łuku z ostrogą, gdy są różne – są to dwie przecinające się proste linie. 
Do metod immunodyfuzji podwójnej zalicza się także test Elecka, służący badaniu toksyczności maczugowca błonicy - nie 
wszystkie szczepy tej bakterii są toksyczne. Przeciwciało przeciwko toksynie maczugowca umieszczamy na bibułce filtracyjnej, a 
prostopadle do niego nanosimy bakterie. Tworzenie „wąsów precypitacyjnych” oznacza że dany szczep jest toksyczny. 
 
Immunodyfuzja pojedyncza (immunodyfuzja radialna, metoda Mancini) 
 
Metoda ta znalazła zastosowanie w ilościowym oznaczaniu stężenia immunoglobulin w surowicy, a także składników dopełniacza 
(C3, C4) oraz niektórych białek ostrej fazy (transferyna, laktoferyna). 
Polega ona na umieszczeniu w specjalnym krążku przeciwciała – w otworach w żelu agarozowym oraz poszukiwanego antygenu 
– w centrum krążka w baseniku. Antygen dyfunduje radialnie w żelu zawierającym przeciwciało, a gdy wyczerpie się jego zapas 
powstaje w tym miejscu pierścień precypitacyjny, którego szerokość oceniamy porównując średnicę otrzymanego pierścienia z 
pierścieniami wzorcowymi (wykonujemy równolegle 3-4 standardy) otrzymanymi przez użycie wzorcowego antygenu: 

 

 

 Wadą tej metody jest dość długi czas reakcji (24-48 h) oraz spory błąd pomiarowy (10- 15%) – sami wykonujemy wzorce 
kalibracyjne. 
 
Immunoelektroforeza 
 
Jest to metoda jakościowa i półilościowa, oceniamy łuki precypitacyjne, prowadzimy ją na szkiełku pokrytym żelem. Po wycięciu 
otworów dla surowic (badanej i kontrolnej) najpierw zachodzi elektroforeza białek, a po niej wycinamy rowki do których 
dodajemy p/ciała – zachodzi immunoprecypitacja. Po wybarwieniu interpretujemy wynik. 
Immunoelektroforeza wg Grabara jest metodą półilościową, pozwalającą na diagnozę hiper-, nipo- bądź agammaglobulinemii. 
Stosujemy tu surowicę badaną i kontrolną wg. powyższego opisu. Aby zdiagnozować w/w gammapatie porónujemy obraz 
prawidłowej surowicy kontrolnej oraz surowicy pacjenta. 
Immunoelektroforeza służy także diagnozowaniu szpiczaka mnogiego, gdzie za pomocą swoistych przeciwciał wykrywamy i 
identyfikujemy białko monoklonalne, używając jako odniesienia odpowiedniego wzorca. 
Elektroforeza przeciwprądowa – można ją przeprowadzić gdy antygen i przeciwciało mają przeciwne ładunki, sprawiamy że 
migrując do przeciwnych elektrod jednocześnie migrują one „do siebie” w trakcie elektroforezy. Jest to rzadko stosowana metoda 
używana głównie w celach naukowych. 
 
Western-blot  
 
Metoda ta służy do wykrywania antygenu i przeciwciała, częściej przeciwciała, głównie w diagnostyce zakażeń wirusem HIV – 
screeningowo wykonujemy test metodą ELISA obarczony sporym błędem pomiarowym (wyniki fałszywie dodatnie), Western-
blot służy potwierdzeniu wyniku. Często używa się sonifikowanego (rozbitego ultradźwiękami) wirusa, któego fragmenty służą 

background image

jako wzorcowe antygeny „wyłapujące” przeciwciała w surowicy krwi. Powstałe kompleksy immunologiczne wykrywamy 
surowicą antyglobulinową sprzężoną z enzymem – oznaczamy stężenie produktu reakcji enzymatycznej. 
Techniką tą możemy także wykrywać antygen, co zostało wykorzystane w diagnostyce zakażenia prionami w BSE. Zasada 
metody polega na denaturacji białek proteazami, na które wrażliwy jest nawet obecny fizjologicznie w komórkach prion. 
Trawieniu nie podlegają jedynie priony chorobotwórcze, które następnie wykrywane są za pomocą swoistych przeciwciał. 
Zastosowanie także w diagnostyce boreliozy, serodiagnostyce HCV które często przebiega bezobjawowo dając powikłania w 
postaci raka lub marskości wątroby, a także zakażenia Helicobacter pylori, jedynego bakteryjnego karcynogenu klasy I – 
rozłożone elektroforetycznie antygeny H. pylori (w tym CAK-2) wiążą się ze swoistymi przeciwciałami. 
 
 
Nefelometria 
 
Jest to metoda ilościowego oznaczania białek polegająca na pomiarze natężenia światła rozproszonego w roztworze zawierającym 
kompleksy immunologiczne. Zaletą metody jest łatwość i krótki czas wykonania. Zastosowanie diagnostyczne: oznaczanie 
immunoglobulin (G, A, M), składowych dopełniacza (C3, C4), białek ostrej fazy (alfa1-IP, ceruloplazmina, CRP), albuminy. 
 
Turbidymetria 
 
Jest to metoda ilościowego oznaczania białek polegająca na pomiarze spadku natężenia światła po przejściu przez zawiesinę 
zawierającą kompleksy immunologiczne. Zastosowanie diagnostyczne: oznaczanie immunoglobulin, składowych dopełniacza, 
białek ostrej fazy. 
 
Class switching 
 
Jest to zjawisko zachodzące w limfocytach B podczas odpowiedzi zależnej od limfocytów T. Limfocyt B dziewiczy posiada jako 
receptory IgM oraz IgA. Część zmienna łańcucha ciężkiego każdej z immunoglobulin kodowana jest przez geny VDJ, natomiast 
część stała zostaje do niej dołączona później – w każdej immunoglobulinie część stałą koduje inny zestaw genów; są one ułożone 
kolejno po sobie, tak że na początku zawsze syntetyzowana jest IgM, a potem kolejno: ... W obrębie genów VDJ w limfocytach 
B zachodzą mutacje somatyczne co wzmaga swoistość receptorów czyli IgM wobec antygenu. Zachodzą one jednak losowo, 
przez co organizm wypracował sobie pewien system selekcji najbardziej swoistych limfocytów B. Kolejne populacje tych 
komórek łączą się z antygenem na wypustkach dendrytycznych komórki prezentującej antygeny – przeżywają tylko te które 
najsilniej się z nią zwiążą. Class switching jest regulowany przez limfocyty T w zakresie rodzaju produkowanego przeciwciała, a 
każda kolejna z w/w klas ma większe powinowactwo do antygenu niż poprzednia.