background image

STOMATOLOGIA KLINICZNA

Implanto

protetyka

2008, tom IX, nr 4 (33)

www.implantoprotetyka.eu

21

AnnA SzySzkowSkA, PAweł krAwczyk

Materiały stosowane do odbudowy ubytków kostnych 

w stomatologii – praca poglądowa

Materiales used to regeneration bones cavities in stomatology. A review article

StreSzczenIe

Praca  zawiera  charakterystykę  materiałów  stosowanych 
do  odbudowy  ubytków  kostnych  dostępnych  na  rynku.   
Ich  udział  w  mechanizmach  wyzwalających  regenerację 
kości zależy między innymi od rodzaju użytego materiału. 
Przedstawiono  przykłady  doświadczeń  klinicznych,  obra-
zujące  zastosowanie  najnowszych  rozwiązań  z  użyciem 
materiałów  kościozastępczych  i  komórek  macierzystych   
w sterowanej regeneracji tkanek.

Summary

The  study  contains  characteristics  of  materiales  used  to 
reconstruct bones cavities which are available on the mar-
ket. Participation  in processes which release bones rege-
neration    depends  on  a  kind  of  used  material. There  are  
presented examples of clinical experiments which illustrate 
usage of the most recent solutions based on bone substi-
tutes materiale and stem cells in guided tissue regeneration 
(GTR).

Zakład Chirurgii Stomatologicznej Uniwersytetu Medycznego w Lublinie
Kierownik: dr hab. n. med. Anna Szyszkowska

SłowA KLUCZowe 

Key wordS

materiały kościozastępcze,  

bone substitutes materiales,

komórki macierzyste 

stem cells

        
Wszczep  kostny  lub  materiały  kościozastępcze  służą  do  
odbudowy  utraconej  wcześniej  kości  szczęk  i  struktur 
przyzębia.  Implantacje  zębów,  podnoszenie  dna  zatoki 
szczękowej (sinus-lift), leczenie furkacji i kieszeni kostnych 
należą  do  zabiegów  wykonywanych  w  dzisiejszej  chirurgii 
stomatologicznej  i  periodontologicznej,  w  których  zasto-
sowanie  materiałów  kościozastępczych  w  zależności  od 
rodzaju  użytego  materiału,  pozwala  uzyskać  zadowalające 
efekty kliniczne.
Również  w  pozabiegowych  ubytkach  kostnych  o  średnicy  
0,5–1 cm, w których kość nie regeneruje się w centrum ubytku 
nawet po upływie 8 tygodni, poszukuje się matrycy na której 
powierzchni może dojść do odkładania się kości i wypełnienia 
całego ubytku. 
Materiały zawierające żywe komórki zwane są przeszczepami, 
natomiast materiały kościozastępcze nie zawierające żywych 
komórek  wszczepami. W  praktyce  stomatologicznej  stosu-
je się różnorodne materiały kostne i kościozastępcze, które  
w zależności od źródła pochodzenia i budowy dzieli się na: 

Przeszczepy kostne
Kość autogenna: kiedy dawca i biorca są identyczni pod wzglę-
dem genetycznym. Zarówno z biologicznego i immunologicz-
nego, a także prawnego punktu widzenia najkorzystniejsze jest 

stosowanie kości autogennej [1, 2, 3]. Użycie kości autogennej 
wymaga jednak zawsze wykonania dodatkowego zabiegu ope-
racyjnego. Kość do przeszczepu może być pobrana wewnątrz 
lub zewnątrzustnie. Zewnątrzustnie wióry kostne pobierane 
są z talerza kości biodrowej lub rzadziej z kości długich.  Więk-
szość  autorów  wskazuje  okolicę  trójkąta  zatrzonowcowego 
jako główny obszar do pozyskiwania kości. Powodem jest nie 
tylko stosunkowo łatwa dostępność oraz objętość masy kost-
nej, jak również dlatego, że kość korowa zawiera więcej białek 
morfogenetycznych  niż  kość  gąbczasta  [4]. W  obrębie  jamy 
ustnej kość pobierana jest również z bródki oraz guza szczęki. 
Badania kliniczne wykazały znaczny przyrost przyczepu łącz-
notkankowego  i  odbudowę  kości  po  operacjach  płatowych  
z dodatkowym użyciem kości autogennej [1, 5].

Materiały kościozastępcze
Wszczepy allogenne pozyskiwane są ze struktur kości ludz-

kich, a więc dawca i biorca  różnią się pod względem gene-
tycznym, jednak należą do tego samego gatunku. Istnieją dwie 
podstawowe formy kości allogennej: zmineralizowana – FDBA 
(freeze driad bone allograft) i zdemineralizowana – DFDBA 
(decalcified freeze driad bone allograft). Kość zdemineralizo-
wana ma tę zaletę, że w wyniku usunięcia składników mine-
ralnych  zostaje  odkryta  organiczna  macierz  kostna  (włókna 
kolagenowe) oraz dlatego, że tzw. białka macierzy (np. białka 
morfogenetyczne kości) mogą łatwo dyfundować do miejsca 
implantacji i działać osteoindukcyjnie [6].
Wszczepy ksenogenne stanowią materiał kostny pozyskiwany 
od zwierząt, dawca i biorca są różni gatunkowo. Produkty Bio-
Oss, Endobone pochodzą od krów i są dostępne komercyjnie 
w postaci odbiałczonej – DBBM (deproteinized bovine bone 
mineral).Tego  typu  materiały  mają  jedynie  właściwości  oste-
okondukcyjne [7]. 
Wszczepy alloplastyczne są produktami wytworzonymi synte-

tycznie lub pochodzą z naturalnych źródeł organicznych (np.  
z korali, z alg), względne nieorganicznych (hydroksyapatyt, or-
tofosforan trójwapniowy, szkło bioaktywne).
Dzięki  zastosowaniu  przeszczepów  i  materiałów  wszczepo-
wych nowotworzenie kości uzyskuje się na drodze zróżnico-

wanych mechanizmów.
Osteogeneza: przeszczepy zawierają żywe osteoblasty, które 
wrastają w miejscu biorczym i stymulują wzrost nowej kości.

Osteoindukcja: zawarte w materiałach wszczepowych białka (BMPs 
–  bone  morphogenic  protein  –  białka  morfogenetyczne  kości)  
indukują w łożysku różnicowanie się komórek mezenchymalnych 
do osteoblastów, co ostatecznie prowadzi do odbudowy kości.

 

       -               -               -               -               -       

background image

STOMATOLOGIA KLINICZNA

Implanto

protetyka

2008, tom IX, nr 4 (33)

22

Spośród około 15 czynników indukcyjnych BMPs do regene-
racji ubytków kostnych stosuje się BMP-2 i BMP-7. Ich efekt 
osseoindukcyjny  został  potwierdzony  licznymi  badaniami  la-
boratoryjnymi i obserwacjami klinicznymi. Czynniki te mogą 
być  dostarczane  do  ubytku  zarówno  w  postaci  materiału 
DFDBA (demineralized freeze driad allogenic bone – zdemi-
neralizowana  liofilizowana  macierz  kości),  jak  również  przy 
użyciu przenośników, m.in. kolagenu typu I, hydroksyapatytu, 
fosforanu wapnia, polimerów [8].
Osteokondukcja: przeszczepy i wszczepy służą jako nieaktyw-
ne  rusztowanie,  względnie  pomost  dla  obecnych  w  ubytku 
dojrzewających komórek kostych.
Wśród materiałów osteokondukcyjnych rozróżnia się mate-
riały  alloplastyczne  i  heterogenne  pochodzenia  zwierzęcego. 
Najbardziej  popularnymi  wśród  materiałów  alloplastycznych 
są materiały ceramiczne. Materiały alloplastyczne dzielą się na 
biozgodne, nie wywołujące szkodliwych reakcji w organizmie 
(np.  tlenek  glinu)  oraz  materiały  bioaktywne  (wspomagające 
biologiczne procesy odbudowy kości) naturalne i syntetyczne 
zawierające fosforan wapnia (np. hydroksyapatyt).
O  zdolnościach  osteokonduktywnych  decyduje  w  głównej 

mierze  struktura  powierzchni  materiału. W  przypadku  gład-
kiej powierzchni wszczepu, podczas kontrakcji skrzepu może 
dojść do odczepienia się włókien fibryny i młodej tkanki łącz-
nej wraz z obecnymi preosteoblastami. W wyniku utraty kon-
taktu z powierzchnią, osteoblasty tworzą nową kość w pewnej 
odległości od wszczepu podążając w kierunku dośrodkowym.
Inny schemat tworzenia kości następuje w przypadku szorst-
kiej powierzchni wszczepu. Taka powierzchnia  ma właści-
wości  ostokondukcyjne  ponieważ  ma  większą  powierzchnię 
kontaktu  wszczep-kość  i  umożliwia  retencję  włókien  fibry-
nowych, co w konsekwencji pozwala na tworzenie się kości 
bezpośrednio na powierzchni wszczepu.
Regeneracja utraconych tkanek nie zależy jedynie od stosowa-
nych materiałów, lecz także od anatomii ubytku i unaczynienia 
łożyska biorczego.
Materiał kostny lub kościozastępczy zanim będzie mógł być ru-
tynowo stosowany w stomatologii, wymaga oceny jego przy-
datności w porównaniu z samą operacją płatową w randomi-
zowanych badaniach klinicznych u ludzi, w czasie obserwacji 
nie krótszym niż 6 miesięcy, a najlepiej rocznym. Na podstawie 
wytycznych według Luthke-Hermollego,  materiały kościoza-
stępcze muszą dodatkowo spełniać następujące warunki [9]:

nie mogą być kancerogenne i nie mogą przenosić infekcji,

 

nie  mogą  wywoływać  martwicy  tkanek  uwarunkowanej 

 

przez toksyczność komórkową,
nie mogą wyzwalać reakcji na ciało obce,

 

muszą posiadać zdolność resorpcyjną i substytucyjną  ko-

 

ści w określonym czasie,
musi istnieć synchronizacja zakresu resorpcji lub degrada-

 

cji z odbudową kości, 
muszą stymulować regenerację tkanek przyzębia,

 

nie może być różnic w działaniu przy porównaniu implan-

 

tacji krótkoterminowej i odległej, 
muszą poddawać się sterylizacji,

 

ich wytwarzanie nie może być zbyt kosztowne,

 

muszą się łatwo i długo przechowywać,

 

ich użycie kliniczne powinno być jak najprostsze.

 


Dopuszcza  się  degradację  względnie  resorpcję  materiałów 
kościozastępczych  w  wyniku  procesu  hydrolitycznego  oraz  
w  następstwie  fagocytozy  przez  wielojądrzaste  komórki  

olbrzymie. Ideałem byłaby taka synchronizacja całkowitej re-
sorpcji  materiałów  wypełniających  z  jednoczasowym  nowo-
tworzeniem  tkanek,  aby  zakończenie  całkowitej  regeneracji 
pokrywało się z początkiem resorpcji użytego materiału kost-
nego lub kościozastępczego. Niektóre materiały (np. hydrok-
syapatyt, odbiałczona kość wołowa) resorbują się  tylko czę-
ściowo i pozostają w nowo utworzonej kości jako związane  
z nią czynnościowo ciało obce. 
W  różnych  pracach  badawczych  analizowano  właściwości 

powierzchniowe  i  wielkość  cząsteczki  materiałów  kościoza-
stępczych.  Porowatość  powierzchni  zewnętrznej  (wielkość 
porów 100–150 mikrometrów) jest istotna dla wrastania na-
czyń  krwionośnych  i  komórek  kostnych  [10].  Udział  porów  
w  całej  objętości  określany  jest  procentowo  i  w  przypad-
ku  materiałów  kościozastępczych  wynosi  z  reguły  30–60%.  
W osteointegracji materiału kościozastępczego istotne znacze-
nie ma również przestrzeń pomiędzy cząsteczkami i zależy ona 
od morfologii, kształtu (sferyczny lub wielokątny) oraz wielkości 
cząsteczek.  Badania  kliniczne  wykazują,  że  cząsteczki  powyżej 
100 mikrometrów tworzą wystarczającą przestrzeń dla wrasta-
jących naczyń krwionośnych i komórek kostnych [11].
Możliwości kliniczne materiałów  kościozastępczych sprawiają, 
że znajdują one zastosowanie w różnych dyscyplinach stoma-
tologicznych:

Regeneracja przyzębia:

kieszonki kostne,

 

otwarte furkacje II stopnia w zębach trzonowych żuchwy.

 

Regeneracja wyrostka zębodołowego:
–  implantologia:

–  ubytki w obrębie wyrostka zębodołowego (przed im-

plantacją lub jednocześnie z implantacją),

–  podnoszenie dna zatoki szczękowej,
–  regeneracja kości po periimplantitis,

–  chirurgia stomatologiczna i szczękowa:

–  duże poekstrakcyjne ubytki kostne w miejscach plano-

wanych implantacji,

–  ubytki kości po usuniętych zębach zatrzymanych,
–  ubytki kości po cystektomii (gdy średnica torbieli jest 

większa od 1 cm),

–  endodoncja:    po  resekcjach  szczytów  korzeni  z  dużymi 

ubytkami kości.

Sterowana regeneracja kości, polegająca na ukierunkowanym 
jej tworzeniu w miejscu ubytku tkanki kostnej była przedmio-
tem  wielu  badań  klinicznych. W  piśmiennictwie  opisywano  
metody  zastosowania  materiału  kościozastępczego  z  resor-
bowalnymi łącznikami. Badania kliniczne prowadzone w latach 
1999–2001  w  Zakładzie  Chirurgii  Stomatologicznej  IS  AM  
w  Warszawie  przedstawiały  zastosowanie  resorbowalnego 
materiału naturalnego Bio-Oss oraz błon zaporowych Bio-Gi-
de do leczenia ubytków kostnych szczęk [12].
Materiał kościozastępczy aplikowano w chorobach przyzębia 
(pionowe  ubytki),  po  zabiegach  wyłuszczenia  dużych  torbie-

li  zapalnych  oraz  torbieli  zawiązkowych  i  przyzębnych,  po 
dłutowaniu  zębów  zatrzymanych  oraz  podczas  wszczepiania  
implantów. 
Ocenę wyników leczenia przeprowadzono na podstawie ba-
dania klinicznego i radiologicznego.
Wyraźnym i najszybciej zauważalnym przez pacjentów z cho-
robami przyzębia wynikiem leczenia była poprawa stabilności 

 

       -               -               -               -               -       

background image

STOMATOLOGIA KLINICZNA

Implanto

protetyka

2008, tom IX, nr 4 (33)

www.implantoprotetyka.eu

23

zębów. U tych pacjentów po leczeniu stwierdzono I stopień 
ruchomości  zębów  według  klasyfikacji  Entina  (przed  lecze-
niem II stopień ruchomości). Na zdjęciach wewnątrzustnych 
zębowych, zaobserwowano znaczne zmniejszenie głębokości 
kieszeni kostnych u wszystkich chorych oraz wypełnienie be-
leczkami kostnymi ubytku kostnego. Konwencjonalne zdjęcia 
rentgenowskie wykazały odbudowę tkanki kostnej i były po-
twierdzeniem  przyjętej  opinii  powolnej  resorpcji  materiału 
Bio-Oss oraz osteokondukcyjnego jego działania.
Zadowalające  wyniki  terapeutyczne  uzyskano  stosując  
Bio-Oss i błonę Bio-Gide w zabiegach implantacji wszczepów.  
Według  Nicola  to  połączenie  redukuje  ubytek  kości  wokół 
wszczepu w 92% oraz skraca czas osteointegracji [12].
Hydroksyapatyt jest materiałem alloplastycznym, nad którym 
prowadzono badania kliniczne i doświadczalne, mające na celu 
weryfikację jego przydatności w procesach regeneracji kości.
Hydroksyapatyt  jest  głównym  nieorganicznym  składnikiem 
kości.  Syntetyczne  materiały  zbudowane  z  hydroksyapatytu 
zostały zaakceptowane w stomatologii w latach 80 ubiegłego 
stulecia [13]. Można wyróżnić dwie jego postacie: zbitą i poro-
watą o wielkości porów 190–230 mikrometrów (np. Interpo-

re 200). Pory są połączone ze sobą w sposób przypominający 
układ beleczek naturalnej kości gąbczastej [13]. Zbita postać 
hydroksyapatytu (np. Celcitite, Durapatite) daje odbudowę ko-
ści jedynie wokół cząstek materiału i nie resorbuje się. Postać 
porowata pozwala na tworzenie się kości wewnątrz wszczepu, 
tzn. między porami i może ulegać resorpcji opóźnionej [13]. 
Z tych właśnie powodów stosuje się zwykle hydroksyapatyt 
porowaty.
Badania przeprowadzone na świnkach morskich z zastosowa-
niem  krakowskiej  bioceramiki  hydroksyapatytowej  (Ha-Bio-
cer) dostarczyły interesujących wniosków [14]. Celem pracy 
była  ocena  wpływu  granulatu  hydroksyaptytu  Ha-Biocer  na 
gojenie  ubytków  żuchwy  świnek  morskich.  Badania  oparto 
na ocenie klinicznej, histopatologcznej i radiologicznej w 6, 8, 
20, 24, 32, 40 i 52 tygodniu doświadczenia. W początkowych 
okresach doświadczenia obserwowano tkankę łączną pomię-
dzy hydroksyapatytem a kością. Zjawisko to jest tłumaczone 
przez niektórych autorów reakcją świadczącą o zabezpiecze-
niu przez hydroksyapatyt powierzchni dla późniejszego przy-
ciągania osteoblastów. Również spostrzeżenia innych autorów 
potwierdzają, że hydroksyapatyty nie stymulują wzrostu kości. 
Dzięki porowatej budowie niejako „kierują” procesem oste-
ogenezy, zapewniając dużą stabilność odtwarzanym tkankom. 
Już w 6 tygodniu doświadczenia wokół wszczepionego hydrok-
syapatytu obserwowano gdzieniegdzie dojrzałe beleczki kost-
ne. Jednak dopiero po 40 tygodniach granule hydroksyapatytu 
były otoczone całkowicie uwapnioną tkanką kostną. Obserwa-
cje te potwierdzają badania również innych autorów, którzy 
uważają,  że  porowate  wszczepy  hydroksyapatytu  wypełniają 
się  kością  w  80%  w  ciągu  24  tygodni.  Natomiast  pomiędzy 
24 a 48 tygodniem dochodzi do zakończenia procesu gojenia 
i nie jest możliwe oddzielenie materiału implantacyjnego od 
kości. W tym okresie następuje przerastanie hydroksyapatytu 
tkanką kostną i wytworzenia z nim bezpośrednich połączeń 
na wszystkich powierzchniach. Aby doszło do takiego ścisłe-
go połączenia, hydroksyapatyt musi bardzo szczelnie przylegać 
do kości [14].
Do  odbudowy  ubytków  kostnych  zastosowano  kompozyt 
otrzymany z biodegradowalnego kopolimeru glikolidu z lakty-
dem oraz dodatkiem hydroksyapatytu w warunkach dotkan-

kowej implantacji w badaniach doświadczalnych na królikach 
[15].  Polimery  bioresorbowalne  w  czystej  postaci  wykorzy-
stuje się głównie do naprawy ubytków tkanek miękkich. Pełnią 
one rolę nośników leków w procesach ich kontrolowanego 
uwalniania się do żywego organizmu, a także jako podłoża ko-
mórkowe w inżynierii tkankowej i genetycznej [16].
Z przeprowadzonych badań doświadczalnych wynika, że ko-
polimer  w  połączeniu  z  hydroksyapatytem  nie  wywołuje 
miejscowych, ani ogólnoustrojowych negatywnych odczynów 

tkankowych. Materiały te stymulują tkankę do szybszej i bar-
dziej aktywnej regeneracji niż ma to miejsce w procesach na-
turalnych [15]. 
W dążeniu do przyspieszenia procesu odbudowy ubytków kost-
nych oprócz materiałów kościozastępczych wykorzystuje się ko-
mórki macierzyste oraz czynniki wzrostu izolowane z krwi.
Wykryto  dotychczas  dwa  rodzaje  komórek  macierzystych: 
embrionalne (tzw. prawdziwe komórki macierzyste) i nieem-
brionalne (dorosłe lub rzekome komórki macierzyste)[18].
Do charakterystycznych cech komórek macierzystych należą:
–  klonogenność  oznacza, iż mogą w wyniku podziałów i róż-

nicowania stworzyć zespół identycznych komórek wcho-
dzących w skład określonej specjalizującej się lub wyspe-
cjalizowanej tkanki;

–  samoodnawialność – zdolność do powielania się w razie 

potrzeby, zdolność do różnicowania się poza szpikiem;

–  dystrybucja w narządach, pozwalająca na regenerację okre-

ślonych tkanek/narządów w określonych warunkach;

–  możliwość  izolowania  –  przeszczepianie    komórek  ma-

cierzystych pochodzących ze szpiku powoduje powstanie 
tkanki kostnej i szpiku

–  plastyczność – komórki macierzyste mają zdolność prze-

kształcania się we wszystkie rodzaje komórek organizmu. 

Jednym ze źródeł komórek macierzystych, łatwych do izola-
cji  jest  np.  miazga  zębów  mlecznych.  Już  w  6  tygodniu  życia 
płodowego zaczyna kształtować się blaszka zębowa pierwotna  
i z biegiem czasu w niej powstają pączki zębowe stanowiące 
zawiązki zębów mlecznych [17].
Komórki  zębinotwórcze  oraz  szkliwotwórcze  produkujące 
odmienne, mineralizujące się tkanki zęba, powstają w wyniku 
namnażania i różnicowania się populacji prekursorów rezydu-
jących w miazdze. Komórki macierzyste obecne są do końca 
w miazdze zębów mlecznych. Stwierdzono, iż miazga zębów 
stałych jest również źródłem komórek macierzystych zębino-
wych,  przez  to  proces  regeneracji  dotyczy  wyłącznie  zębiny  
i polega na wytworzeniu tkanki zębinopodobnej. Szkliwo jest 
tkanką nie regenerującą się [18].
Hodowle komórek macierzystych z miazgi zębów mlecznych 
to źródło komórek embrionalnych, ale dających się izolować 
już  po  porodzie  [19].   We  krwi  krążą  komórki  macierzyste 
tkankowo specyficzne oraz komórki biorące udział w proce-
sach regeneracji, odnawiania, odtwarzania. Największe bogac-
two takich komórek znajduje się we krwi pępowinowej, ale 
również można je izolować z krwi dorosłego człowieka. 
Inżynieria tkankowa pozwalająca na stymulowanie procesów 
regeneracyjnych,  augmentacyjnych  kości  opiera  się  na  teorii, 
której  głównym  elementem  są  komórki  mogące  pod  wpły-
wem  miejscowego  środowiska  przekształcić  się  w  komórki 
produkujące brakujące składniki określonej tkanki. 
Coraz  bardziej  popularna  w  chirurgii  stomatologicznej  jest 
metoda polegająca na wyodrębnieniu z krwi pacjenta płytko-
wych  czynników  wzrostu,  aby  stymulować  znacznie  szybszą 

 

       -               -               -               -               -       

background image

STOMATOLOGIA KLINICZNA

Implanto

protetyka

2008, tom IX, nr 4 (33)

24

odbudowę  kości.  Metoda  ta  wymaga  pobrania  krwi  żylnej  
w gabinecie stomatologicznym. Następnie w wirówce nastę-
puje oddzielenie erytrocytów i leukocytów od osocza zawie-
rającego płytki, a następnie w drugiej fazie oddzielenie części 
bezkomórkowej  plazmy od części zawierającej płytki krwi. 
Możliwość  izolacji  masy  płytkowej  z  krwi  obwodowej  i  jej 
bogactwo  w  czynniki  kościotwórcze,  jest  wykorzystywana 
do stymulowania gojenia się ubytków kostnych w zabiegach 
z zakresu chirurgii stomatologicznej. Masa płytkowa jest do-
dawana do materiałów używanych w sterowanej regeneracji 
tkanek [19].
Podsumowując,  można  stwierdzić,  iż  bogactwo  dostępnych 
materiałów  kościozastępczych  wymusza  prowadzenie  badań 
doświadczalnych i stosowania tych, które dają najlepsze efek-
ty  kliniczne.  Uważa  się  nadal,  że  najlepszym  i  równocześnie 
najtańszym  materiałem  jest  kość  autogenna  pobrana  np.  

z gałęzi żuchwy lub talerza biodrowego. Jednak w przypad-
ku rozległych ubytków kostnych ideałem wydaje się materiał 
osteoindukcyjny,  względnie  osteokondukcyjny  w  połączeniu 
komórkami  macierzystymi  i  czynnikami  wzrostu.  Najlepsze 
efekty  w  badaniach  klinicznych  uzyskano  stosując  materiały 
kościozastępcze łącznie z błonami zaporowymi.

PIśMIENNICTWO

Carraro  J.  J.,  Sznajder  N., Alonso  C. A.: 

1. 

Intraoral  cancello-

us  bone  autografts  intreatment  of  infrabony  pockets.  J.  Clin.  
Periodontol. 1976, 3, 1, 104-113.
Froum S., Stahl S. S.: 

2. 

Human intraosseous healing responses to 

the placement of tricalcium phosphate ceramic implants. II. 13 
to 18 months. J. Periodontol. 1987, 58, 1, 103 – 114.
Ganeles  J.,  Listgarten  M. A.,  Evian  C.  I.: 

3. 

Ultractructure  of  

durapatite-periodotal tissue interface in human intrabony de-

fects. J. Periodontol. 1986, 57, 2, 133 -142. 
Froum S. J., Weinberg M. A., Tarnow D.: 

4. 

Comparison of bioac-

tive glass syntheticbone graft particles and open debridement 

in the treatment of human periodontal defects. J. Periodontol. 
1998, 69, 6, 698 – 709.
Renvert S., Garrett S., Shallhorn R. G., Egelberg J.: 

5. 

Healing 

after treatment of periodontal intraosseous defects. III. Effects 

of osseous grafting and citric acid conditioning. J. Periodontol. 
1985, 12, 4,  441 – 450.
Zhang M., Powers R. M., Wolfinbarger L.: 

6. 

Effect(s) of the de-

mineralization process on the osteoinductivity of demineralized 

bone matrix. J. Periodontol. 1997, 68, 11, 1085 – 1096. 
Hammerle  C.  H.,  Chiantella  G.  C.,  Karring T.,  Lang  N.  P.:  

7. 

The  effect  of  a  deproteinized  bovine  bone  mineral  on  bone 

regeneration around titanium dental implants. Clin. Oral Im-
plants Res. 1998, 9, 2, 151 – 161.
 Maciejewska I., Nowakowska J., Bereznowski Z.: 

8. 

Osteointe-

gracja wszczepów zębowych – etapy gojenia kości. Prot. Stom., 
2006, 56, 3, 214 – 219.
 Luthkehermolle W: 

9. 

Biomaterialien fur die Knochenregenera-

tion. In: Wintermantel E., Ha, S. W. (Hrsg.): Medizintechnik mit 

biocompatiblen Werkstoffen  unu Verfahren.  Springer,  Berlin-
Heidelberg-New York 2002.
Gauthier  O.,  Bouler  J.  M., Aguado  E.,  Pilet  P.,  Daculsi 

10. 

G.:  Macroporous  biphasic  calcium  phosphate    ceramics:  

influence  of  macropore  diameter  and  macroporosity  per-

centage  on  bone  ingrowth.  Biomaterials  1998,  19,  2,  
133 – 141. 

Nasr  H.  F., Aichelmann-Reidy  M.  E., Yukna  R. A.: 

11. 

Bone 

and  bone  substitutes.  Periodontol.  2000  :  1999,  19,  1, 
74- 82. 
Ciechowicz  K.  i  wsp.:  Zastosowanie  materiałów  kseno-

12. 

genicznych w regeneracji ubytków kostnych w materiale 
Zakładu  Chirurgii  Stomatologicznej  IS AM  w Warszawie  
w latach 1999-2001. Prot. Stom. 2002, 52, 5, 273-278.

Osborn J. F.: 

13. 

Extension alveoloplastry (II). New surgical proce-

dures for the treatment of alveolar collapse and residual  alve-

olar ridge  atrophy. Quintessenze 1985, 36, 3,  239 – 247.
Cieślik T. i wsp.: 

14. 

Ocena gojenia ran kostnych żuchwy wypełnio-

nych krakowską bioceramiką  hydroksyapatytową (Ha-Biocer) 

u świnek morskich. Czas. Stom. 1997 , 57, 8, 483-487.
Cieślik  M.  i  wsp.: 

15. 

Obserwacje  gojenia  ran  kostnych  żuchwy 

królików  wypełnionych  kopolimerem  glikolidu  z  laktydem  

z  dodatkiem  hydroksyapatytu  –  badania  wstępne.  Prz.  Med. 
Uniw. Rzesz. 2005, 3, 2, 99-102
Kokubo T., Kim H.M., Kawashita M.: 

16. 

Novel bioactive materials 

with different mechanical properties. Biomaterials, 2003, 24, 
13, 2161-2170.
Miura M. i wsp.: 

17. 

Stem cells from human exfoliated deciduous 

teeth. Proc. Nation. Acad. Sci., 2003, 100, 10, 5807-5812.                                           
Knychalska  –  Karwan  Z.,  Drukała  J.: 

18. 

Komórki  macierzyste  

a jama ustna. Mag. Stom. 2005, 15, 1, 16-18.                                                            
Tutak M., Drukała J., Sporniak-Tutak K.: 

19. 

Tkanki zęba – po-

tencjalne źródło komórek macierzystych. Czas. Stom. 2006, 59, 
6, 451-457.

 

Artykuł nadesłano: 10 maja 2008 r.

Artykuł przyjęto do druku: 20 pażdziernika 2008 r.

Adres do korespondencji:

Anna Szyszkowska

Zakład Chirurgii Stomatologicznej Uniwersytetu Medycznego 

w Lublinie

20-081 Lublin, ul. Karmelicka 7

 

       -               -               -               -               -