Kultury in vitro roślin
1. Wprowadzenie do kultur in vitro
2. Pożywka i jej składniki
3. Autoklawowanie pożywki
4. Materiał roślinny, jego zakażenia i sterylizacja.
5. Rodzaje kultur in vitro
6. Kultury tkankowe różnych roślin
7. Wyposażenie laboratorium kultur in vitro.
8. Organogeneza w kulturach in vitro.
9. Rośliny transgeniczne
Najczęściej stosowane pojęcia
eksplantat (ang. explant) - część rośliny (zwykle drobna) przeniesiona na sztuczną pożywkę dla zapoczątkowania hodowli in vitro
inokulum [łac.], roln. zawiesina cząstek wirusa, komórek bakterii lub zarodników grzyba (czasem fragmentów strzępek) patogenicznych dla rośliny, przygotowana przez człowieka w celu dokonania sztucznego zakażenia rośliny (inokulacja).
klon (ang. clone) - 1. zbiór organizmów lub cząsteczek będących wiernymi kopiami ich pierwowzoru (rodzica, matrycy); 2. osobnik powstały w wyniku rozmnażania wegetatywnego jakiegoś organizmu, będący jego wierną genetyczną kopią
klonowanie (ang. cloning) - wytwarzanie identycznych produktów (DNA, genów, komórek, organizmów); powielanie; masowe rozmnażanie wegetatywne roślin
organogeneza (ang. organogenesis) - tworzenie się organów "od nowa", tj. w tkankach, które w chwili zakładania hodowli nie zawierały zawiązków tych organów; zasadnicze rodzaje: o. pędowa i korzeniowa (ryzogeneza)
pasaż (ang. passage) - przeszczepienie hodowli organów, tkanek lub komórek, w całości lub jej części, na nową pożywkę
Najczęściej stosowane pojęcia
ryzogeneza (ang. rhizogenesis) - organogeneza korzeniowa; powstawanie korzeni "od nowa", tj. w tkankach które w momencie zakładania hodowli nie zawierały zawiązków korzeni
sterylny (ang. sterile) - bez istot żywych, zwłaszcza drobnoustrojów (np. o pożywce, narzędziach, naczyniach itp.) niezdolny do tworzenia sprawnych (skutecznych) gamet
totipotencja (ang. totipotency; ) - zdolność komórki organizmu do tworzenia wszystkich typów komórek występujących w dojrzałym organizmie; zdolność pojedynczej komórki wielokomórkowego organizmu do wytworzenia całego organizmu
uorganizowany (synonim: zorganizowany; ang. organized, porównaj: organize) - tworzący struktury o charakterystycznej, uporządkowanej budowie (pod względem kształtu i układu tkanek)
Wprowadzenie
Wzrost i rozwój.
Wzrost rośliny - nieodwracalny proces powiększania rozmiarów określonego organu lub całej rośliny związany ze zwiększaniem się wielkości komórek, ich liczby oraz z przyrostem masy protoplastu i ścian komórkowych.
Wzrost jest procesem ilościowym i zachodzi dzięki aktywności merystemów:
wierzchołkowych
bocznych
interkalarnych
Wprowadzenie
Wzrost
Wyróżnia się wzrost:
embrionalny - powiększanie się rozmiarów organu wskutek zwiększania się liczby komórek
elongacyjny - wzrost organu na skutek powiększania się rozmiarów komórek
związany z różnicowaniem się komórek - przyrost masy organu wskutek rozbudowy ścian komórkowych
Wzrost roślin podobnie jak jej rozwój jest procesem kontrolowanym przez czynniki:
wewnętrzne - uwarunkowania genetyczne, fitohormony
zewnętrzne - promieniowanie świetlne, temperatura, wilgotność, składniki mineralne, ilość dwutlenku węgla i tlenu, czynniki stresowe.
Wprowadzenie
Rozwój rośliny - ogół przemian jakościowych zachodzących w ciągu ontogenezy rośliny. Rozwój rośliny jest ściśle powiązany z jej wzrostem, te dwa procesy zachodzą równocześnie i nie można ich od siebie oddzielić, dlatego też często mówi się o procesach wzrostu i rozwoju roślin łącznie.
Wyróżnia się wzrost i rozwój:
wegetatywny - dochodzi podczas niego do stopniowego wykształcenia się różnych tkanek i organów wegetatywnych
generatywny - jest związany z wykształcaniem się zawiązków kwiatowych, pąków kwiatowych, kwiatów, owoców i nasion.
Wprowadzenie
Wzrost i rozwój w warunkach in vivo są to procesy zachodzące pod działaniem wymienionych wcześniej warunków wewnętrznych jak i zewnętrznych
Wzrost i rozwój w warunkach in vitro są to procesy zachodzące na sztucznych pożywkach w warunkach kontrolowanych (in vitro - w szkle).
Definicja kultur in vitro
Definicja kultur tkankowch.
Kultury organów, tkanek i komórek roślinnych in vitro są to hodowle roślin, części roślin, tkanek lub pojedynczych komórek na sztucznych pożywkach w jałowych warunkach (Pierik 1987).
Kultury in vitro
Znaczenie kultur in vitro
Sposób uzyskiwania materiału do badań techniką kultur in vitro posiada szereg istotnych zalet takich jak:
zapewnia większą jednorodność badanego materiału oraz uzyskanie dużych ilości roślin w krótkim czasie,
warunki sterylne umożliwiają śledzenie metabolizmu podawanych egzogennie substancji w roślinach, pozwalają eliminować wpływ mikroorganizmów na wartości mierzonych parametrów fizjologicznych w roślinach,
w naczyniach hodowlanych wegetacja kultur odbywa się w lepiej regulowanych i stabilizowanych warunkach w porównaniu z warunkami zewnętrznymi,
Znaczenie kultur in vitro
Sposób uzyskiwania materiału do badań techniką kultur in vitro posiada szereg istotnych zalet takich jak:
pozwala na uniezależnienie się od pory roku oraz określanie i regulowanie warunków hodowli,
pozwala selekcjonować linie o podwyższonej odporności na herbicydy, pestycydy i inne środki ochrony roślin, co jest znacznie tańsze niż selekcja w warunkach polowych,
umożliwia badanie procesów fizjologicznych takich jak reakcję na stresy, komunikację międzykomórkową, sekrecję różnych związków do środowiska (Sekrecka i Trendak, 1997; Dubert, 2000; Dubert i Płażek, 2007).
Ponadto kultury in vitro zyskują coraz większe znaczenie w pracach hodowlanych, których celem jest otrzymywanie nowych, korzystnych dla człowieka genotypów roślin (Orlikowska, 1997).
Rodzaje kultur tkankowych.
Wyróżniamy następujące rodzaje kultur in vitro:
kultury kalusa,
kultury zawiesinowe,
kultury pojedynczych komórek,
kultury protoplastów,
kultury pylników i mikrospor,
kultury zarodków,
kultury fragmentów roślin,
Definicja kultur tkankowch.
Kultury in vitro są to hodowle roślin, części roślin, tkanek lub pojedynczych komórek na sztucznych pożywkach w jałowych warunkach.
Kultury in vitro są podstawą nowoczesnej biotechnologii której efekty końcowe w postaci nowych osobników bądź ich produktów są poddawane analizie biochemicznej (analityka) i ocenie ich przydatności do dalszych eksperymentów bądź wdrażania do masowego wykorzystania w różnych gałęziach gospodarki człowieka.
Kultury in vitro a biotechnologia
Biotechnologia - dyscyplina nauk technicznych wykorzystująca procesy biologiczne na skalę przemysłową.
Konwencja o różnorodności biologicznej ONZ podaje jedną z najszerszych definicji:
Biotechnologia oznacza zastosowanie technologiczne, które używa systemów biologicznych, organizmów żywych lub ich składników, żeby wytwarzać lub modyfikować produkty lub procesy w określonym zastosowaniu.
Kultury in vitro w biotechnologii
Produkcja żywności:
- tradycyjne procesy fermentacyjne (produkcja pieczywa, produktów mlecznych),
- nowe technologie mikrobiologii (witaminy, aminokwasy),
- zastosowanie enzymów do wyrobów mleczarskich (kefiry, jogurty),
- utrwalenie żywności (antyutleniacze)
Rolnictwo:
- produkcja pasz (preparaty białkowe, witaminowe, kiszonki roślinne),
- kultury komórkowe i tkankowe in vitro,
- ochrona roślin (bioinsektycydy, antybiotyki),
- lecznictwo zwierząt (szczepionki)
Ochrona środowiska:
- oczyszczanie ścieków, filtry biologiczne, czynne osady
Biotranformacja
Biotransformacje - katalizowane przez enzymy reakcje chemiczne, w których następuje przekształcenie określonego(nych) fragmentu(ów) substratu.
Biotransformacje u mikroorganizmów można porównać do "biokatalizatorów", które przeprowadzają przemiany prowadzące do otrzymania pożądanego produktu.
Są to procesy wykorzystujące najczęściej tylko jeden enzym i nie dostarczają komórce energii ani potrzebnych związków.
Biotransformacje zachodzą też w formach przetrwalnikowych mikroorganizmów dzięki braku zaangażowania jakichkolwiek szklaków metabolicznych w proces.
Jednym z ważniejszych problemów przy stosowaniu biotransformacji jest występujące ograniczenie przepuszczalności substratów i produktów przez błony cytoplazmatyczne lub też wydzielenie odpowiedniego enzymu z komórki.
Dlatego też opracowanie specyficzne sposoby postępowania zależą od charakteru mikroorganizmu (np. środki powierzchniowo czynne).
Biotransformacja
Co to są i na czym polegają biotransformacje roślin ?
Biotransformacja - proces w wyniku którego dochodzi do modyfikacji grup funkcyjnych związków organicznych przez żywe komórki lub izolowanie z nich enzymy
Zastosowanie:
- do produkcji metabolitów wtórnych,
- do biotransformacji egzogennych prekursorów w bardzo wartościowe,
bądź pożądane produkty.
Biotransformacja
Typy reakcji biotransformacji:
- utlenianie, redukcja,
- hydroliza,
- rozszczepienie wiązania C-C,
- kondensacja,
- izomeryzacja
Substraty:
naturalne prekursory,
związki syntetyczne (ksenobiotyki),
związki obce roślinie
Biotransformacja
Materiał stosowany:
- izolowane enzymy,
- zawiesiny komórkowe,
- agregaty komórek,
- immobilizowane (unieruchamiane) enzymy i komórki
Biotransformacja
Lokalizacja procesu biotransformacji:
- wytrząsanie kolby,
- bioreaktory
Biotransformacja
Dane ilościowe:
- na świecie jest około 137 gatunków roślin leczniczych i aromatycznych wykorzystywanych do produkcji metabolitów wtórnych lub do biotransformacji prekursorów,
- w Polsce tylko około 40 gatunków roślin (zostało przebadanych)
Biotransformacja
Korzyści biotransformacji:
- wysoka wydajność (często bliska 100%),
- duża czystość produktu reakcji,
- wysoka specyficzność reakcji,
- możliwość zajścia reakcji w miejscach mało reaktywnych,
- otrzymanie dużej ilości produktów występujących w małych ilościach w roślinie,
- otrzymanie produktów o zwiększonej aktywności fermakologicznej lub zmniejszonej toksyczności
Biotransformacja
Biotransformacja z użyciem kultur zawiesinowych - jest to najprostszy model doświadczalny, nie ma dodatkowego etapu wiązania komórek z nośnikiem, komórki nie ulegają zmianom fizjologicznym
Biotransformacja
Czynniki regulujące reakcje biotransformacji:
- rodzaj kultury (zawiesina, kultury organów np. korzeni),
- stadium rozwojowe kultury i jej warunki, a zwłaszcza nadtlenianie, skład pożywki i jej pH,
- struktura chemiczna substratu, jego stężenie, właściwości
Kultury in vitro
Etapy
1.przygotowanie pożywki
2. sterylizacja materiału
3. wprowadzanie roślin na pożywkę
Wyszczepianie
Pasażowanie
4. przeniesienie do warunków hodowlanych i hodowla
Pożywka
Pożywka to wodny roztwór podstawowych makro i mikroelementów.
Powinna ona zawierać:
1. wodę
2. makroelementy
3. mikroelementy
4. ultraelementy
5. węglowodany
6. witaminy
7. regulatory wzrostu
8. inne składniki
Cechy pożywki
Cechy dobrej pożywki to:
1. zawartość podstawowych składnikow (makro i mikroelementow)
2. odpowiednie proporcje składników
3. odpowiedni odczyn
Rodzaje i oznaczenia literowe najczęściej spotykanych pożywek
Pożywka Murashige & Skoog (MS)
Pożywka Linsmaier i Skoog (LS)
Pożywka Gamborga (B5)
Pożywka Nitscha
Pożywka Tuleckiego
Pożywka Hellera
Pożywka Hildebrandta
Pożywka White'a
Typy pożywek
Typy pożywek (podział ze względu na jakościowy i ilościowy skład chemiczny):
1. Pożywki bogate (np. MS, LS, B5)
2. Pożywki średnio bogate (np. . pożywki Nitscha, Tuleckiego , Hellera)
3. Pożywki ubogie (np. pożywki Hildebrandta, White'a)
Typy pożywek
Typy pożywek ze względu na stan zestalenia:
1. stałe
2. półpłynne
3. płynne
Wybór pożywki
Decyzja odnośnie wyboru konkretnej pożywki dla danej rośliny zależy od:
1. przynależności taksonomicznej badanego gatunku rośliny
2. wieku rośliny
3. wieku organu
4. rodzaju organu
5. czasu prowadzenia kultury
6. procesu, który planuje się indukować w danej kulturze
Przygotowanie pożywki
Przygotowanie pożywki.
A) Ustalenie składu chemicznego.
B) Ustalenie kwasowości pożywki
C. Ustalenie stopnia zestalenia pożywki
D) Ustalenie wymiany gazowej
E) Autoklawowanie pożywki
Przygotowanie pożywki.
A) Ustalenie składu chemicznego.
Decyduje on o powodzeniu kultury i ustala się go w zależności od rodzaju kultury in vitro.
Przydatność jej dla utrzymania żywotności inoculum zależy od takich właściwości jak:
- dostępność składników pokarmowych
- potencjał oksydoredukcyjny
- odczyn
- antagonizm i synergizm jonów
Przygotowanie pożywki.
A) Skład chemiczny.
1) makroelementy - azot, siarka, fosfor, potas, magnez, wapń, żelazo, chlor.
2) mikroelementy - bor, miedź, mangan, molibden, cynk.
3) ultraelementy - kobalt, jod, glin, nikiel, tytan.
4) woda
5) inne związki (hormony, aminokwasy agar , cukier i inne)
Skład chemiczny.
Azot - dodajemy do pożywek w formie nieorganicznej (azotanowej i amonowej) i organicznej (aminokwasy, peptony, białka).
Na ogół formy azotanowe są pobierane szybciej, szczególnie w mniej korzystnych warunkach tlenowych.
Niektóre rośliny np. ziemniaka, zbożowe, wolą formy amonowe chociaż w stanie dojrzałości lepiej reagują na formy azotanowe.
Ze związków organicznych azotu należy wymienić szczególnie takie aminokwasy jak glicyna czy alanina a także kwas glutaminowy, asparaginowy, hydrolizat kazeinowy, peptony.
Występuje w budowie białek, enzymów, aminokwasów, kwasów nukleinowych i innych związków.
Brak azotu u rośliny cytrusowej
Skład chemiczny.
Siarka - najlepiej ją dostarczać w formie siarczanów.
Zapotrzebowanie na siarkę częściowo zaspokajają dodawane do pożywki aminokwasy, witaminy oraz preparaty białkowe.
Siarka dodawana do pożywki w formie siarkowodoru czy siarczków jest toksyczna.
Występuje w budowie aminokwasów, peptydów, białek oraz witamin.
Brak siarki u rośliny cytrusowej
Skład chemiczny
Fosfor - jest absorbowany przez roślinę w formie jednowartościowego lub dwuwartościowego jonu fosforanowego i w takiej postaci powinien występować w pożywce.
Wchodzi w skład budowy cukrowców, nukleotydów, kwasów nukleinowych, fosfolipidów i koenzymów.
Brak fosforu u rośliny cytrusowej
Skład chemiczny
Potas - bywa najczęściej podawany w formie azotanów, chlorków i fosforanów.
Często dostarczenie do pożywki azotanu potasu zamiast azotanu amonu zmniejsza brunatnienie eksplantatów.
Jest aktywatorem wielu enzymów i takich procesów jak fotosynteza, przemieszczanie asymilatów, przemiany związków organicznych.
Brak potasu u rośliny cytrusowej
Przygotowanie pożywki
Przygotowanie pożywki.
A) Ustalenie składu chemicznego.
B) Ustalenie kwasowości pożywki
C. Ustalenie stopnia zestalenia pożywki
D) Ustalenie wymiany gazowej
E) Autoklawowanie pożywki
Skład chemiczny
Sód - dostarczany podobnie jak potas w formie azotanów, chlorków i fosforanów.
Rola w roślinie nie jest bliżej poznana.
Skład chemiczny
Magnez - podawany zwykle w postaci siarczanu magnezu.
Może być zastąpiony przez mangan, cynk i kobalt ale tylko częściowo.
Aktywuje różne enzymy, pełni ważną rolę w procesie fotosyntezy i oddychania.
Brak magnezu u rośliny cytrusowej
Skład chemiczny
Wapń - podawany zwykle w formie chlorków lub azotanów.
Niska zawartość wapnia w pożywce sprzyja toksycznemu działaniu nawet niewielkich ilości manganu, miedzi i żelaza.
Jest niezbędny do budowy ścian komórkowych, utrzymania struktury błon, aktywności enzymów a także do polarnego transportu auksyn.
Skład chemiczny
Żelazo - najczęściej stosowany jest w pożywkach związek kompleksowy żelaza z kwasem etylenodwuaminoczterooctowym lub sól sodowo-żelazowa tego kwasu (Fe-EDTA lub NaFeEDTA).
Jest niezbędny w licznych procesach oksydoredukcyjnych w mitochondriach i chloroplastach.
Brak żelaza u rośliny cytrusowej
Skład chemiczny
Chlor - wchodzi do pożywek w formie chlorków i pobierany jest w postaci jonu Cl-.
Rola w roślinie nie jest bliżej poznana.
Ostatni z pierwiastków zaliczany do makroelementów
Skład chemiczny
Bor - dodawany do pożywki jako kwas borowy i pobierany jako jon boranowy.
Wpływa prawdopodobnie na budowę ścian komórkowych, metabolizm kwasów nukleinowych, uczestniczy w przemianach i transporcie węglowodanów.
Brak boru u rośliny cytrusowej
Skład chemiczny
Miedź - dodawana do pożywki jako siarczan miedzi.
Występuje w wielu enzymach, uczestniczy w przemianach tłuszczowców, występuje w fotosyntetycznym łańcuchu transportu elektronów.
Brak miedzi u rośliny cytrusowej
Skład chemiczny
Mangan - dodawany do pożywki w formie siarczanu manganowego.
Jest aktywatorem wielu reakcji (np. fotoliza wody) uczestniczy w utrzymaniu równowagi układu oksydoredukcyjnego.
Brak manganu u rośliny cytrusowej
Skład chemiczny
Molibden - do pożywki dodaje się zwykle sole molibdenianowe zawierające jon MoO4-.
Bierze udział w przemianach azotu,, jest niezbędny przy syntezie i działaniu kwasu askorbinowego i wpływa na metabolizm związków fosforowych.
Brak molibdenu u rośliny cytrusowej
Skład chemiczny
Cynk - dodawany do pożywki jako siarczan cynku.
Bierze udział w syntezie substancji wzrostowych oraz wchodzi w skład wielu enzymów.
Pełni ważne funkcje w metaboliźmie białkowym i fosforanowym oraz w procesie oddychania.
Ostatni z pierwiastków zaliczany do mikroelementów
Brak cynku u rośliny cytrusowej
Skład chemiczny
Kobalt - dodawany w formie chlorku kobaltu.
Bierze udział w metaboliźmie roślin i wiązaniu azotu cząsteczkowego.
Skład chemiczny
Jod - dodawany w formie jodku potasu.
Rola bliżej nie jest znana ale w małych ilościach wpływa korzystnie na wzrost roślin.
Skład chemiczny
Glin - dodawany w formie chlorku glinu.
Stwierdzono jego wpływ na pęcznienie cytoplazmy i aktywność pewnych enzymów.
Wpływa ogólnie korzystnie na wzrost roślin.
Skład chemiczny
Nikiel - dodawany jako chlorek niklu.
Prawdopodobnie wpływa na procesy związane z oddychaniem roślin.
Skład chemiczny
Tytan - dodawany jako siarczan tytanu.
Prawdopodobna rola nie jest znana ale korzystnie wpływa na wzrost roślin
Ostatni z z pierwiastków zaliczany do ultraelementów
Witaminy
Tiamina (B1, aneuryna) - dodawana do pożywki w formie chlorowodorku aneuryny w ilości 0,1-1 mg/dcm3.
Jest ona prekursorem związków biorących aktywny udział w procesie fotosyntezy i oddychania.
Witaminy
Kwas pantotenowy (należy do grupy witamin B: B3 lub B5) - dodawany do pożywki jako pantotenian wapnia w ilości 0,1-1 mg/dcm3.
Bierze udział w przemianach kwasów tłuszczowych.
Witaminy
Pirydoksyna (B6, adermina) - dodawana do pożywki w postaci chlorowodorku w ilości 0,1-1 mg/dcm3.
Jej obecność jest istotna ponieważ fosforan pirydoksyny jest aktywatorem aminotransferaz.
Witaminy
Biotyna (H) - dodawana do pożywki w ilości 0,1-1 mg/dcm3.
Uczestniczy w procesie syntezy kwasów tłuszczowych.
Witaminy
Kwas nikotynowy (PP, niacyna) - dodawana w formie kwasu nikotynowego w ilości 0,5-1 mg/dcm3.
Bierze on udział w strukturze koenzymów dehydrogenaz i tworzeniu witaminy B2.
Witaminy
Kwas askorbinowy (witamina C) - dodawana do pożywki w ilości 1-100 mg/dcm3.
Bierze udział w reakcjach oksydoredukcyjnych, opóźnia także starzenie i brunatnienie tkanek.
Witaminy
Kwas p-aminobenzoesowy - dodawany do pożywki w ilości 0,05-1 mg/dcm3.
Dokładne znaczenie nie jest poznane, ale polepsza wzrost roślin.
Witaminy
Kwas foliowy - dodawany do pożywki w ilości 0,01-0,1 mg/dcm3.
Dokładne znaczenie nie jest znane ale polepsza wzrost roślin.
Regulatory wzrostu i rozwoju
Auksyny - dodawane do pożywki w ilościach: IAA - 0,01-10 mg/dcm3, NAA, 2,4 D - 0,001-10 mg/dcm3.
Odgrywają znaczną rolę w procesach wzrostu i rozwoju roślin.
Zostały więc wykorzystane do pobudzania regeneracji brakujących organów, inicjowania wegetatywnych pąków, namnażania komórek kalusa.
Kalus na pożywce bez auksyn nie może rosnąć i nie zachodzą w nim żadne procesy organogenezy.
Auksyny w kulturach in vitro
W kulturach in vitro auksyny inicjuja podziały komórkowe co w konsekwencji prowadzi do wytworzenia kalusa.
Powodują także elongację komórek , stymulują tworzenie korzeni i indukują somatyczną embriogenezę.
Kultury przetrzymywane przez dłuższy czas w obecności auksyny dodanej do pożywki zaczynają same syntetyzować endogenną auksynę uniezależniając się w ten sposób od auksyny egzogennej.
Syntetyczne auksyny stosowane w kulturach in vitro są bardziej aktywne niż te naturalne
Spośród syntetycznych auksyn do pożywek dodajemy najczęściej: kwas α-naftylo-1-octowy (NAA), kwas indolilo-3-masłowy (IBA), kwas 2,3-dichlorofenoksyoctowy (2,4-D).
Po autoklawowaniu pożywki i podczas przechowywania na świetle poziom auksyn w pożywce obniża się.
Regulatory wzrostu i rozwoju
Gibereliny - dodawane niekiedy do pożywek w formie kwasu giberelowego (GA3).
Regulator ten na ogół nie jest niezbędny dla większości eksplantatów, lecz często polepsza ich wzrost i rozwój w kulturach in vitro.
Gibereliny w kulturach in vitro
W kulturach in vitro wykorzystywanie giberelin jest o wiele rzadsze niż auksyn i cytokinin.
Stosuje się je najczęściej w celu wydłużanie pędów lub przerywania stanu spoczynku izolowanych zarodków.
Regulatory wzrostu i rozwoju
Cytokininy (zeatyna, kinetyna, 6-benzyloaminopuryna, adenina) - dodawane do pożywek w ilości 0,1-40 mg/dcm3.
Powodują dzielenie się komórek, mobilizują również składniki pokarmowe i wywołują reakcje odmładzania.
W pożywce istotny jest stosunek cytokinin do auksyn, gdyż od niego zależy wzmożony rozwój części pędowych lub korzeniowych i kalusa.
Cytokininy w kulturach in vitro
Cytokininy w kulturach in vitro wykorzystywane są w celu indukowania podziałów komórkowych, inicjacji merystemów pędowych, znoszenia dominacji wierzchołkowej, a stymulacji wyrastania pędów bocznych, zahamowania tworzenia korzeni, oraz opóźniania procesu starzenia.
Egzogenne cytokininy najczęściej stosowane w kulturach in vitro 6-dimetyloalliliaminopuryna (2iP), kinetyna (K) i benzyloadenina (BA).
Decydujące znaczenie w rozwoju pędu lub korzeni ma stosunek auksyn do cytokinin w pożywce.
Wysokie stężenie auksyn w stosunku do cytokinin stymuluje wytwarzanie korzeni a wysokie stężenie cytokinin w stosunku do auksyn stymuluje namnażanie pędów bocznych.
Regulatory wzrostu i rozwoju
Inhibitory wzrostu (ABA, związki fenolowe) - powstrzymują wzrost pąków i kiełkowanie nasion, przyśpieszają starzenie, opadanie liści i hamują kwitnienie.
ABA w kulturach in vitro
Kwas abscysynowy w kulturach in vitro wykorzystywany jest przy regulacji przebiegu somatycznej embriogenezy.
Umożliwia on u niektórych gatunków wykształcanie somatycznych zarodków.
Znalazł on także zastosowanie w hamowaniu przedwczesnego kiełkowania zarodków oraz indukcji odporności na odwodnienie.
Regulatory wzrostu i rozwoju
Etylen - hamuje wzrost, znosi działanie auksyn, przyśpiesza dojrzewanie owoców, wzmaga defoliację.
Etylen w kulturach in vitro
W kulturach in vitro obserwowano zarówno pozytywny wpływ etylenu na eksplantaty jak i negatywny.
Obserwowany pozytywny wpływ polegał na stymulacji wzrostu tkanki kalusowej , stymulacji wzrostu wydłużeniowego, zwiększenia produkcji zarodków somatycznych
Negatywny wpływ to zahamowanie wzrostu, zmniejszenie liczby wytwarzanych zarodków czy ich nieprawidłowy rozwój.
Etylen w kulturach in vitro
W kulturach in vitro rośliny znacznie częściej są narażone na działanie zbyt wysokich stężeń etylenu niż w warunkach in vivo dlatego że hodowla odbywa się w zamkniętych pojemnikach, cięty materiał zwiększa wskutek stresu wydzielanie etylenu a obecność auksyn i cytokinin w pożywce jak również agaru wpływa na wydzielanie etylenu.
Czasem także materiał z którego wykonany jest pojemnik może powodować wzrost stężenia etylenu.
Może stanowić to przyczynę zakłóceń we wzroście i rozwoju, przyśpieszanie procesu starzenia, żółknięcia liści i opadania organów.
Etylen w kulturach in vitro
Podwyższone stężenie etylenu w pojemniku do hodowli uzyskuje bądź przez jego bezpośrednią aplikację do wnętrza bądź tez przez dodanie do pożywki etefonu, który w tkankach roślinnych rozkłada się z wydzielenie etylenu lub jego prekursora.
Natomiast obniżenie stężenia etylenu uzyskuje się poprzez blokadę jego biosyntezy przez inhibitory biosyntezy takie jak: aminoetoksywinyloglicynę (AVG), kwas aminooksyoctowy (AOA), dinitrofenol lub jony kobaltu.
Etylen w kulturach in vitro
Etylen można też usuwać przez wentylację pojemnika lub jego pochłanianie przez roztwór nadmanganianu potasu lub nadchloranu rtęci.
Można też zablokować działanie etylenu na poziomie komórkowym przez specyficzne inhibitory wiązania etylenu takie jak jony srebra lub norbornadien
Związki jasmonowe
Związki jasmonowe (kwas jasmonowy -JA) - kwas jasmonowy i jego pochodne stymulują ustępowanie głębokiego spoczynku nasion, zamykanie aparatów szparkowych, rozwój bulw, dojrzewanie owoców, starzenie się liści i opadanie organów.
Hamują kiełkowanie nasion, pyłku, zarodników, wzrost elongacyjny, tworzenie się pąków a także uczestniczą w reakcji rośliny na stres.
Kwas jasmonowy
W kulturach in vitro wykazano poprzez działanie metylowej pochodnej JA wpływ na hamowanie wzrostu kalusa soi, ryżu, lucerny.
Ale wykazano także że sam JA stymulował wzrost kalusa, korzeni i pędów ziemniaka.
JA-Me blokował także indukcję somatycznej embriogenezy i rozwój somatycznych zarodków lucerny
Przygotowanie pożywki i wprowadzanie na nią fragmentów roślin
Etapy
1.przygotowanie pożywki
2. sterylizacja materiału
3. wprowadzanie roślin na pożywkę
Wyszczepianie
Pasażowanie
4. przeniesienie do warunków hodowlanych i hodowla
Poliaminy
Poliaminy, zwane też poliaminami alifatycznymi (PA) to związki organiczne o małej masie molowej, mające w swojej strukturze grupy aminowe (—-NH2).
Część z nich występuje w komórkach ludzi, zwierząt i bakterii i określana jest mianem amin biogennych np. kadaweryna, putrescyna, spermidyna.
Poliaminy biorą udział w wielu biochemicznych procesach komórkowych.
Niektóre są hormonami roślinnymi i koenzymami.
Poliaminy
Poliaminy (putrescyna, spermidyna i spermina) mają największe znaczenie w regulacji podziałów komórkowych i dalszego różnicowania.
W kulturach in vitro poliaminy stymulowały podziały komórkowe, uczestniczyły w inicjacji korzeni oraz indukcji somatycznej embriogenezy.
Aminokwasy
Do pożywek dodawane następujące aminokwasy i amidy: cysteina, glicyna, alanina, arginina, asparagina, kwas asparaginowy, cystyna, kwas glutaminowy, glutamina, histydyna, izoleucyna, leucyna, lizyna, metionina, fenyloalanina, pralina, seryna, treonina, tryptofan, tyrozyna i walina.
Są one dodawane do pożywek w formie L.
Formy D i L związków
Związki, które mają choćby 1 asymetryczny atom węgla nazywamy związkami aktywnymi optycznie, tzn. mają one zdolność skręcania płaszczyzny polaryzacji światła.
Jeśli skręcają tę płaszczyznę w prawo - są to formy D, jeśli w lewo - formy L.
Najważniejsze związki tego typu występujące w organizmie ludzkim to cukry i aminokwasy.
Większość cukrów występująca naturalnie w przyrodzie to formy D.
Aminokwasy z kolei mają formę L.
Enzymy katalizujące reakcje chemiczne w organizmie żywym działają jedynie na formy naturalnie występujące w organizmie, nie działają na ich odbicia lustrzane.
Inne substancje w pożywce
Węglowodany - najczęściej do pożywek dodawane są: sacharoza w ilości 1-5%, glukoza w ilości 3-4%, fruktoza w ilości 3-4% bądź też obydwa ostatnie cukry łącznie.
Inozytol - (mioinozytol lub mezoinozytol) - pochodna alkoholowa cukrów prostych, wchodząca w skład fosfolipidów
Inozytol
Inozytol (najczęściej spotykaną w przyrodzie formą występowania jest myo-inozytol) to nazwa zwyczajowa cykloheksanheksolu - cyklicznego sześciowęglowego alkoholu polihydroksylowego posiadającego sześć grup hydroksylowych (cukrol).
Zależnie od położenia grup hydroksylowych istnieje teoretycznie dziewięć stereoizomerów inozytolu, przy czym istnieje para enanciomerów (chiro-Inozytol).
W najczęściej występującej formie grupy hydroksylowe przy węglach 1, 2, 3 i 5 znajdują się po tej samej stronie pierścienia, a grupy hydroksylowe przy węglach C4 i C6 po przeciwnej stronie.
Ta forma nosi nazwę systematyczną cykloheksan-cis-1,2,3,5-trans-4,6-heksol, nazwę zwyczajową myo-Inozytol i występuje w wielu roślinach i zwierzętach.
Agar
Agar-agar, agar, E406 - substancja żelująca, której głównym składnikiem jest trudno przyswajalny przez człowieka cukier galaktoza.
Agar-agar dobrze rozpuszcza się w wodzie o temperaturze ok. 90-100°C, a zestala się tworząc rodzaj żelu w 40-50°C. Zestalony żel rozpuszcza się po ponownym podgrzaniu do 90-100°C.
Agar-agar wytwarzany jest z krasnorostów (Rhodophyta), wydobywanych głównie u wybrzeży Japonii (często pozyskiwanych z podwodnych plantacji). Obecnie obserwuje się wzrost produkcji agar-agaru ze względu na rosnące zapotrzebowanie.
Agar
Agar, agar-agar, polisacharyd zbudowany głównie z agarozy i agaropektyny, galaretowata, koloidalna substancja otrzymywana z glonów (krasnorostów występujących w Oceanie Indyjskim i w zachodniej części Oceanu Spokojnego).
Rozpuszcza się w gorącej wodzie, w zimnej pęcznieje przechodząc w żel.
Agar, w postaci proszku, włókien i krążków, używany jest m.in. w przemyśle spożywczym (zamiast żelatyny), kosmetycznym, farmaceutycznym oraz w bakteriologii jako składnik pożywek bakyeryjnych, w lecznictwie jako środek przeczyszczający, w przemyśle papierniczym i tekstylnym do apreturowania papieru i jedwabiu.
Agaroza
Agaroza to polisacharyd będący polimerem pochodnych galaktozy, otrzymywany przez oczyszczanie z agaru jadalnego.
Agaroza jest łatwo rozpuszczalna w wodzie, w temperaturze pokojowej odwracalnie tworzy żel.
Temperatura przejścia żelu z zol (potocznie topnienie agarozy) jest wyższa od temperatury zestalania (histeraza).
Agaroza
Zastosowania agarozy
Agaroza ma zastosowanie w technikach analitycznych i preparatywnych biologii molekularnej.
Żel agarozowy służy jako podłoże do elektroforetycznego rozdzielania kwasów nukleinowych. Zmodyfikowana chemicznie agaroza służy jako podłoże w chromatografii powinowactwa oraz jako sito molekularne.
Żel agarozowy wykorzystuje się też do unieruchamiania preparatów do sekcji na mikrotomie.
Zdolność komórek do wzrostu na podłożu z miękkiego żelu agarozowego jest jednym z testów na transformację nowotworową.
Inne substancje
Agar - (polisacharyd zbudowany głównie z galaktozy, składnik ścian komórkowych glonów).
Stosujemy najczęściej Bacto-Agar w ilości 0,5-0,8% lub Difco-Noble Agar w ilości 0,6-1%.
Możemy także stosować substytuty agaru, przypominające właściwościami agar polecane przez różne firmy.
Substytuty agaru np.kurdlan
Zastosowanie kurdlanu
Główne zastosowania kurdlanu wynikają wprost z jego unikalnych cech.
Już krótko po odkryciu planowym zastosowaniem kurdlanu stało się użycie go głównie w przemyśle spożywczym jako substytutu naturalnych polisacharydów roślinnych oraz preparatu zagęszczającego (żelifikującego).
Ze względu na obecność wiązań β-(1→3)-glikozydowych które nie są hydrolizowane przez enzymy trawienne człowieka kurdlan charakteryzuje się niską wartością kaloryczną co sugeruje możliwe jego wykorzystanie w produktach dietetycznych.
Substytuty agaru - kurdlan
Zastosowanie kurdlanu
Z kolei tworzenie przez kurdlan żeli odpornych na zamrzanie oraz zdolnych do wchłaniania dużej ilości cukrów sugeruje możliwość wykorzystania tego polimeru w produkcji lodów, mrożonek i wyrobów cukierniczych.
Może on być wykorzystywany także w produkcji zup oraz deserów, ponieważ jest dodatkiem nadającym płynom pseudoplastyczny charakter, zagęszczającym oraz stabilizującym żywność.
Kurdlan został dopuszczony do stosowania w przemyśle spożywczym w Japonii, gdzie stanowi składnik różnych pokarmów (głównie cukierniczych), ale na razie nie jest akceptowany jako składnik żywności w USA i Unii Europejskiej.
Kurdlan wykorzystywany jest również przy tworzeniu biodegradowalnych i nierozpuszczalnych w wodzie błon.
Węgiel aktywowany
Węgiel aktywny (aktywowany) - substancja składająca się głównie z węgla pierwiastkowego w formie bezpostaciowej (sadza), częściowo w postaci drobnokrystalicznego grafitu (poza węglem zawiera zwykle popiół, głównie tlenki metali alkalicznych i krzemionkę).
Charakteryzuje się bardzo dużą powierzchnią w przeliczeniu na jednostkę masy (500÷2500 m˛/g - dla porównania powierzchnia kortu tenisowego wynosi około 260 m˛), dzięki czemu jest doskonałym adsprbentem wielu związków chemicznych.
Węgiel aktywowany
Wielka powierzchnia właściwa węgla aktywnego jest wynikiem istnienia wewnętrznej struktury porowatej odziedziczonej w dużym stopniu po wyjściowym materiale organicznym, a rozwiniętej w procesie wygrzewania w wysokiej temperaturze przy ograniczonym dostępie powietrza.
Większość porów to silnie adsorbujące mikropory oraz pełniące głównie rolę kanałów transportowych mezopory.
Węgiel aktywny jest często modyfikowany (np. przez usunięcie popiołu lub impregnację związkami chemicznymi), aby zachowując swoje właściwości adsorpcyjne, mógł bardziej specyficznie pochłaniać określony składnik (np. metale ciężkie).
Inne substancje
Węgiel aktywowany - dodawany do pożywek w ilości 2%.
Pochłania prawdopodobnie inhibitory wzrostu, absorbuje endogenne i egzogenne regulatory wzrostu i rozwoju, wpływa niekiedy korzystnie na wzrost izolowanych wycinków roślin a także organogenezę w kulturach pylników i ukorzenianie się roślin.
Właściwości chemiczne i fizyczne pożywki
Przygotowanie pożywki.
B) Ustalenie kwasowości pożywki
Kwasowość pożywki - najodpowiedniejsze pH waha się w granicach 5,5-6,0.
Doprowadzamy pH do odpowiedniej wartości zasadą sodową lub potasową (NaOH i KOH) lub kwasem solnym (HCl) przed autoklawowaniem.
W czasie trwania eksperymentu pożywka kwaśnieje, pH poniżej 4,5 doprowadza do zniszczenia eksplantatu.
Właściwości chemiczne i fizyczne pożywki
C. Ustalenie stopnia zestalenia pożywki - stopień zestalenia ustala się dobranym stężeniem agaru.
Niektóre eksplantaty rosną lepiej na płynnej pożywce (np. pąki) inne na zestalonej (np. merystemy),
Właściwości chemiczne i fizyczne pożywki
D) Ustalenie wymiany gazowej
Wymiana gazowa - dla właściwego przebiegu procesów życiowych potrzebny jest stały dopływ tlenu i dwutlenku węgla.
Zmniejszenie stężenia tlenu sprzyja tworzeniu pędów, zwiększenie stymuluje ukorzenianie się.
Kultury tkankowe mają znacznie ograniczone zdolności asymilacji CO2, ale jest on niezbędny do innych procesów życiowych dzielącym się komórkom.
Eksplantaty rosnące na pożywkach stałych mają zapewniony dostęp O2 i CO2 a na pożywkach płynnych umożliwia im to wstrząsanie.
Przygotowanie pożywki.
Przygotowujemy najpierw tzw. roztwory macierzyste to jest wodne roztwory kilku związków, które możemy mieszać ze sobą bez obaw, że będą one reagować ze sobą i unieaktywniać niektóre jony.
Zestaw związków jest podany w odpowiednich tabelach.
Najczęściej stosowane pożywki
Mogą to być pożywki:
Gamborga (1965)
Gamborga i wsp. (1968),
Hellera (1953),
Knopa (1894).
Knudsona (1946),
Linsmaiera i Skooga (1965)
Murashige, Skooga ( 1962),
Nitcha, Nitcha i Lichtera (1981),
White'a (1963)
Najczęstsze składniki pożywek
Skład najczęściej stosowanych pożywek
A)Makroelementy KNO3, KH2PO4, NaH2PO4 x H2O, NH4NO3, (NH4)2SO4, MgSO4 x 7H2O, CaCl2 x 2H2O, Ca(NO3)2 x 4H2O, KCl, Na2SO4
B)Mikroelementy H3BO3 ,MnSO4 x 4H2O, NaFeEDTA, Na2EDTA, FeSO4 x 7H2O, Fe2(SO4)3, CoCl2 x 6H2O, CuSO4 x 5H2O, ZnSO4 x 7H2O, Na2MoO4 x 2H2O, KI0
C) Substancje organiczne Glicyna, Tiamina HCl, Pirydoksyna HCl, Cysteina HCl, Kwas nikotynowy, Kwas foliowy, Myo-inozytol, Pantotenian-Ca, Biotyna, Glutation, L-glutamina, L-seryna, Sacharoza, 2,4-D, IAA, Kinetyna
Przykładowe składy pożywek
Pożywki w proszku
Możemy także coraz częściej posługiwać się sproszkowanymi pożywkami, produkowanymi przez różne firmy produkujące odczynniki, gdzie wystarczy tylko naważyć odpowiednią ilość pożywki i rozpuścić ją w wodzie.
Sporządzanie pożywki.
Przygotowanie roztworów macierzystych
Odmierzenie odpowiedniej ilości każdego z roztworów macierzystych lub naważenie pożywki stałej,
Odważenie pozostałych składników (najczęściej cukier, agar)
Połączenie razem i uzupełnienie wodą,
Doprowadzenie do odpowiedniego pH,
Sporządzanie pożywki.
Przygotowanie pożywki.
D) Autoklawowanie pożywki
Zagotowanie pożywki do całkowitego rozpuszczenia się agaru (0,5-1 godziny),
Rozlewanie gorącej pożywki do wysterylizowanych naczyń szklanych (kolbki Erlenmayera, słoiki, probówki, plastikowe pojemniki)
Sterylizacja pożywki w naczyniach w autoklawie, najczęściej w temperaturze 119OC, przy ciśnieniu 0,8-1,0 atmosfery prze 15- 20 minut
Zastygnięcie pożywki (około 1-2 godzin) w warunkach sterylnych,
Wyszczepianie na przygotowaną pożywkę wysterylizowanych eksplantatów w komorze do szczepień z laminarnym nadmuchem sterylnego powietrza..
Autoklaw i autoklawowanie
Autoklaw - hermetycznie zamknięty, ogrzewany zbiornik służący do przeprowadzania różnych procesów chemicznych lub do wyjaławiania w podwyższonej temperaturze i przy zwiększonym ciśnieniu, np. narzędzi chirurgicznych, środków spożywczych i farmaceutycznych.
Autoklaw składa się zazwyczaj z następujących elementów:
1.naczynia głównego o grubych ściankach, zdolnych wytrzymywać wysokie ciśnienie
2.pokrywy o równie grubych ściankach, posiadająca kryzę zamykaną na śruby, co tworzy mocne i szczelne połączenie
3.manometru pokazującego panujące wewnątrz nadciśnienie
4.zaworu ciśnieniowego, pełniącego rolę zabezpieczenia przed eksplozją gdyby wewnątrz autoklawu powstało zbyt wysokie ciśnienie.
AUTOKLAW KLASA B
AUTOKLAW KLASA B
Są one jednymi z najbardziej zaawansowanych sterylizatorów parowych.
Potrafią sterylizować praktycznie każdy rodzaj materiałów, zwłaszcza w kierunku długich, cienkich przewodów, jak na przykład cewniki, igły, endoskopy, wzierniki, końcówki stomatologiczne itp.
Prezentowane przez klasę B funkcje nie są dostępne w pozostałych klasach autoklaw, S oraz N.
Najważniejszą cechą, która wyróżnia autoklawy klasy B to frakcjonowana próżnia wstępna.
Całkowite usunięcie powietrza otrzymuje się poprzez sekwencję impulsów próżni i wstrzyknięć pary.
Jak do tej pory jest to najlepsza z istniejących technik, która daje możliwość sterylizacji każdego rodzaju produktu.
AUTOKLAW KLASA N
AUTOKLAW KLASA N
Jest to najniższa klasa tego typu urządzeń.
Autoklawy klasy N służą przede wszystkim do sterylizacji materiałów prostych, jak na przykład lite, nieopakowane wsady.
Dzięki takim urządzeniom nie można niestety sterylizować wsadów wgłębionych, porowatych czy też narzędzi opakowanych, gdyż funkcje, którymi dysponuje się w przypadku tego urządzenia fizycznie nie spełniają odpowiednich wymagań, przez co nie zostało potwierdzone bezpieczeństwo przy sterylizacji takich wsadów w tego typu autoklawach.
Autoklawy takie posiadają najniższe cechy funkcjonalne, jednakże równocześnie odpowiadają wysokim wymaganiom technicznym.
AUTOKLAW KLASA S
AUTOKLAW KLASA S
Urządzenia te należą do gatunku prawdziwie zaawansowanych sterylizatorów parowych.
Są one w stanie wysterylizować wsady do typu B, jednakże nie nadają się do sterylizacji wsadów typu A, do których należą między innymi narzędzia o budowie kapilarnej.
Klasa S stanowi coś pośredniego pomiędzy klasami B oraz N.
Możliwe jest w nich praktycznie całkowite usuwanie powietrza z komory przed procesem sterylizacji dzięki działaniu pompy próżniowej, która jest wbudowana w urządzenie.
Usuwanie powietrza w autoklawach klasy S jest znacznie mniej skomplikowane, ale równocześnie mniej skuteczne niż w autoklawach typu B. Występuje tutaj tylko jednostopniowa próżnia wstępna.
Autoklawowanie
Autoklawowanie to w naszym przypadku proces wyjaławiania pożywki w podwyższonej temperaturze i przy zwiększonym ciśnieniu.
Wyszczepianie lub wszczepianie
Wyszczepianie jest to proces przeniesienia wysterylizowanego fragmentu roślinnego (lub nawet pojedynczej komórki czy grupy komórek) na wysterylizywaną (wyjałowiona) pożywkę.
Pasażowanie
Pasażowanie jest to proces przeniesienia rośliny lub fragmentu roślinnego rosnącego w kulturze in vitro na świeżą wysterylizowaną pożywkę.
Kultura in vitro