Rola drobnoustrojów w produkcji żywności.
Beata Chabłowska, Katarzyna Piasecka-Jóźwiak, Krystyna Stecka
Instytut Biotechnologii Przemysłu Rolno-Spożywczego, Warszawa
Wytwarzanie żywności przez człowieka ma swój początek ok. 10 tys. lat p.n.e. na Bliskim
Wschodzie w okresie tzw. rewolucji neolitycznej, kiedy to plemiona ludzkie stopniowo
porzucały koczowniczy tryb życia i zajęły się uprawą roli oraz hodowlą zwierząt.
Zwiększenie ilości dostępnej żywności pociągnęło za sobą konieczność opracowania metod
jej konserwowania w celu przedłużenia trwałości i umożliwienia przechowywania produktów.
Rozwijanie metod konserwowania polegało na zbieraniu doświadczeń i obserwacji. Bardzo
wcześnie w produkcji żywności człowiek wykorzystywał nieświadomie działalność
mikroorganizmów, głównie w procesach fermentacyjnych, w wyniku których powstają tak
podstawowe produkty jak: pieczywo, sery, fermentowane napoje mleczne, kiszonki
warzywne, piwo, wino, spirytus, fermentowane wyroby mięsne.
Najważniejsze grupy drobnoustrojów uczestniczące w produkcji żywności to bakterie
fermentacji mlekowej i drożdże oraz – w znacznie mniejszym stopniu – niektóre gatunki
pleśni.
Fermentowanie - kiszenie - surowców roślinnych (a także pochodzenia zwierzęcego) jest
jedną z najważniejszych metod przetwarzania żywności, którego efektem jest nie tylko
utrwalanie, lecz także uzyskanie nowych produktów o innych niż surowiec właściwościach
organoleptycznych. W zależności od regionu geograficznego kiszonki sporządzane są
z bardzo różnych surowców roślinnych. W Europie są to głównie kapusta i ogórki,
w mniejszych ilościach kisi się buraki, czosnek, marchew, seler, cebulę, patisony, pomidory,
a nawet grzyby. Fermentacji często poddawane są również soki warzywne z buraków,
pomidorów, selera, pietruszki i marchwi. Takie produkty, ze względu na obecność żywych
bakterii mlekowych, reklamowane są jako probiotyczne.
W wielu krajach świata – np. Grecji, Hiszpanii, Portugalii, Włoszech, Turcji, Maroku,
Tunezji, Chile, Argentynie, Australii – kisi się oliwki, zarówno zielone, jak i czarne, w celu
usunięcia z nich substancji goryczkowych. Oliwki, które spotykamy w handlu, są właśnie
produktem poddanym uprzednio procesowi fermentacji.
W krajach afrykańskich istnieje wiele regionalnych odmian fermentowanych produktów
wytwarzanych z dostępnych tam roślin. Do najbardziej popularnych kiszonek należą: gari –
otrzymywane w wyniku fermentacji manioku a także ogi, sporządzane z fermentującej mąki
kukurydzianej oraz sorgo lub prosa. Ogi jest w tym regionie świata potrawą śniadaniową
dorównującą popularnością płatkom śniadaniowym cornflakes w USA i jest powszechnie
dostępne w handlu w postaci gotowego produktu, nadającego się do podgrzania w kuchence
mikrofalowej. Kolejne egzotyczne potrawy kiszone to pochodzące z Afryki Zachodniej enam
ne-setaakye, sporządzane z siekanych ryb, cebuli, słodkich ziemniaków, imbiru i soli,
a następnie fermentowane przez 120 godzin, lub koreańskie kimchi – produkt uzyskiwany
głównie w wyniku kiszenia kapusty chińskiej, wzbogacany takimi dodatkami jak ogórki,
rzodkiewka, mlecz, szpinak, cebula, kabaczki, a także owoce morza, orzechy, ryż lub mąka
pszenna.
Kiszonki, popularne w Polsce od stuleci, są obecnie szeroko polecane przez dietetyków
i lekarzy ze względu na swoje właściwości prozdrowotne. Są przy tym niskokaloryczne, gdyż
zawierają znacznie mniej cukrów niż warzywa. Zawierają kwas mlekowy, który nie tylko
nadaje produktom przyjemny, orzeźwiający smak, lecz także obniża pH w jelitach, co stwarza
korzystne warunki dla rozwoju naturalnej mikroflory jelitowej, hamuje rozwój bakterii
gnilnych, pomaga oczyścić przewód pokarmowy z toksyn i wspomaga trawienie. Enzymy
syntetyzowane przez naturalną mikroflorę jelitową mają zdolność do rozkładania
powstających w przewodzie pokarmowym związków potencjalnie kancerogennych do
substancji obojętnych dla zdrowia. Kiszonki są źródłem błonnika, który utrudnia
przyswajanie tłuszczów i reguluje perystaltykę jelit zapobiegając zaparciom, są także cennym
źródłem witaminy C i witamin z grupy B. W kiszonkach warzywnych występują związki
o charakterze antyoksydantów, które wspomagają organizm w obronie przed działalnością
wolnych rodników. Wolne rodniki są naturalnie powstającymi w organizmie związkami
zawierającymi aktywne formy tlenu, zdolne do reagowania z biologicznymi składnikami
komórki, co prowadzi do uszkodzeń ich struktury i funkcji, a w efekcie do zmian w materiale
genetycznym, mogących być przyczyną nowotworów. Wartość antyoksydacyjna kiszonek,
np. kiszonej kapusty, może być dwukrotnie wyższa niż świeżych warzyw. Dane
epidemiologiczne wskazują, że w krajach Dalekiego Wschodu, np. w Korei, zachorowalność
na raka jelita grubego jest wielokrotnie niższa niż w Europie, co przypisuje się
systematycznemu, codziennemu spożywaniu kimchi, w ilości średnio 300 g dziennie na
osobę. Tę samą rolę może i powinna spełniać w naszej diecie kiszona kapusta.
Swoje prozdrowotne i organoleptyczne właściwości kiszonki zawdzięczają procesowi
fermentacji prowadzonemu przez bakterie fermentacji mlekowej. Jest to zróżnicowana grupa
bakterii gram-dodatnich, całkowicie lub względnie beztlenowych, naturalnie występujących
w surowcach roślinnych, mleku, surowym mięsie, a także stanowiących naturalną i pożądaną
mikroflorę błon śluzowych oraz jelit człowieka i zwierząt. Do grupy bakterii fermentacji
mlekowej należą takie rodzaje jak Lactobacillus, Pediococcus, Leuconostoc, Carnobacterium,
Oenococcus, Weissella, Streptococcus, Lactococcus, Enterococcus, Tetragenococcus
i Vagococcus. W procesach fermentacji żywności uczestniczą prawie wszystkie z nich za
wyjątkiem trzech ostatnich. Głównym produktem metabolizmu tej grupy drobnoustrojów jest,
w przypadku bakterii homofermentatywnych, kwas mlekowy, oraz – w przypadku gatunków
heterofermentatywnych – także kwas octowy i niewielkie ilości innych kwasów
organicznych, takich jak np. kwas propionowy lub mrówkowy. W procesie powstawania
kiszonek główną rolę pełni kwas mlekowy, który szybko obniża pH środowiska,
uniemożliwiając lub ograniczając rozwój innych, niepożądanych w kiszonkach grup
drobnoustrojów, w tym również drożdży i pleśni. Podczas fermentacji mlekowej oprócz
kwasu syntetyzowane są również w niewielkich ilościach inne metabolity takie jak: diacetyl,
aldehyd octowy, alkohol etylowy, n-propanol, alkohole amylowe czy też acetoina, które
nadają kiszonkom specyficzne właściwości smakowo-zapachowe. W procesie powstawania
kiszonek fermentowanych w sposób tradycyjny (spontaniczny) uczestniczy bardzo bogata
mikroflora składająca się niejednokrotnie z kilkudziesięciu, a nawet powyżej stu szczepów
bakterii fermentacji mlekowej odpowiadających za charakterystyczny, niepowtarzalny smak
produktów.
Warto wiedzieć, że w różnych krajach świata kisi się tak rozmaite produkty jak np. ryby
(zwłaszcza w Skandynawii), odpady rybne, głownie pochodzące z sardynek, w celu
pozyskania wysokobiałkowej paszy dla zwierząt, lub kakao - w celu poprawy twardości
i smaku czekolady.
Drugą grupą drobnoustrojów pełniących zasadniczą rolę w produkcji żywności są drożdże.
O ile w kiszonkach roślinnych stanowią one mikroflorę niepożądaną, o tyle powstawanie
większości innych produktów będących wynikiem fermentacji byłoby niemożliwe bez
współdziałania bakterii fermentacji mlekowej i drożdży. Jednym z najważniejszych
środowisk, w którym mamy do czynienia ze współdziałaniem tych grup drobnoustrojów, są
zakwasy piekarskie.
W ostatnich latach zauważalnie wzrosło zainteresowanie konsumentów smacznym, wolnym
od wszelkich syntetycznych dodatków, tradycyjnie przygotowanym pieczywem. Istnieją
różne lokalne, a nawet rzemieślnicze (zależne od piekarni) odmiany ciast zakwasowych.
Ciasto zakwasowe powstaje w wyniku fermentacji mąki, prowadzonej przez bakterie
fermentacji mlekowej i drożdże. Naturalne zakwaszenie i aromatyzacja ciast, będąca
wynikiem metabolizmu obu grup mikroorganizmów, składa się na niepowtarzalne cechy
sensoryczne pieczywa. Sposób otrzymywania pieczywa zakwasowego jest bardzo różnorodny
w zależności od regionu geograficznego i tradycji kulturowych. Różne rodzaje chlebów
i bułek pszennych wypiekanych z ciast ukwaszanych są charakterystyczne dla krajów rejonu
Morza Śródziemnego, natomiast pieczywo przygotowywane z udziałem mąki żytniej
(w różnych proporcjach do mąki pszennej lub będącej jedynym surowcem) oraz jęczmiennej
dla Europy Środkowej, Wschodniej i Skandynawii. We Włoszech zakwasy stosowane są
w około 30% pieczywa, w wyniku czego powstaje ponad 200 różnych typów wypieków.
Pieczywo zakwasowe wytwarzane było tradycyjnie na Północy Europy by zagospodarować
mąkę żytnią, natomiast na południu kontynentu proces fermentacji z udziałem LAB
stosowano do polepszenia cech technologicznych mąki niskiej jakości. We Francji
najpopularniejsze pieczywo zakwasowe nosi nazwę pain au levain, we Włoszech madre lub
biga. Tradycyjne włoskie ciasteczka Panettone lub Pandoro są otrzymywane z udziałem
ciasta zakwasowego.
Szeroko
znany chleb „San Francisco” jest również pieczywem pszennym
o charakterystycznym kwaśnym zapachu, zawartość syntetyzowanych podczas fermentacji
kwasów octowego i mlekowego pozostaje w nim w stosunku 3:7.
Technologia dominującego na polskim rynku pieczywa mieszanego (około 65 % pieczywa
w ogóle), ze względu na udział maki żytniej, wymaga poddania ciasta ukwaszaniu. Mąka
żytnia, inaczej niż pszenna, stosowana jako surowiec „wymusza” zakwaszanie ciast, w celu
uzyskania ich odpowiedniej struktury. W tym celu stosowane są między innymi tzw. gotowe
kwasy piekarskie, jednak najlepsze rezultaty daje prowadzenie fermentacji ciasta przy udziale
odpowiednio dobranych bakterii fermentacji mlekowej na przykład w postaci odpowiednio
dobranej kultury starterowej tj. „szczepionki” bakterii lub bakterii i drożdży. Ulegają
wówczas nagromadzeniu określone ilości kwasów organicznych – głównie mlekowego
i octowego. Ich ilość powstająca w czasie procesu fermentacji zależy m.in. od rodzaju
zastosowanych bakterii mlekowych, od ich proporcji wobec drożdży i sposobu prowadzenia
ciasta (rzadsza lub bardziej zbita struktura) oraz temperatury fermentacji. Bakterie
Lactobacillus fermentum syntetyzują najwięcej kwasu mlekowego w temperaturze 35º C
natomiast w przypadku Lactobacillus brevis różnica pomiędzy ilością kwasu powstającego
w temperaturze 25° i 35º C jest nieznaczna. Kwasy organiczne wpływają na wytworzenie
właściwej struktury ciasta oraz działają regulująco na aktywność układu amylazo-
skrobiowego.
W czasie fermentacji powstają również, głównie za sprawą drożdży, różne związki
aromatyczne wpływające na właściwości smakowo-zapachowe pieczywa. Tradycyjna metoda
wytwarzania pieczywa żytniego i mieszanego wymaga prowadzenia procesu fermentacji
w sposób
wielofazowy, przy pomocy tzw. kwasów spontanicznych (naturalnie
fermentujących) lub zaczątków oddzielonych z fermentującego zakwasu.
Jakość pieczywa otrzymanego w wyniku fermentacji jest zatem wyższa - charakteryzuje się
ono lepszym smakiem i aromatem, co jest związane z syntetyzowaniem przez drobnoustroje
wielu metabolitów takich jak kwasy organiczne, egzopolisacharydy i/lub enzymy, które
wykazują pozytywny wpływ na teksturę pieczywa i opóźniają jego starzenie. Fermentacja
prowadzona przez mikroorganizmy powoduje także podwyższenie wartości odżywczej
wyrobów. Rozwiązaniem, stosowanym w celu pogodzenia wymogów nowoczesnych
i w pełni zautomatyzowanych piekarni przemysłowych z zachowaniem jakości sensorycznej
pieczywa jest wykorzystanie kultur starterowych o składzie zaprojektowanym odpowiednio
do oczekiwanego efektu.
Ze względu na różnorodność rzemieślniczą i regionalną ciasta kwaśne są źródłem różnych
rodzajów bakterii fermentacji mlekowej i drożdży. Wśród czterdziestu zidentyfikowanych
gatunków bakterii występujących w ciastach zakwasowych większość należy do rodzaju
Lactobacillus i reprezentowanych w mniejszej liczbie Lactococcus, Pediococcus, Weissella
i Leuconostoc. Niektóre gatunki bakterii są charakterystyczne dla zakwasów, tak jak
wyizolowane z ciast i opisane w ostatnich latach jako mikroflora autochtoniczna L. pontis,
L. panis, L. paralimentarius, L. frumenti, L. mindensis, w najbliższym czasie można
oczekiwać scharakteryzowania kolejnych bakterii tej grupy.
W ciastach zakwasowych zidentyfikowano aż 23 gatunki drożdży w większości należące do
rodzaju Saccharomyces i Candida. W zakwasach fermentujących naturalnie dominują różne
rodzaje drożdży w zależności od proporcji mąki (pszenna i żytnia), temperatury prowadzenia
i czasu fermentacji. Identyfikacja przeprowadzona metodami analizy DNA wykazała
obecność Saccharomyces cerevisiae, S. uvarum, Candida humilis. Wśród drożdży
izolowanych z naturalnie fermentujących ciast pszennych występowały szczepy należące do
S. cerevisiae, Pichia membranaefaciens, Yarrowia lipolytica i Debaryomyces hanseni.
Gatunkiem najczęściej izolowanym z ciast a więc dobrze adaptującym się do jego środowiska
jest S. cerevisiae W starterach stosuje się S. cerevisiae i S. exiguus oraz drożdże z rodzaju
Candida i Torulopsis, które biorą udział w kształtowaniu cech smakowo-zapachowych
pieczywa.
Ciasto zakwasowe jest kompleksowym biologicznym systemem, którego właściwości
zależą od wielu różnych czynników, jak składniki ciast, rodzaj mikroflory, warunki procesu,
w tym temperatura, mieszanie, czas fermentacji. Jedne z nich wpływają na fermentację
bezpośrednio, inne mają wpływ pośredni poprzez regulację metabolizmu mikroorganizmów.
Każda z grup drobnoustrojów, czynnych w procesie fermentacji, spełnia określone zadanie
i dopiero suma ich oddziaływań pozwala uzyskać dojrzały zakwas, a potem chleb
o odpowiednich parametrach.
Innym interesującym środowiskiem, w którego powstawaniu uczestniczą drożdże i bakterie
fermentacji mlekowej jest otrzymywany metodą tradycyjnej fermentacji kefir, którego
właściwości są wynikiem metabolizmu drobnoustrojów bytujących w tzw. ziarnach
kefirowych. Ziarna kefirowe są tworami naturalnie powstającymi podczas mieszanej
mlekowo-alkoholowej fermentacji mleka. Ich zasadniczą masę stanowią: skrzep kazeiny,
produkty hydrolizy białek mleka i węglowodanowe śluzowe substancje wytwarzane przez
bakterie - głównie polisacharyd zwany kefiran, będący polimerem D(-)glukozy
i D(+)galaktozy. W masie tej osadzone są komórki różnych szczepów bakterii fermentacji
mlekowej i drożdży oraz produkty ich autolizy, tworząc rodzaj zooglei. Liczbowo stosunek
drożdży do bakterii waha się w granicach 1:10 - 10:50, pod względem składu jakościowego
spotyka się tu: homo i heterofermentatywne pałeczki mlekowe z rodzaju Lactobacillus,
homofermentatywne paciorkowce mezofilne z rodzaju Lactococcus, heterofermentatywne
paciorkowce mlekowe z rodzaju Leuconostoc, termofilne homofermentatywne paciorkowce
mlekowe z rodzaju Streptococcus, bakterie octowe z rodzaju Acetobacter oraz drożdże nie
fermentujące laktozy z rodzaju Saccharomyces i fermentujące laktozę z gatunku Candida
kefir i rodzaju Kluyveromyces.
Populacja ziaren kefirowych charakteryzuje się dużą stabilnością - ziarna te zachowują się
jak jeden organizm i są zdolne do namnażania się i przekazywania swoich cech następnym
"pokoleniom". Właściwość ta przez wielu autorów uważana jest za wynik ścisłej symbiozy
bakterii mlekowych i drożdży tworzących ziarna kefirowe i została opisana już w XIX wieku.
Współcześnie prowadzone są badania mające na celu wyjaśnienie podstaw tej symbiozy.
Między innymi wykazano, że bakterie mlekowe izolowane z ziaren kefirowych na ogół nie są
zdolne do wzrostu w pożywkach laboratoryjnych zawierających monosacharydy. Obecne w
ziarnach
kefirowych szczepy drożdży najprawdopodobniej dostarczają witamin,
aminokwasów i czynników wzrostowych bakteriom fermentacji mlekowej, natomiast same
wykorzystują produkty końcowe metabolizmu bakterii jako źródło węgla. Obecnie na świecie
wytwarzanych jest szereg mlecznych napojów fermentowanych takich jak jogurty, kefiry,
maślanka itp., które są produkowane przy użyciu wyłącznie wybranych szczepów bakterii
fermentacji mlekowej. Globalizacja przyczynia się popularyzacji w świecie nowych,
egzotycznych rodzajów żywności, na przykład ciekawostkę stanowi fakt, że ze względu na
swoje walory, kefir zaczęto obecnie popularyzować w RPA.
Liczne gatunki drożdży i bakterii fermentacji mlekowej są również bardzo ważnymi
składnikami mikroflory prawie wszystkich rodzajów serów, głównie serów dojrzewających,
także produkowanych z udziałem pleśni. Są to tak znane gatunki serów jak francuski
Camembert, hiszpański ser Armada, portugalski Serra da Estrela czy włoskie Pasta Filata
i Pecorino Sardo. W zależności od regionu geograficznego w serach dojrzewających spotyka
się bakterie z rodzajów Lactobacillus, Lactococcus, Leuconostoc i Enterococcus oraz drożdże
z gatunku Saccharomyces cerevisiae i różne gatunki z grupy tzw. non-Saccharomyces Yeasts.
W Polsce są to głównie Candida famata, C. sphaerica, C. intermedia, C. kefyr, Geotrichum
penicillatum i Yarrowia lipolytica. W serach produkowanych metodami tradycyjnymi
w regionie Morza Śródziemnego dominują takie gatunki jak Kluyveromyces marxianus,
K.lactis, C. kefyr, Debaryomyces hansenii, C. famata, C. colliculosa, C. catenulata.
Podobnym składem gatunkowym charakteryzuje się mikroflora serów dojrzewających
produkowanych w Danii, Francji, Austrii i w Niemczech. Badacze holenderscy wymieniają
również takie gatunki jak Torrulaspora delbruecki, Rhodotorula glutinis i Cryptococcus
albidus.
Kolejną gałęzią przemysłu spożywczego, w której niezbędna okazała się obecność
specyficznych gatunków bakterii fermentacji mlekowej i drożdży, jest produkcja wędlin
fermentowanych typu salami i szynek surowych, naturalnie dojrzewających. Różne rodzaje
tych wędlin, tradycyjnie wytwarzane w rejonie Morza Śródziemnego już od czasów
starożytnego Rzymu, zdobyły sobie olbrzymią popularność i są produkowane na całym
świecie. Przykładem włoskich wędlin fermentowanych jest Cianscolo. W celu skrócenia
procesu fermentacji oraz uzyskiwania odpowiedniego smaku, barwy, a także trwałości tych
produktów, niezbędne stało się (tak jak w przypadku pieczywa i serów) wprowadzenie do ich
produkcji na dużą skalę kultur starterowych. W procesie fermentacji mięsa bardzo dużą rolę
odgrywają bakterie, szczególnie z grupy bakterii mlekowych. Jednakże okazało się, iż
stosowanie kultur starterowych zawierających wyłącznie bakterie nie zapewnia wędlinom
fermentowanym właściwego smaku, zapachu i barwy – wędliny te nie zdobyły sobie uznania
konsumentów. Prowadzone od lat 70-tych XX wieku badania naturalnej mikroflory mięsa
surowego oraz wędlin fermentujących wykazały, że znaczną rolę – szczególnie w procesie
dojrzewania tych produktów – odgrywają liczne gatunki drożdży należące do rodzajów:
Candida, Cryptococcus, Debaryomyces, Galactomyces, Pichia, Rhodotorula, Torulaspora
i Trichosporon, a także niektóre garunki pleśni. Obecnie w kulturach starterowych do
produkcji wędlin fermentowanych najczęściej jest stosowany gatunek Debaryomyces hansenii
oraz niektóre formy Candida famata. Drożdże te nadają wędlinom właściwy kolor (poprzez
hamowanie działania peroxydaz niszczących czerwony barwnik mięsa) i intensyfikują
aromat. Enzymatyczna (lipolityczna i proteolityczna) aktywność drożdży z gatunków takich
jak np. Yarrowia lipolytica, Debaryomyces hansenii, Candida utilis i innych jest
odpowiedzialna za powstawanie licznych prekursorów związków aromatu w wędlinach
fermentowanych.
Oprócz prowadzenia fermentacji ciasta najlepiej znanym zastosowaniem drożdży jest ich
wykorzystanie do produkcji różnego rodzaju wyrobów alkoholowych – piwa, wina, wódek.
Warto zaznaczyć, że również podczas fermentacji ciasta prowadzonej przez drożdże
głównymi produktami fermentacji są alkohol etylowy i dwutlenek węgla. Najważniejszym
gatunkiem drożdży wykorzystywanym do fermentacji alkoholowej jest Saccharomyces
cerevisiae które pełnią również kluczową rolę w produkcji różnych gatunków wina. Drożdże
innych gatunków, obecne w surowcu, nie są w stanie samodzielnie fermentować moszczu.
Jednakże ich obecność w procesie fermentacji, tak samo jak w przypadku serów
dojrzewających czy wędlin fermentowanych, ma znaczny wpływ na sensoryczne właściwości
wina w wyniku tworzenia związków aromatu. Dlatego, pomimo wprowadzania starterów do
inicjowania fermentacji także i w winiarstwie (w postaci suszonych kultur wybranych
szczepów drożdży przemysłowych) nadal wielu znawców uważa, że dominacja jednego
gatunku czy też szczepu drożdży prowadzi do zubożenia tradycyjnych, charakterystycznych
dla danego regionu cech wina. W produkcji win gronowych bardzo ważną rolę pełni również
szczep bakterii fermentacji mlekowej Oenococcus oeni, prowadzący fermentację jabłkowo-
mlekową następującą po fermentacji alkoholowej prowadzonej przez drożdże. Od aktywności
metabolicznej tego szczepu zależy końcowa jakość organoleptyczna francuskich win
gronowych, w tym win typu szampańskiego.
Bardzo popularnym na zachodzie Europy fermentowanym napojem niskoalkoholowym jest
cydr - fermentowany sok jabłkowy. Powstaje on przede wszystkim w wyniku aktywności
metabolicznej drożdży lecz również przy współudziale bakterii fermentacji mlekowej.
Drożdże z gatunku Saccharomyces cerevisiae pełnią również istotną rolę w produkcji piwa.
Ponadto w kształtowaniu smaku i aromatu tradycyjnie produkowanego piwa uczestniczą
gatunki należące do rodzajów Candida, Brettanomyces i Saccharomycopsis. Wykazano
również, że dodatek kultur starterowych drożdży z gatunku Geotrichum candidum w procesie
słodowania wpływa korzystnie na rozluźnienie cytolityczne słodu (znacznie lepiej niż
stosowanie formaliny) oraz stanowi skuteczną ochronę ziarna jęczmienia przed grzybami
toksynotwórczymi. Obecność drożdży G. candidum w procesie słodowania znacznie redukuje
ilość ochratoksyny A, niebezpiecznej dla zdrowia człowieka toksyny syntetyzowanej przez
pleśń.
Kolejnym produktem zawdzięczającym swoje własności smakowo-zapachowe procesom
fermentacji jest sos sojowy, popularny obecnie nie tylko w kuchni azjatyckiej, ale na całym
świecie. Kluczową rolę w jego fermentacji odgrywają różne gatunki bakterii fermentacji
mlekowej oraz drożdże, np. z gatunków Zygosaccharomyces rouxii i Candida versatilis.
Drożdże z gatunku Saccharomyces cerevisiae są głównym organizmem odpowiedzialnym za
produkcję spirytusu. W procesach gorzelniczych, szczególnie przy produkcji alkoholu dla
celów spożywczych, mikroflorą niepożądaną są bakterie fermentacji mlekowej
odpowiedzialne za syntezę toksycznego związku – akroleiny – praktycznie nie dającego się
oddzielić od alkoholu etylowego.
Białko uzyskiwane z komórek drożdży piekarskich charakteryzuje się korzystnym składem
aminokwasów egzogennych zbliżonym do składu białka jaja kurzego, uznanego przez FAO
za wzorzec żywnościowy. Dlatego też od lat biomasę drożdży próbuje się wykorzystać jako
niedrogie źródło białka w żywieniu ludzi i zwierząt, do produkcji dodatków smakowo-
zapachowych oraz dodatków poprawiających wartość odżywczą wyrobów spożywczych –
wzbogacających żywność w białko, witaminy i mikroelementy.
W obecnych czasach przy produkcji żywności na skalę przemysłową nie jest możliwe
prowadzenie procesów fermentacyjnych w sposób spontaniczny jedynie przy udziale
mikroflory endogennej, pochodzącej z surowca. Powszechnie stosowane są kultury
starterowe, czyli czyste kultury drobnoustrojów o zróżnicowanym składzie gatunkowym
dobranym zarówno do surowca, jak i do produktu. Ich stosowanie pozwala producentom
żywności uniknąć - prowadzących do znacznych strat ekonomicznych - zakażeń mikroflorą
niepożądaną. W ostatnich latach coraz częściej w skład kultur starterowych włączane są
szczepy bakterii fermentacji mlekowej i drożdży naturalnie występujące w określonych
procesach fermentacyjnych. Ma to służyć zachowaniu charakterystycznego, tradycyjnego
smaku żywności, do którego przyzwyczajeni są konsumenci, oraz zachowaniu specyfiki
produktów regionalnych.
Literatura:
1. Asiedu M., Sanni A.J., 2007, "Chemical composition and microbiological changes during
spontaneous of starter culture fermentation of enam ne-setaakye, a West African
fermented fish-carbohydrate product", European Food Research and Technology; 215(1):
8-12,
2. Caplice E., Fitzgerald G.F., 1999, Food fermentation:role of microorganisms in food
production and preservation. Int. Journal of Food Microbiology, 50:131-139
3. Catzeddu P., Piu P., Sanna M., Raffo A., Sinesio F., Moneta E., Pepario M., Farris G.
(2003): A mixed starter obtained from sourdough compared to bakers yeast for the
production of traditional bread. Second International Symposium on Sourdough from
Fundamentals to Applications, Brussels, Belgium, Editor Luc DE VUYST, 77.
4. Corin A., Coulon F., Charpentier M, 2004, "Diferentiation des souches d'Oenococcus
oeni responsables de la fermentation malolactique des vins par PCR RAPD multiplex",
en Resumes de Communications de 13
eme
Colloque des Bacteries, Nantes, 8-10
Septembre, p.27,
5. Czapski J., 2007, "Wpływ procesów przetwórczych na właściwości antyoksydacyjne
owoców i warzyw", Przemysł Fermentacyjny i Owocowo-Warzywny; 11: 8-9,
6. Faid M., Zouiten E., Elmarrakchi A., Achkari-Beidouri A., 1997, "Biotransformation of
fish waste into a stable feed ingredient", Food Chemistry, 60(1): 13-18,
7. Feuillat M., Bidan P., Rosier Y. (1977): Croissance des bacteries lactiques a partir des
principaux constituants azotes du vin. Annales de Technologie Agricole 26, 435–444.
8. Fleet G. H. (2002): The biodiversity of yeasts in the production of foods and beverages.
Tenth international symposium on yeasts., Papendal, Arnhem, The Netherlands,
Symposium Book p.4.
9. Foszczyńska B., Dziuba E., Stępniewicz R. (2002): Wpływ drożdży Geotrichum
candidum na rozluźnienie słodu jęczmiennego. Wykorzystanie drożdży w przetwórstwie
żywności- tradycja i przyszłość, Materiały Konferencji AR we Wrocławiu, 6-7 czerwca,
62.
10. Freitas-Schwan R., 1998, "Cocoa fermentation conducted with a defined microbial
cocktail inoculum", Appl. and Env. Microbiol., 64(4): 1477-1483,
11. Freudenreich E. (1896): Bakteriologische Untersuchungen über den Kefir. Zentralblatt
für Bakteriologie II, Abt. 3, 47–54.
12. Gardini F., Suzzi G., Lombardi A., Galgano F., Crudele M.A., Andriglretto C., Schirone
M., Tofalo r. (2001): A survey of yeast in traditional sausages of southern Italy. FEMS
Yeast Research 1, 161-167.
13. Gardner N.J., Savard T., Obermeier P., Caldwell G., Champagne C.P., 2001, "Selection
and characterization of mixed starter cultures for lactic acid fermentation of carrot,
cabbage, beet and onion vegetable mixtures", International Journal of Food
Microbiology, 64: 261-275),
14. Gatto V., Torriani S., Dellagio F. (2003): Microbial Population changes in Sourdough
fermentation Monitored by Analysis of 16S and 26S rRNA Gene Fragments. Second
International Symposium on Sourdough from Fundamentals to Applications, Brussels,
Belgium, Editor Luc DE VUYST, 21.
15. Grazia L., Suzzi G., Romano P., Guidici P. (1989): The yeast of meat products. Yeast 5,
495-499.
16. Hansen A., Hansen B. (1996): Flavour of sour dough wheat bread crumb. Zeitschrift fur
Lebensmittel Untersuchung und Forschung, 202(3), 244–249.
17. Kiszczuk T., 2001, "Owoce, warzywa i zdrowie", Przemysł Fermentacyjny i Owocowo-
Warzywny; 9: 27-28.
18. Kostinek I., Specht I., Edward V.A., Schilinger U., Hertel C., Holzapfel W.H., Franz
C.M.A.P., 2005, "Diversity and technological properties of predominant lactic acid
bacteria from fermented cassava used for the preparation of gari, a traditional african
food", 2005, Systematic and applied microbiology; 28(6): 527-540),
19. Łaniewska-Moroz
Ł., 1998, "Wykorzystanie bakterii fermentacji mlekowej
w fermentowanych sokach warzywnych", Materiały Szkoły Letniej Bakterie Fermentacji
Mlekowej – klasyfikacja, metabolizm, genetyka, wykorzystanie", Ciechocinek, str.23,
20. Lücke F.K. (1986): Microbiological processes in manufacture of dry sausage and raw
ham. Fleischwirtshaft 66, 1505-1509.
21. Moszczyński P., 2002, "Warzywa antyrakowe", Zdrowa żywność i zdrowy styl życia;
4(58): 9-10,
22. Otogalli G., Resmini A., Volonterio G. (1973): Composizione microbiologica, chimica ed
ultrastructura dei granuli di kefir. Annali di Microbiologica 23, 109.
23. Oura E., Soumalainen H., Viskari R. (1982): Breadmaking. In Economic Microbiology,
Volume 7, A. H. Rose (Ed.), Academic Press, New York pp. 87–146.
24. Prillinger H., Moluar O., Elishaseo-Lechner F., Lopandic K. (1999): Phenotypic and
genotypic identyfication of yeast from cheese. Antonie Van leenwenhoek, May; 75(4),
267-283.,
25. Romano P., Ricciardi A., Sadzano G., Suzzi G. (2001): Yeast from Walter Buffalo
Mozzarella, a tradicional cheese of the Medditerranean area. Int. J. Food. Microbiol., Sep
19; 69(1-2), 45-51.
26. Rossi J. (1978): The kefir micro - organisms: the yeast / I microorganismi del kefir: I
leetivi. Scienza e Tecnica Lattiero - Caseana 29, 59–67.
27. Rutkowski A., Gwiazda S., Dąbrowski K., Czapski J., Kamiński E., Pluta A.; 1997,
"Substancje dodatkowe i składniki żywności", Agro & Food Technology, Warszawa,
str.13-19),
28. Skiba-Czajgucka A., Chrzanowska J., Juszczyk P., Wojtanowicz M. (2002): Ocena
uzdolnień hydrolitycznych drożdży izolowanych izolowanych serów Rokpol.
Wykorzystanie drożdży w przetwórstwie żywności- tradycja i przyszłość, Materiały
Konferencji AR we Wrocławiu, 6-7 czerwca,
29. Spicher G., Brummer J. (1993): Baked goods. Praca zbiorowa: Enzymes, Biomass, Food
and Feed, Biotechnology Edited by H. J. Rehm and G. Reed in cooperation with A. Püler
and P. Stadler, Volume 9. Volume Editors G. Reed, T. W. Nagodawithana, VCH, 241–
321.
30. Staszewska E., Janik M. (1999): Zastosowanie kultur starterowych w piekarstwie.
Przegląd Piekarski i Cukierniczy, 2, 6–9.
31. Stępniewicz R., Lenart D., Wojtanowicz M., Foszczyńska B., Dziuba E., Kostecki M.
(2002): Biologiczna ochrona ziarna jęczmienia przed grzybami toksynotwórczymi.
Wykorzystanie drożdży w przetwórstwie żywności- tradycja i przyszłość, Materiały
Konferencji AR we Wrocławiu, 6-7 czerwca, 63.
32. Tavaria F.K., Dahl S., Carballo F.J., Malcata F.X., 2002, "Aminoacid catabolism and
generation of volatiles by lactic acid bacteria", Journal of Diary Science, 85(10): 2462-
2470,
33. Teniola O.D., Holzapfel W.H., Odunfa S.A., 2005, "Comparative assesment of
fermentation techniques useful in processing of ogi", World Journal of Microbiology and
Biotechnology; 21(1): 39-43,
34. Walczak P. (1998): Mikroorganizmy ziaren kefirowych. Materiały szkoły letniej:
"Bakterie fermentacji mlekowej - klasyfikacja, metabolizm, genetyka, wykorzystanie";
Ciechocinek, 18–22 maj 1998.
35. Ward H. M. (1892): The gingerbeer plant and the organisms compositing of fermentation
yeast and bacteria. Philosophical Transactions of The Royal Society of London.
Biological Sciences, 183, 125–197.
36. Welthagen J.J., Viljoen B.C. (1998): Yeast profile in Gouda cheese during processing and
ripenig. Int. J. Food Microbiol., Jun. 16; 41(3), 185-194.
37. Wood B.J.B., Hodge M.M. (1985): Yeast-lactic acid bacteria interaction and their
contribution
to
fermented
foodstuffs,
Microbiology
of
Fermented
Foods,
Ed. Wood B. J. B., 263–293, London: Elsevier Applied Science.