83336

83336



Z krzywej kalibracyjnej odczytać stężenie (yig/inl) monosacharydów uwolnionych podczas enzymatycznej hydrolizy sacharozy, a następnie obliczyć ilość powstałych produktów uwzględniając rozcieńczenie mieszaniny inkubacyjnej (30x):

Ilość produktu (pg) = A5M x f (pg/ml) x 1 ml * 30

Dla każdego stężenia enzymu (rozcieńczeń: „1/8”. „1/4”, 1/2”, „1”) sporządzić krzywą progresji - wykres zależności ilości produktu (mg) od czasu reakcji (min.) i wyznaczyć szybkość początkową reakcji (w mg glukozy-fnrktozy uwolnionych na minutę).

Sporządzić wykres przedstawiający zależność szybkości początkowej v0 (mg/min) od stężenia enzymu.

pH środowiska (Ćwicz. 5)

Większość enzymów wykazuje maksymalną aktywność w środowisku o określonym stężeniu jonów wodorowych. W miar ę oddalatria się od optimum pH aktywność enzymów spada, ponieważ jony wodorowe i wodorotlenowe w większym stężeniu powodują inaktywację poprzez rozrywanie wiązań jonowych i wodorowych pomiędzy grupami funkcyjnymi łańcuchów bocznych, stabilizujących strukturę przestrzenną enzymu.

Zależność aktywności enzymów od pH jest spowodowana stopniem zjonizowania enzymu, substratu i kompleksu enzym-substrat. Grupy czynne centrum aktywnego enzymu wykazują właściwości katalityczne tylko w jednej z jonowych form, podobnie w przypadku substratu tylko jedna z możliwych form jonizujących jest rzeczywiście aktywna w reakcji enzymatycznej. Ładunek substratu i enzymu ma znaczenie przy tworzeniu kompleksu enzym-substrat, ponieważ siły wiążące mogą mieć char akter elektrostatyczny. Optimum pH i kształt krzywych zależności aktywności od pH mogą się dla danego enzymu różnić w zależności od reagującego substr atu.

Optymalne dla danego enzymu pH utrzymuje się podczas oznaczania aktywności za pomocą odpowiednio dobranego bitfom. Istotne znaczenie mają: rodzaj, ilość użytego bufom, jego siła jonowa i pojemność buforowa. Rozpuszczalność białek enzymatycznych, ich konformacja zależą od siły jonowej roztworu, a więc od stężenia i wartościowości występujących w nim jonów. Pojemność buforowa wzrasta wraz ze stężeniem roztworu, a maleje z rozcieńczeniem. Dlatego rozcieńczanie buforu, choć nie zmienia pH, to jednak ujemnie wpływa na pojemność buforową, ma to szczególne znaczenie przy reakcjach enzymatycznych, w których powstają produkty kwasowe.

Wybór odpowiedniego bufom jest bardzo ważny, ponieważ niektóre jego składniki np. fosforany, estry fosforanowe, kwasy karboksylowe - będące naturalnymi metabolitami -mogą wiązać się z enzymem i zmieniać jego aktywność. Bufory boranowe często są nieodpowiednie ze względu na kompleksowanie różnych alkoholi wielowodorotlenowych, rybonukleotydów i węglowodanów.

2



Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
Enzymy 127 2. Z krzywej kalibracyjnej odczytać ilość enzymu w próbie. Podać stężenie trypsyny w prób
skanuj0003 IIIM stężenie równoważników Troloksu w próbce, a wyznacza ją na podstawie krzywej kalibra
Przygotowanie krzywej kalibracyjnej Celem przygotowania krzywej kalibracyjnej dla każdej metody anal
-    która metoda i dlaczego jest dokładniejsza, krzywej kalibracji i czy dodatku wzo
Lclem Ćwiczenia jest oznaczanie jonów chlorkowy ch w wodach naturalnych metodą krzywej kalibracyjnej
Analityczna koło Oblicz, jaki będzie potencjał roztworu po dodaniu do 40 nil soli Fe(II) o stężeniu
Analityczna koło Oblicz, jaki będzie potencjał roztworu po dodaniu do 40 nil soli Fe(II) o stężeniu
nachylenie krzywej kalibracyjnej i można ją obliczyć metodą najmniejszych kwadratów, albo określić
P1050556 Rys. 3.13. Krzywe kalibracyjne elektrody szklanej; I — elektroda o pH, _0 — (J; — elektroda
P1050557 Ryt. 3.14. a) określenie nachylenia S krzywej kalibracyjnej elektrody jonosdęknHH b) charak
DSC01515 (4) r tfflPStta krzywej kalibraS&lnw Mfetowyt się szereg roztworów (próbek) o wzrastają
24077 SCAN0459 Obliczenia Od absorbancji prób badanych odjąć absorbancję prób kontrolnych i z krzywe

więcej podobnych podstron