1629289685

genetyczne mapy chromosomów a także metoda hybrydyzacji in situ. technika primer in situ synthesis (PRINS), in situ nick translacja (ISNT).

Metody dydaktyczne/nauczania: Prowadzący przedmiot opierać się będzie przede wszystkim o środki multimedialne i zajęcia praktyczne w laboratorium.

Kryteria oceny: Sprawdzian wiadomości teoretycznych, kolokwium.

Forma i warunki zaliczenia: Zaliczenie pisemne ćwiczeń w formie testu wyboru i egzamin obejmujący część wykładową.

Treści programowe przedmiotu:

Lp.	Szczegółowy harmonogram wykładów	Godz.
1.	Genom jako źródło informacji dla celów diagnostycznych	1
2.	Sekwencjonowanie genomu ssaków	1
3.	Polimorfizm DNA	1
4.	Detekcja mutacji na poziomie DNA, rodzaje mutacji i skutki mutacji genowych	1
5.	Mutacje warunkujące parametry użytkowości mlecznej, mięsnej, rozpłodowej zwierząt	4
6.	Mutacje wywołujące choroby genetyczne u bydła, owiec, świń, koni i ptaków	2
7.	Zastosowanie analizy loci mikrosatelitamych w określaniu pokrewieństwa zwierząt	^1
8.	Zastosowanie molekularnych metod w badaniach cytogenetycznych	1
9.	Fizyczne i genetyczne mapy chromosomów, metoda hybrydyzacji in situ	1
10.	Sposoby otrzymywania sond molekularnych	1
11.	Technika primer in situ synthesis (PRINS), in situ nick translacja (ISNT)	1
	Razem	15

Lp.	Szczegółowy harmonogram ćwiczeń	Godz.
1.	Zasady pracy w laboratorium diagnostycznym dna, przepisy bhp, pobieranie materiału biologicznego, izolacja dna genomowego z krwi, mięsa, zasady przechowywania i przesyłania wyizolowanego DNA, ocena wyizolowanego DANN; pomiar spektrofotometryczny DNA genomowego. ocena ilości i jakości DANN; elektroforeza DNA w 1% żelu agarozowym. oznaczenie ilości DNA w żelu agarozowym (z użyciem standardu), analiza struktury wybranych genów istotnych z punktu widzenia hodowcy /pod względem wykrywania mutacji, omówienie zasady łańcuchowej reakcji polimerazowej - PCR. stosowane odczynniki i czynniki warunkujące efektywność reakcji PCR	5
2.	Przygotowanie reakcji PCR w gradiencie temperatury -na przykładzie genu hormonu wzrostu GH u była. ocena produktu PCR na żelu agarozowym. omówienie zasady metody RFLP	5
3.	Oczyszczenie produktów PCR przy użyciu zestawu firmy A&A Botechnology. praktyczne przeprowadzenie reakcji RFLP - cięcie enzymem restrykcyjnym fragmentu genu. elektroforeza fragmentów restrykcyjnych DNA w żelu agarozowym. praktyczne określenia genotypów badanego genu -polimorfizm restrykcyjny, omówienie znaczenia ich obecności w populacji na przykładzie wybranego genu	5
4.	Markery klasy II -polimorfizm mikrosatelitarny i jego zastosowanie w hodowli zwierząt	5
5.	Metody wykrywania mutacji w populacji, polimorfizm konformacyjny	5