Planches pour le diagnostic microscopiąue du paludisme
Organisation mondiale de la Sante
Avec des lames mai nettoyees ou sales, on ne prepare pas des frottis de qualitć satisfaisante et les examens au microscope de-viennent imprecis, ce qui met le patient en danger. Pour des exa-mens fiables, veiller a bien choisir les lames et a les nettoyer, les envelopper et les conserver correctement.
Utiliser des lames de qualitć « superieure » aux bords en verre rode ; certains prćferent des lames avec une des extremites en verre depoli pour le marquage. Dans les regions tropicales, les lames de mauvaise qualite sopacifient rapidement ; elles sont « embuees » et inutiles. II faut quand nieme laver les lames « prenettoyees » et les secher avant de les utiliser.
■ Laisser tremper les lames neuves toute une nuit dans de leau additionnće de detergent en prenant soin de bien les separer les unes des autres.
■ Avec un tissu en coton place entre le pouce et l’index, nettoyer chaque lanie des deux cótes.
■ Rincer soigneusement chaque lanie a leau courante pour eli-miner le detergent.
■ Retirer de chaque lanie leau qui reste et les conserver dans un flacon d alcool ferme avec un bouchon a vis.
■ Au moment de Lutilisation, essuyer chaque lamę avec un tissu en coton propre et non pelucheux. II faut toujours manipuler les lames en les tenant seulement par les bords.
■ Pour etre reutilisees, les lames qui ont deja servi doivent etre mises a tremper toute une nuit dans de l eau additionnee de detergent ; conime ci-dessus, nettoyer chaque lanie separe-ment, pour enlever toute tracę du precedent frottis et d’ hu ile a immersion.
■ Une fois qu’elles sont propres, rincer soigneusement les lames pour enlever le detergent.
■ Essuyer chaque lamę avec un tissu en coton non pelucheux ; mettre de cóte les lames ebrechees ou rayees et les reserver a d autres taches de laboratoire.
■ Avec un papier propre decoupe en feuilles de 11 cm x 15 cm de cóte, eiwelopper les lames seches par paquets de dix ; re-plier les extremites du papier vers le bas et fermer le tout avec du ruban adhćsif transparent.
■ Remettre dix paquets de lames dans chaque boite dorigine et les conserver dans une armoire a air chaud jusqu’a leur utili-sation.
Certaines erreurs sont couramment commises lors de la preparation des frottis sanguins et elles peuvent avoir des consequen-ces negatives pour le marquage, la coloration et lexamen.
Lorsqu ils sont mai positionnes sur la lamę, les frottis peuvent etre enleves par frottement sur les bords des cuves de coloration et des rateliers ; par ailleurs, il est alors difticile daligner Lobjec-tifdu microscope pour lexamen.
Apres coloration, la goutte epaisse sera trop coloree et il y aura de trop nombreux leucocytes, emp£chant de voir les parasites ; les nombreuses couches d hematies fixees rendront impossible Lexamen du frottis.
Lexamen standard du frottis ne sera pas possible ; le frottis sera trop petit pour servir au marquage de la lanie.
Des lambeaux de la goutte epaisse se dćtacheront pendant la
coloration ; le frottis sera parcellaire et inegal, ce qui rendra rexamen diłficile et peu babie.
Le frottis presentera de nombreuses trainees, tandis que la goutte epaisse sera d epaisseur inegale.
I
Lorsqu’on tarde a faire la coloration dans une atmosphere chau-de et humide, il arrive que la goutte epaisse se fixe d elle-meme, ce qui nuira a sa coloration et la rendra opaque.
Dautres incidents arrivent couramment dans la preparation des frottis sanguins:
■ le frottis est mange par des mouches, des blattes ou des four-mis, ce qui Lendom mage;
■ les frottis sont prepares sur des lames tres rayees, daspect ,,
« givrć » ou a la surface irisee; |
■ La goutte epaisse a seche irrćgulierement; I
■ auto-fixation de la goutte epaisse a cause du temps ecoule, de i I exposition a la cha leur, ce qui rend sa coloration ditficile et % pas satisfaisante;
■ emballage des lames avant que les frottis ne soient tout a fait i
secs, de sorte que les lames collenl les unes aux autres. |