background image

Biochemia 

        ŻYWIENIE CZŁOWIEKA 

   Ćwiczenie 6 

 

 

Uniwersytet Rolniczy w Krakowie  

 

      Katedra Biotechnologii Żywności 

 

Ćwiczenie 6 

 

Temat: OZNACZANIE ZAWARTOŚCI TŁUSZCZÓW I ICH POCHODNYCH  

W MATERIALE BIOLOGICZNYM. 

 

Część teoretyczna 

 

Tłuszczowce  stanowią  złożoną  grupę  związków  nierozpuszczalnych  w  wodzie,  a  rozpusz-

czalnych w rozpuszczalnikach organicznych. Tłuszczowce są dzielone na tłuszcze proste i tłuszcze 
złożone. Związki te występują we wszystkich organizmach żywych jako materiał zapasowy i ener-
getyczny oraz pełnią rolę strukturalną, jako składnik błon komórkowych. 

Tłuszcze proste dzielą się na właściwe i woski. 
Tłuszcze właściwe są to estry trójwodorotlenowego alkoholu - glicerolu i wyższych kwasów 

tłuszczowych. Ogólny wzór przedstawia się następująco: 

 

H  - C - O - C -  R

H  - C - O - C -  R

O

O

2

1

2

3

2

O

H  - C - O - C -  R

 

R

1

 , R

2

 , R

3

 - rodniki alkilowe 

 

Woski  pod  względem  chemicznym  są  mieszaniną  estrów  jednowodorotlenowych  alkoholi  o 

16 - 31 atomach węgla i jednokarboksylowych kwasów tłuszczowych nasyconych i nienasyconych 
oraz wolnych alkoholi jednowodorotlenowych, wolnych kwasów tłuszczowych i węglowodorów ty-
pu parafin. 

Tłuszcze złożone pod względem chemicznym stanowią bardzo różnorodną grupę związków, 

których wspólną cechą jest zawartość kwasów tłuszczowych w cząsteczce. 

Systematyka tłuszczów złożonych w uproszczeniu przedstawia się następująco: 
 

TŁUSZCZE ZŁOŻONE 

 
 

GLICEROLIPIDY 

SFINGOLIPIDY 

 
 

FOSFOGLICEROLIPIDY     GLIKOGLICEROLIPIDY     FOSFOSFINGOLIPIDY     GLIKOSFINGOLIPIDY 

 
 
FOSFSTYDYLOSERYNY     

 

 

 

SFINGOMIELINY     

   GANGLIOZYDY 

FOSFATYDYLOCHOLINY 

 

 

 

 

 

 

   CEREBROZYDY 

FOSFATYDYLOINOZYTYDY 
FOSFATYDYLOETANOLAMINY 

 

 
Tłuszcze w żywności pełnią trzy podstawowe funkcje: są źródłem niezbędnych nienasyconych 

kwasów tłuszczowych, odgrywają rolę nośnika witamin rozpuszczalnych w tłuszczach (A, D, E i K) 
oraz  są  głównym  i  najbardziej  skoncentrowanym  źródłem  energii.  Biorą  także  udział  w  syntezie 
niektórych hormonów tkankowych – np. prostaglandyn. 

Tłuszcze jadalne są pochodzenia roślinnego lub zwierzęcego. Tłuszcze roślinne otrzymuje się 

z nasion lub z miąższu owoców, natomiast tłuszcze zwierzęce pochodzą z tkanek lub mleka zwie-
rząt. W celu wydobycia lipidów nasiona roślin oleistych poddaje się tłoczeniu lub ekstrakcji, a czę-

fosfa-
tydylo-
seryny 

background image

Biochemia 

        ŻYWIENIE CZŁOWIEKA 

   Ćwiczenie 6 

 

 

Uniwersytet Rolniczy w Krakowie  

 

      Katedra Biotechnologii Żywności 

 

sto łączy się obie metody. Z miąższu owoców oleje wydziela się przez tłoczenie lub odwirowanie. 
Wykorzystuje się również metodę ekstrakcji. Do ekstrakcji lipidów najczęściej stosuje się benzynę 
ekstrakcyjną.  Roztwór  zwany  miscelą  poddaje  się  destylacji  w  celu  oddzielenia  rozpuszczalnika. 
Tłuszcze zwierzęce otrzymuje się przez wytapianie z rozdrobnionej tkanki. Oleje rybne najczęściej 
izoluje  się  przez rozgotowanie tkanki, a następnie oddzielenie od frakcji wodno-białkowej  za po-
mocą wirówek.  

  W zależności od sposobu wydobywania, surowe tłuszcze zwane są tłoczonymi lub ekstrak-

cyjnymi. Tłuszcze ekstrakcyjne z reguły mają więcej substancji towarzyszących. Tłuszcze uzyskane 
przez tłoczenie lub ekstrakcję oprócz triacylogliceroli zawierają wiele innych substancji, które ogól-
nie, choć nie zawsze słusznie, są zwane zanieczyszczeniami. Większość metod analizy zawartości 
tłuszczów  w  materiale  biologicznym  polega  na  oznaczeniu  wagowym  wyekstrahowanych  tłusz-
czów,  bądź  też  na  oznaczeniu  jednego  z  charakterystycznych  składników  występujących  w  czą-
steczce tłuszczu.  

  Istotny problem w analizie lipidów wynika z tego, że na ogół należą one do związków wy-

jątkowo labilnych, a zwłaszcza mało odpornych na działanie czynników utleniających, w tym tlenu 
atmosferycznego.  Przemiany  nienasyconych  lipidów  spowodowane  utlenianiem  tlenem  atmosfe-
rycznym  są  główną  przyczyną  niepożądanych  zmian  wielu  artykułów  spożywczych.  W  praktyce 
przemysłowej  do  stabilizacji  tłuszczów  i  innych  artykułów  żywnościowych  zawierających  lipidy 
stosuje się witaminę E (tokoferole, tokotrienole), uważaną za uniwersalny przeciwutleniacz. Twier-
dzi  się  nawet,  że zwiększeniu  ilości kwasów polienowych w diecie powinien towarzyszyć wzrost 
udziału  w  niej  witaminy  E.  Wszystkie  witaminy  z  grupy  E  są  pochodnymi  albo  tokolu,  czyli  2-
metylo-2-(4’,8’,12’-trimetylotridecylo)-chroman-6-olu, 

albo 

tokotrienolu,  czyli  2-metylo-2-

(4’,8’,12’-trimetylotrideka-3’,7’,11’-trienylo)-chroman-6-olu.  W  temperaturze  pokojowej  są  sub-
stancjami oleistymi, nierozpuszczalnymi w wodzie, łatwo rozpuszczalnymi w tłuszczach i rozpusz-
czalnikach tłuszczowych. W środowisku beztlenowym są odporne na działanie podwyższonej tem-
peratury, nawet do 200

o

C oraz kwasów i zasad. Witaminy te są bardzo wrażliwe na działanie pro-

mieni UV oraz tlenu. Koncentraty naturalnej witaminy E otrzymuje się z olejów roślinnych, zwłasz-
cza  z  oleju  z  kiełków  pszenicy,  oleju  sojowego  i  bawełnianego.  Duże  ilości  witaminy  E  zawiera 
również sałata, jaja i masło.  

Tłuszcze są dobrym rozpuszczalnikiem dla witamin z grupy A, D, E i K. Witamina A, wywo-

dząca się z karotenoidów, zawarta jest w tranie. W maśle i tranie występuje duża ilość witamin z 
grupy D. W olejach roślinnych znajdują się tokoferole - witaminy z grupy E. W tłuszczach roślin-
nych, w mniejszym stopniu także w tłuszczach zwierzęcych występują karotenoidy nadające im żół-
toczerwone zabarwienie. 

Kwasy występujące w tłuszczach należą prawie wyłącznie do jednokarboksylowych kwasów 

alifatycznych  nasyconych  lub  nienasyconych,  zbudowanych  z  parzystej  liczby  atomów  węgla  i  z 
prostych, nierozgałęzionych łańcuchów. Wolne kwasy tłuszczowe wraz ze wzrostem ilości atomów 
węgla  w  cząsteczce  wykazują  spadek  rozpuszczalności,  spadek  stopnia  dysocjacji  i  lotności  oraz 
wzrost  temperatury  topnienia.  Kwasy  nienasycone  zawierają  jedno  lub  kilka  podwójnych  wiązań. 
Charakterystyczne jest, że wszystkie nienasycone kwasy tłuszczowe występują w konfiguracji cis. 
Wiązania  podwójne,  jeżeli  występują  w  większej  ilości,  ułożone  są  w  układ  izolowany.  Kwasy 
tłuszczowe otrzymuje się z tłuszczów przez ich hydrolizę, którą można przeprowadzić za pomocą 
kwasów mineralnych, zasad, pary wodnej, enzymów (lipaz).

  

 
 
 
 
 
 
 
 

background image

Biochemia 

        ŻYWIENIE CZŁOWIEKA 

   Ćwiczenie 6 

 

 

Uniwersytet Rolniczy w Krakowie  

 

      Katedra Biotechnologii Żywności 

 

Część praktyczna 

 

A)  IZOLACJA LECYTYNY I CHOLESTEROLU Z ŻÓŁTKA JAJA KURZEGO 

 

  Żółtko  jaj  ptasich  zawiera  dużo  tłuszczów  złożonych,  głównie  lecytyn  i  kefalin,  jest  także 

dość  bogatym  źródłem  cholesterolu  dlatego  też  można  je  wykorzystać  jako  dogodny  materiał  do 
otrzymania stosunkowo czystej frakcji zarówno lecytyn jak i cholesterolu. W preparatyce fosfolipi-
dów wykorzystuje się ich słabą rozpuszczalność w acetonie, którym wytrąca się je z roztworu ete-
rowego lub alkoholowego. Inne lipidy, jak również cholesterol, pozostają w tych warunkach w roz-
tworze. W celu wydzielenia z mieszaniny fosfolipidów lecytyn przeprowadza się je w kompleks z 
CdCl

2

. Kompleks kefalin rozpuszcza się w etanolu, zaś kompleks lecytyn wypada z roztworu. W ce-

lu wydzielenia z acetonowego roztworu cholesterolu związek ten po uprzednim zmydleniu towarzy-
szących mu tłuszczów prostych ekstrahuje się eterem i po odparowaniu rozpuszczalnika, krystalizu-
je z metanolu.  

 

1. IZOLACJA LECYTYN 

Żółtko oddzielić od białka i zalać 75 ml mieszaniny chloroform-etanol (2:1). Mieszać na mie-

szadle magnetycznym przez 10 min. Otrzymaną mieszaninę przesączyć do suchej kolby przez duży 
karbowany sączek z bibuły miękkiej zwilżony etanolem. Przesącz przenieść do parowniczki i czę-
ściowo odparować ogrzewając na wrzącej łaźni wodnej (w przypadku odparowania do sucha pozo-
stałość  rozpuścić  w  10  ml  chloroformu).  Chloroformowy  roztwór  wkroplić,  mieszając,  do  30  ml 
acetonu. Wytrąca się osad fosfolipidów, który po przesączeniu i przemyciu 5 ml acetonu podzielić 
na  5  części  i  poddać  opisanym  poniżej  testom  jakościowym,  charakterystycznym  dla  poszczegól-
nych składników lecytyny. Otrzymany przesącz zachować do analizy cholesterolu.   

 

2. REAKCJA NA OBECNOŚĆ GLICEROLU - PRÓBA AKROLEINOWA 

Glicerol, podstawowy składnik tłuszczów właściwych i fosfoglicerydów w wysokiej tempera-

turze w obecności bezwodnego KHSO

4

 lub CuSO

4

 traci dwie cząsteczki wody i przechodzi w nie-

nasycony aldehyd - akroleinę o ostrym, duszącym zapachu.

 

 

 

                 

 

   

glicerol

                                        

akroleina

 

 

Wykonanie:  

Odrobinę osadu lecytyny zadać w probówce 1 ml 96% etanolu i dokładnie rozpuścić. Dodać 

około 0,2 g bezwodnego KHSO

4

 lub CuSO

4

 i ogrzewać do momentu wydzielenia się par akroleiny 

o charakterystycznym zapachu. 

 

3.  REAKCJA  NA  OBECNOŚĆ  WYŻSZYCH  KWASÓW  TŁUSZCZOWYCH  (TWORZE-
NIE MYDEŁ)

 

Tłuszcze w obecności zasad hydrolizują z uwolnieniem glicerolu i soli kwasów tłuszczowych. 

Sole sodowe i potasowe charakteryzują się dobrą rozpuszczalnością w wodzie. 

 

Wykonanie:  

Odrobinę osadu lecytyn zadać w próbce 3 ml 5% etanolowego roztworu NaOH i ogrzewać we 

wrzącej łaźni wodnej przez kilka minut. Następnie dodać około 10 ml H

2

O, rozpuścić mydło, inten-

sywnie wstrząsając probówką. Obserwować pienienie się roztworu. 

 

background image

Biochemia 

        ŻYWIENIE CZŁOWIEKA 

   Ćwiczenie 6 

 

 

Uniwersytet Rolniczy w Krakowie  

 

      Katedra Biotechnologii Żywności 

 

4. REAKCJA NA OBECNOŚĆ FOSFORANU  

Niewielką ilość osadu lecytyny rozpuścić w probówce w 1 ml 96% etanolu, dodać 2 ml 20% 

NaOH i ogrzewać we wrzącej łaźni wodnej około 10 minut. Następnie zobojętnić wobec fenolofta-
leiny 5 M HCl i przesączyć. Do 2 ml przesączu dodać 0,5 ml odczynnika molibdenowego i 0,5 ml 
reduktora  metolowego.  Probówkę  ogrzać  ponownie.  W  obecności  jonów  ortofosforanowych  po-
wstaje kompleks fosforomolibdenianu amonowego o barwie żółtej, który po dodaniu reduktora re-
dukuje się do błękitu molibdenowego. 

 

5. REAKCJA NA OBECNOŚĆ CHOLINY 

Odrobinę lecytyny ogrzewać z 5 ml 20% NaOH w probówce umieszczonej we wrzącej łaźni 

wodnej.  Wydziela  się  powstała  w  wyniku  rozkładu  choliny  trimetyloamina  o  charakterystycznym 
zapachu śledzi. 

 

6. WYKRYWANIE OBECNOŚCI CHOLESTEROLU 

W  probówce  umieścić  1,5  ml  roztworu  cholesterolu.  Dodać  około  1,5  ml  stężonego  H

2

SO

4

Obserwować pojawienie się czerwono-purpurowego lub niebieskiego zabarwienia. 

 

B)  WYKRYWANIE WITAMIN W TŁUSZCZACH 

 

 

1. WYKRYWANIE WITAMINY A 

Karotenowce  i  witamina  A  wchodzą  w  reakcję  barwną  z  nasyconym  chloroformowym  roz-

tworem chlorku antymonowego (SbCl

3

), dając zabarwienie niebieskie, które w obecności cholekal-

cyferolu  (witaminy  D)  szybko  przechodzi  w  fioletowo  czerwone.  Podczas  wykonywania  analiz 
używać wyłącznie suchego szkła ponieważ woda powoduje hydrolizę SbCl

3

 

Wykonanie:  

Do  pięciu  suchych  probówek odpipetować po 0,5 ml nasyconego roztworu  SbCl

w  chloro-

formie. Następnie do pierwszej dodać 1 kroplę chloroformowego roztworu witamin A + D, do dru-
giej 1 kroplę chloroformowego roztworu witaminy A, do trzeciej 1 kropli chloroformowego roztwo-
ru witaminy D, do czwartej 5 kropli rozpuszczonego masła lub tranu a do piątej 1 kroplę chlorofor-
mu (ślepa). Porównać barwy próby ślepej z próbami zawierającymi witaminy oraz tłuszcz, zinter-
pretować uzyskane wyniki. 

 

2.  WYKRYWANIE  STEROIDÓW  -  WITAMINY  D  I  CHOLESTEROLU  (PRÓBA  LIE-
BERMANNA I BURCHARDA) 

Tłuszczom naturalnym często towarzyszą związki steroidowe, zwłaszcza cholesterol, tworzą-

cy estrowe połączenia z kwasami tłuszczowymi. 

W warunkach bezwodnych stężony roztwór H

2

SO

4

 i bezwodnik kwasu octowego odwadniają 

cząsteczkę cholesterolu, co prowadzi do powstania dodatkowego podwójnego wiązania, sprzężone-
go  z  wiązaniem  podwójnym  obecnym  w  cząsteczce  cholesterolu.  Związki  zawierające  podwójne 
wiązania sprzężone są barwne i wybiórczo pochłaniają promienie świetlne o określonej długości fa-
li. W próbie Liebermanna i Burcharda powstaje zielono zabarwiony kwas jednosulfonowy dichole-
stadienu. 

 

Wykonanie:  

W dwóch suchych probówkach umieścić po 2 krople różnych tłuszczów. Do każdej dodać po 

1 ml chloroformu i wymieszać. Do każdej probówki dodać po 0,5 ml bezwodnika kwasu octowego* 
i ostrożnie po ściankach probówek po 2 krople stężonego roztworu H

2

SO

4

. Tworzą się produkty re-

akcji o barwie różowej przechodzącej przez fioletową i niebieską w zieloną.  

*  bezwodniki  kwasowe  –  tlenki,  które  łącząc  się  z  wodą  tworzą kwasy lub powstające z kwasów przez odszczepienie 

wody  pod  wpływem  ogrzewania  lub  reakcji  ze  środkami  odwadniającymi  (np.  bezwodnik  kwasu  octowego  2 
CH

3

COOH = (CH

3

COO)

2

O + H

2

O). Przemiana taka jest zazwyczaj odwracalna. 

background image

Biochemia 

        ŻYWIENIE CZŁOWIEKA 

   Ćwiczenie 6 

 

 

Uniwersytet Rolniczy w Krakowie  

 

      Katedra Biotechnologii Żywności 

 

3.  OZNACZANIE  ZAWARTOŚCI  WITAMIN  E  W  TŁUSZCZACH  ROŚLINNYCH  I 
ZWIERZĘCYCH

 

Witamina  E  wchodzi  w  reakcję  z  barwnym  wolnym  rodnikiem  1,1-difenyl-2-pikryl-

hydrazylem (DPPH), który w reakcji z tokoferolem ulega przekształceniu w bezbarwny produkt. 

 

Wykonanie:  

Odważyć  w  probówkach  50 mg tranu, 50 mg oleju roślinnego, 150 mg margaryny, 500 mg 

masła i 500 mg smalcu. Dodać po 20 ml roztworu DPPH. Do probówki z masłem i smalcem dodać 
szczyptę  bezwodnego  siarczanu  magnezu.  Wszystkie  probówki  zamknąć  korkiem  i  wytrząsać  do 
uzyskania zawiesiny. Odstawić na 30 min w ciemne miejsce. Zawartość probówek wymieszać i są-
czyć do klarowności przez podwójny twardy sączek. Zmierzyć absorbancję przy 529 nm względem 
etanolu.  

 

Przygotowanie krzywej kalibracyjnej:  

Do  6-ciu  probówek  rozlać  wzorzec  i  chloroform  według  tabelki.  Wprowadzić  po  10  ml

 

DPPH. Zawartość probówek dokładnie wymieszać i odstawić w ciemne miejsce na 30 minut. Prze-
czytać absorbancję przy 529 nm względem etanolu i sporządzić krzywą wzorcową. 

 

 

wzorzec tokoferolu 

(µl) 

chloroform  

(µl) 

jednostki  

tokoferolu 

200 

0,060 

150 

50 

0,045 

100 

100 

0,030 

50 

150 

0,015 

25 

175 

0,0075 

200 

0,000 

 

Obliczenie wyników:  

Z krzywej wzorcowej odczytać stężenie tokoferolu w badanych próbkach. Uwzględniając ma-

sę naważonych próbek i ilość dodawanego do nich DPPH wyliczyć ilość witaminy w przeliczeniu 
na 1 g badanego surowca. 
 
 
 
 
 

Ostatnie zmiany 13.02.2013