background image

Ćwiczenie 12   

(MOiŚ)

 

T: Bakterie amylolityczne i lipolityczne 

1. 

Bakterie amylolityczne 
Skrobia jest węglowodanem, polisacharydem roślinnym, składającym się z monomerów D-glukozy. 
Pełni w roślinach rolę magazynu energii. Skrobia ma budowę ziarnistą.  
Wzór sumaryczny: (C

6

H

10

O

5

)n n>300. 

 Skrobia składa się z: 

 

nierozgałęzionej amylozy stanowiącej ok. 20% naturalnej skrobi; amyloza jest wielocukrem złożonym z 
wielu reszt D-glukozy połączonych wiązaniem α -1,4 glikozydowym 

 

rozgałęzionej amylopektyny, która stanowi 80 % naturalnej skrobi; rozgałęzienia powstają dzięki 
wiązaniom α-1,6-glikozydowym. 

Skrobia jest rozkładana przez bakterie za pomocą enzymów amylaz. α-amylaza hydrolizuje skrobię do 
krótkich odcinków oligosacharydowych (dekstryn), które stopniowo ulegają dalszemu rozkładowi do 
trójcukrów, dwucukrów i glukozy. β-amylaza powoduje rozpad cząsteczki skrobi do dwucukru maltozy. 
Maltoza jest dalej hydrolizowana do cukrów prostych. 

Po dodaniu do skrobi płynu Lugola (jodu) amyloza absorbuje go i barwi się na niebiesko. Barwa niebieska 
świadczy więc o nierozłożonej skrobi. Hydroliza skrobi do dekstryn daje zabarwienie brązowe, a dalszy 
rozkład do maltozy i glukozy nie daje barwnej reakcji.   

 

Izolacja i określenie liczby amylolitycznych bakterii z próbki wody. 

a)  wykonać rozcieńczenia badanej próby w postępie dziesiętnym (rozcieńczenia w 0,85% NaCl); 

należy pamiętać o dokładnym wymieszaniu prób przed każdym pipetowaniem 

b)  nanieść po 0,1 ml próby z danego rozcieńczenia na 2 płytki z podłożem agarowym z dodatkiem 

0,2 % skrobi i dokładnie rozprowadzić po powierzchni pożywki hokejówką. 

c)  próby inkubować w temperaturze 28°C przez 48 h 
d)  zalać płytki płynem Lugola i policzyć kolonie bakteryjne, wokół których widoczne są strefy 

przejaśnionego podłoża 

e)  obliczyć liczbę bakterii amylolitycznych w 1ml próby, mnożąc średnią liczbę kolonii dodatnich z 

danego rozcieńczenia (stosujemy szereg optymalny 10 – 300 kolonii) x 10 x odwrotność 
rozcieńczenia 

 

2.  Bakterie lipolityczne 

Lipidy dzielimy na następujące zasadnicze grupy związków: tłuszcze właściwe, fosfolipidy, glikolipidy, 

woski, izoprenoidy, sterydy i in.  

Wstępną fazą rozkładu tłuszczów właściwych jest hydroliza dająca w efekcie glicerol i wolny kwas tłuszczowy. 
Glicerol podlega następnie rozkładowi podobnie jak inne alkohole. Kwas tłuszczowy jest utleniany w procesie 
β-oksydacji.  

background image

Wiele bakterii charakteryzuje się zdolnością do lipolizy. Do najbardziej efektywnych należą Pseudomonas 
fluorescens, Bacillus punktatus, Pseudomonas aeruginosa, Serratia marcescens

 

Określenie liczby bakterii lipolitycznych w 1 cm

3

 próbki  

a)  wykonujemy rozcieńczenia badanej próby w postępie dziesiętnym (rozcieńczenia w 0,85% NaCl); 

należy pamiętać o dokładnym wymieszaniu prób przed każdym pipetowaniem 

b)  nanieść po 0,1 ml próby z danego rozcieńczenia na 2 płytki z podłożem agarowym z dodatkiem 

Tween 80® (monooleinian polioksyetylenosorbitolu) oraz CaCl

2

 i dokładnie rozprowadzić po 

powierzchni pożywki hokejówką 

c)  próby inkubować w temperaturze pokojowej przez 48 h 
d)  policzyć kolonie bakteryjne, wokół których widoczne są strąty 
e)  obliczyć liczbę bakterii lipolitycznych w 1ml próby, mnożąc średnią liczbę kolonii dodatnich z 

danego rozcieńczenia (stosujemy szereg optymalny 10 – 300 kolonii) x 10 x odwrotność 
rozcieńczenia 

 
3.  Uproszczony schemat metabolizmu głównych substancji pokarmowych.