nie oddzielony od ekstraktu. W zależności od temperatury i czasu,
w ramach maceracji, można wyróżnić digestię (wytrawienie w temp.
30-40°C), infuzję (naparzanie w gorącej wodzie) i dekokcję (wyłu-
gowanie w temp. powyżej 60°C). W perkolacji natomiast wykorzy-
stuje się siły ciężkości wymuszające ciągły przepływ rozpuszczalni-
ka przez materiał ekstrahowany. Metoda immersyjna (dyfuzyjna)
z kolei odznacza się tym, że rozpuszczalnik, w którym zanurzony
jest surowiec, znajduje się w ciągłym przepływie. Ekstrakcja może
być także prowadzona w sposób wielostopniowy, gdzie materiał
przemywany jest kilkakrotnie ekstraktem, a na końcu – przeciw-
prądowo czystym rozpuszczalnikiem (1).
Inną klasyczną metodą jest ekstrakcja przy użyciu aparatu Soxh-
leta, która efektywnością przewyższa wcześniej wymienione techni-
ki. Wyjątek stanowią próby uzyskania związków termolabilnych ze
względu na ogrzewanie materiału. Konwencjonalny system Soxhleta
(rys. 1) polega na tym, że przez materiał ekstrahowany, umieszczony
w gilzie, przepływają w sposób ciągły świeże porcje przedestylowa-
nego rozpuszczalnika. System ten można jednak doskonalić po-
przez zastosowanie dodatkowych urządzeń, jak: pompa próżniowa,
membrany separacyjne, źródło dźwięku czy mikrofal (5).
Metody klasyczne wiążą się ze stosunkowo dużym nakładem
czasu. Ekstrakcja tymi technikami związków wrażliwych na dzia-
łanie światła, tlenu czy wysokiej temperatury może przyczyniać
się do częściowego ich rozkładu i utraty cennych właściwości ak-
tywnych (6).
Inne metody ekstrakcji
W celu skrócenia czasu ekstrakcji, ograniczenia zużycia rozpusz-
czalników, kosztów i ze względu na większą dbałością o środowisko
opracowuje się nowe techniki separacji związków aktywnych. Do
metod tych zaliczają się m.in.: wspomagana ekstrakcja ultradźwię-
dr inż. Tomasz Tarko, dr Aleksandra Duda-Chodak, mgr inż. Małgorzata Ignacok
Katedra Technologii Fermentacji i Mikrobiologii Technicznej, Uniwersytet Rolniczy im. H. Kołłątaja w Krakowie
Metody odzysku
związków aktywnych
z surowców roślinnych
Streszczenie
Surowiec roślinny zawiera wiele składników aktywnych wykorzy-
stywanych w różnych gałęziach gospodarki. Ważnym zadaniem
jest ich oddzielenie bez utraty cennych właściwości. W artykule
omówiono różne metody ekstrakcji oraz rozpuszczalniki, które są
stosowane do ich odzysku w zależności od oddzielanego związku
lub grupy związków.
Słowa kluczowe
metody odzysku, ekstrakcja, składniki aktywne, surowiec ro-
ślinny
Summary
Plant raw material contains a large amount of active components
used in different types of production. It is very important to sepa-
rate these ingredients without losing their valuable features. In
this dissertation, different methods of extraction are discussed,
in tandem with a variety of solvents applied for the recovery of
those compounds.
Key words
methods of recovery, extraction, active components, plant raw
material
Surowiec roślinny (owoce, liście, korzenie, kłącza, kwiaty) zawiera
wiele cennych składników aktywnych wykorzystywanych w róż-
nych dziedzinach życia, m.in. w medycynie, farmacji, kosmetyce,
a także w technologii żywności. Jednak w wielu przypadkach za-
chodzi konieczność oddzielenia tych cennych związków z tkanki
roślinnej. Najpowszechniejszą formą jest ekstrakcja. Czynność
ta polega na wyodrębnieniu związku lub grupy związków fazy
ciekłej lub stałej przy pomocy rozpuszczalnika. W zależności od
stanu skupienia substancji uczestniczących w procesie rozróżnia
się ekstrakcję w układzie ciecz – ciecz lub ciało stałe – ciecz (1).
Najczęściej w tym procesie używa się wody, rozpuszczalników or-
ganicznych, rozpuszczalników neutralnych lub gazów obojętnych,
działając na rozdrobniony surowiec stały. W czasie takiej ekstrakcji
w układzie ciało stałe – ciecz najpierw rozpuszczalnik wnika w po-
ry nośnika substancji ekstrahowanej, rozpuszczając go i transpor-
tując do powierzchni rozdziału faz, a następnie do głównej masy
rozpuszczalnika (2).
Czynnikami wpływającymi na efektywność procesu ekstrakcji
są: temperatura, ciśnienie oraz stosunek rozpuszczalnika do fazy
stałej. Im wyższa temperatura i wyższy stosunek fazy stałej do roz-
puszczalnika, tym wydajność ekstrakcji jest większa. Wydajność
ekstrakcji zależy też od stopnia rozdrobnienia surowca i wielkości
cząsteczek substancji ekstrahowanych. Istotne są także właściwości
i sposób przepływu rozpuszczalnika (3) oraz czas i liczba cykli eks-
trakcji. Wraz ze wzrostem czasu trwania procesu i liczby jego cykli
uzyskuje się większą wydajność, ale tylko do pewnego momentu
efekty te są zauważalne i działanie takie jest opłacalne (4).
Ekstrakcje klasyczne
Najprostszą techniką ekstrakcyjną jest maceracja, w której materiał
zalany jest rozpuszczalnikiem w temperaturze pokojowej, a następ-
laboratorium przemysłowe
Laboratorium |
9
/2008
28
kowa, ekstrakcja mikrofalowa, ekstrakcja w stanie nadkrytycznym
i przyspieszona ekstrakcja rozpuszczalnikiem, które pozwalają na
pracę w podwyższonej temperaturze i przy zwiększonym ciśnieniu,
jednocześnie skracając czas trwania procesu (5).
Ekstrakcja w warunkach nadkrytycznych
(supercritical fluid extraction, SFE)
Ze względu na stosunkowo wysokie koszty wykorzystywana jest
ona do pozyskiwania wyjątkowo wartościowych związków. Stoso-
wana jest do oddzielenia m.in.: olejków eterycznych, aromatów,
witamin, β-karotenu i malwidyny, jednak najbardziej popularnymi
produktami uzyskiwanymi tym sposobem są chmielowe związki
goryczkowe (wykorzystywane w browarnictwie) oraz kofeina z ka-
wy bądź herbaty (7).
W systemie SFE (rys. 2) surowiec ulokowany jest w ekstrakto-
rze, który znajduje się pod ciśnieniem wytwarzanym przez pom-
pę. Rozpuszczalnik i wyekstrahowane związki przekierowywane
są do separatorów, w których na skutek obniżania ciśnienia lub
podwyższania temperatury są rozdzielane (5). Ekstrakcja nadkry-
tyczna jest metodą charakteryzującą się szybkim transferem masy
ze względu na wysoką dyfuzyjność i niską lepkość rozpuszczalni-
ka nadkrytycznego oraz dużą rozdzielczość. Poprzez temperaturę
i ciśnienie możliwa jest kontrola właściwości rozpuszczalnika nad-
krytycznego, często będącego gazem, co ułatwia proces separacji
Rys. 1. Aparat Soxhleta (5)
Rys. 2. Schemat przebiegu ekstrakcji nadkrytycznej (5)
Rys. 3. Schemat systemu ASE (5)
Separator 2
K
ondensat
or
Zbiornik CO
2
Pompa
Separator 1
Produkt 2
lub odpad
Produkt 1
Grzałka
Ekstraktor
Azot do
oczyszczania
systemu
Zbiornik
rozpuszczalnik
Piec
Materiał
ekstrakcyjny
Pompa
Odbieralnik
Wylot
chłodnicy
Chłodnica
Ekstraktor
Soxhleta
Kolba
ekstrakcyjna
Wlot
chłodnicy
29
laboratorium przemysłowe
Laboratorium |
9
/2008
29
substancji ekstrahowanej z rozpuszczalnika (7). Ekstrakt uzyskany
w warunkach nadkrytycznych występuje w postaci pary o wysokiej
temperaturze i ciśnieniu; ekstrakt ten może być dalej frakcjonowa-
ny na składniki (1).
Ekstrakcja ultradźwiękowa
Ekstrakcja ultradźwiękowa wykorzystuje zjawisko wzbudzania
drgań mechanicznych przez fale dźwiękowe o częstotliwości
większej niż 20 kHz. Ultradźwięki w trakcie ekstrakcji z mate-
riałów roślinnych mogą prowadzić do destrukcji ściany komór-
kowej i uwolnienia ekstrahowanych składników. Duże znaczenie
odgrywają zastosowana częstotliwość i sposób dystrybucji fal
w ekstraktorze. Istnieją dwa rodzaje aparatów ekstrakcyjnych:
łaźnia ultradźwiękowa lub zamknięty ekstraktor z przetworni-
kiem ultradźwiękowym (5).
W porównaniu z ekstrakcją klasyczną ten sposób jest szybki
i wydajny. Ponadto nie jest drogi i umożliwia pozyskanie bardzo
różnorodnych związków w zależności od użytego rozpuszczalnika.
Ekstrakcja może służyć do odzysku związków termolabilnych (5).
System ten znalazł zastosowanie do oddzielenia olejów i olej-
ków eterycznych z ziół (np. mięty, kopru, chmielu), polifenoli
(w tym antocyjanin), karotenoidów, kwasu winowego, związków
aromatycznych, polisacharydów i związków funkcjonalnych,
ekstrakcji białek soi oraz związków bioaktywnych pochodzenia
zwierzęcego (8).
Ekstrakcja mikrofalowa
Inną techniką wykorzystującą fale jest ekstrakcja mikrofalowa
(microwave-assisted extraction, MAE). Są to jednak fale elektroma-
gnetyczne z zakresu 0,3-300 GHz, a zwykle
w przemyśle i gospodarstwie domowym
o częstotliwości 2,45 GHz. Mikrofale pe-
netrują surowiec i oddziałują z polarny-
mi cząsteczkami (np. wodą), wytwarzając
ciepło i ogrzewając materiał. MAE oferu-
je szybkie, wydajne i równomierne dostarczenie energii do całej
objętości rozpuszczalnika i surowca. Ponieważ woda zawarta
w materiałach roślinnych absorbuje energię mikrofal, następu-
je rozerwanie tkanek przez wewnętrzne przegrzewanie, które
sprzyja desorpcji związków chemicznych i poprawia ich odzysk.
Wydajność ekstrakcji mikrofalowej zależy od przewodności elek-
trycznej rozpuszczalnika i materiału, więc im więcej wody, tym
większy odzysk. Jednak w przypadku związków termolabilnych
korzystniejsza jest mniejsza zawartość wody, by doprowadzić do
dużego podgrzania. Zaletami techniki mikrofalowej są: krótszy
czas, niewielkie zużycie rozpuszczalnika, wysoka wydajność oraz
prostota zastosowania (5).
Znane są dwa rodzaje ekstraktorów handlowych: zamknięte
naczynie ekstrakcyjne działające przy kontrolowanej temperaturze
i ciśnieniu oraz generatory mikrofalowe pod ciśnieniem atmosfe-
rycznym (5).
Ekstrakcja MAE wykazuje wyższość nad ekstrakcją konwencjo-
nalną i ultradźwiękową w ilości uzyskanych polifenoli np. z liści
herbacianych (9).
Ekstrakcja pod ciśnieniem
W czasie ciśnieniowej ekstrakcji ciekłej PLE (pressurized liquid extrac-
tion) czynnikami umożliwiającymi jej przebieg są wysoka tempera-
tura i wysokie ciśnienie. Temperatura powoduje rozerwanie wiązań
w sieci surowca oraz znacząco modyfikuje przenikalność rozpusz-
czalnika (6). Współdziałanie ciśnienia i temperatury powoduje
wzmocnienie ekstrakcji, gdyż rozpuszczalnik szybciej penetruje
materiał ekstrahowany i przyspiesza kinetykę dyfuzji. W badaniach
przeprowadzonych przez Luthria i in. (10) wykazano, iż ekstrak-
cja ciśnieniowa rozpuszczalnikiem PLE charakteryzuje się większą
wydajnością niż przy użyciu konwencjonalnych metod ekstrakcji,
a przy tym jest szybsza.
Przyspieszona ekstrakcja rozpuszczalnikiem
(accelerated solvent extraction, ASE)
Jest to odmiana PLE przypominająca ekstrakcję w warunkach
nadkrytycznych (SFE). Przeprowadzana jest w podwyższanej tem-
peraturze, 50-200°C, oraz pod ciśnieniem w zakresie 10-15 MPa,
co zapewnia, iż rozpuszczalnik znajduje się w stanie ciekłym,
nadal poniżej warunków krytycznych (5). Typowy schemat
systemu ASE przedstawia rysunek 3, str. 29. Poza rozpuszczal-
nikami organicznymi, które są zazwyczaj używane w ekstrakcji
ciśnieniowej, wykorzystuje się także nietoksyczne rozpuszczal-
niki, jak woda lub ditlenek węgla. ASE stosuje się do ekstrakcji
związków organicznych, które są odporne na działanie wysokiej
temperatury (5).
Ekstrakcja do fazy stałej SPE
(solid phase extraction)
Zwykle stosowana jest w celu oczyszczenia i usunięcia niepo-
żądanych związków (4). Polega ona na zaadsorbowaniu odzy-
skanych składników w fazie stałej, a następnie ich wypłukaniu
rozpuszczalnikiem (11). Technika ta umożliwia selektywny od-
zysk związków aktywnych, regulowany ich
różnym powinowactwem do ekstrahenta
oraz temperaturą procesu. Zaletą tej me-
tody jest przede wszystkim ograniczenie
zużycia rozpuszczalników i skrócenie pro-
cesu w stosunku do klasycznej maceracji.
Ponadto zastosowanie ekstrakcji SPE ogranicza problemy konta-
minacji i zautomatyzowania procesu. Technika ta sprawdza się
dobrze w czasie prób ekstrakcji cukrów, kwasów organicznych
i polifenoli w winie (12).
Rozpuszczalniki w ekstrakcji
Właściwy dobór rozpuszczalników do warunków ekstrakcji i ro-
dzaju surowca stanowi zasadniczy element procesu. Poprzez
poznanie właściwości rozpuszczalników i składników rozpusz-
czalnych, a także interakcji zachodzących między nimi można
osiągnąć wysoką skuteczność w odzysku związków aktywnych
z roślin (13). Podczas ekstrakcji używa się różnych roztworów,
np. n-heksanu chloroformu, acetonu, metanolu, etanolu, aceto-
nitrylu, wody, CO
2
, kwasów fosforowych. Ważnym czynnikiem
jest charakter cząsteczek substancji ekstrahowanej. W zależności
od tego, czy substancja ta jest rozpuszczalna w wodzie, alkoho-
lach czy tłuszczach, dobiera się rozpuszczalniki o odpowiednim
charakterze – polarnym lub niepolarnym. Komponenty zawiera-
jące np. kwasy karboksylowe i grupy hydroksylowe będą łatwiej
ekstrahowane wodą (14). Ketony i związki z grupami estrowymi
wykazują właściwości nukleofilowe (donory elektronu) i reagują
zarówno z wodą, jak i alkoholami, a zastosowanie eteru jako roz-
puszczalnika będzie uzasadnione w przypadku wyekstrahowania
substancji o charakterze niepolarnym (15).
Właściwy dobór rozpuszczalników do warunków
ekstrakcji i rodzaju surowca stanowi zasadniczy
element procesu.
stanowi zasadniczy element procesu.
laboratorium przemysłowe
Laboratorium |
9
/2008
30
Liczne badania i doświadczenia potwierdzają, iż odpowiedni
dobór metody odzysku substancji aktywnych z roślin zapew-
nia wysoką wydajność procesu i dobrą jakość produktu. Ciągłe
prace prowadzone nad optymalizacją warunków ekstrakcji mają
na celu zmniejszenie zużycia potrzebnych składników, a przez
to zmniejszenie kosztów produkcji. Użycie standardowych me-
tod znanych od wielu lat w połączeniu z różnymi innowacjami
(ultradźwięki, wysokie ciśnienie i temperatura, maceracja obiego-
wa i inne) pozwala na uzyskanie coraz lepszych wyników. W go-
spodarce rynkowej istniejąca konkurencja wymusza na produ-
centach ciągłe doskonalenie metod produkcji i zmniejszanie jej
kosztów przy jednoczesnym zachowaniu jak najwyższej jakości
produktu (16).
Piśmiennictwo
1. Pijanowski E., Dłużewski M., Dłużewska A., Jarczyk A.: Ogólna techno-
logia żywności. WNT, Warszawa 2004, 200-208.
2. Lewicki P.: Inżynieria procesowa i aparatura przemysłu spożywczego. WNT,
Warszawa 1999, 393-395, 400.
3. Bucić-Kojić A., Planicić M., Srećko T., Bilić M., Velić D.: Study of so-
lid-liquid extraction kinetics of total polyphenols from grape seeds. „J. Food
Eng.”, 2007, 81, 236-242.
4. Naczk M., Shahidi F.: Extraction and analysis of phenolics in foods. „J.
Chromatogr. A”, 2004, 1054, 95-111.
5. Wang L., Weller C.: Recent advances in extraction of nutraceutical from
plants. „Trends Food Sci. Tech.”, 2006, 17, 300-312.
6. Palma M., Pineiro Z., Barroso C.: Stability of phenolic compounds du-
ring extraction with superheated solvents. „J. Chromatogr.”, 2001, 921,
169-174.
7. Łukaszyński D.: Zastosowanie technologii nadkrytycznych do ekstrakcji i ana-
lizy produktów spożywczych oraz substancji aktywnych biologicznie. „Postępy
Nauk Rolniczych”, 1995, 6, 91-99.
8. Vilkhu K., Mawson R., Simons L., Bates D.: Application and opportunities
for ultrasound assisted extraction in the food industry. A review. „Innovative
Food Sci. Emerg. Technol.”, 2008, 9, 161-169.
9. Pan X., Guoguang N., Liu H.: Microwave-assisted extraction of tea polyphe-
nols and tea caffeine from green tea leaves. „Chem. Eng. Process.”, 2003,
42, 129-133.
10. Luthria D., Mukhopadhyay S., Kwansa A.: A systematic approach for
extraction of phenolic compounds using parsley (Petroselinum Crispim) flakes
as a model substrate. „J. Sci. Food Agric.”, 2006, 86, 1350-1358.
11. Dopico-Garcia M.S., Lopez-Vilarino J.M., Gonzalez-Rodriguez M.V.:
Determination of antioxidants by solid-phase extraction method in aqueous
food simulants. „Talanta”, 2005, 66, 1103-1107.
12. de Villers A., Lynen F., Crouch A., Sandra P.: Development of the solid
phase extraction procedure for the simultaneous determination of polyphenols,
organic acids and sugars in wine. „Chromatographia”, 2004, 59, 403-
-409.
13. Brüggemanna O., Visnjevski A., Burch R., Patel P.: Selective extraction
of antioxidants with molecularly imprinted polymers. „Anal. Chim. Acta”,
2004, 504, 81-88.
14. Yang D.Y., Kakuda Y., Subden R.E.: Higher alcohols, diacetyl, acetoin and
2,3-butanediol biosynthesis in grapes undergoing carbonic maceration. „Food
Res. Internat.”, 2006, 39, 112-116.
15. Markoma M., Masitah H., Wan R., Wan D., Harcharan S., Jamaliah
M.J.: Extraction of hydrolysable tannins from Phyllanthus niruri Linn.: Ef-
fects of solvents and extraction methods. „Sep. and Purif. Techn.”, 2007, 52,
487-496.
16. Lingyun W., Wang J., Zheng X., Teng D., Yang Y., Cai Ch., Feng T.,
Zhang F.: Studies on the extracting technical conditions of inulin from Jeru-
salem artichoke tubers. „J. Food Eng.”, 2007, 79, 1087-1093.
procesu.
31
laboratorium przemysłowe
Laboratorium |
9
/2008
31