Pytania zamknięte wielokrotnego wyboru
•
na podstawie wykładów
Wykład pierwszy - Endonukleazy restrykcyjne
1. Dzięki inżynierii genetycznej możemy
a) izolować z komórki fragmenty materiału genetycznego
b) powielać geny
c) wprowadzać celowe mutacje w materiale genetycznym
d) przenosić DNA do komórek innego organizmu
2. Inżynieria genetyczna to:
a) nauka o technikach badawczych pozwalających na ingerencję w materiał genetyczny
b) nauka o technikach badawczych pozwalających na odczytywanie fenotypowych zmian w
organizmach
c) nauka o technikach badawczych pozwalających na odczytywanie genotypowych zmian
w organizmach
d) nauka o technikach badawczych pozwalających na określeniu charaterystyki genów
3. Narzędzia molekularne pozwalające na uzyskanie zmodyfikowanego DNA to:
a) enzymy restrykcyjne
b) transpozony
c) ligazy
d) wektory
4. Enzymy restrykcyjne to pod względem biochemicznym:
a) topoizomerazy
b) ligazy
c) nukleazy
d) fosfatazy
5. W inżynierii genetycznej wykorzystuje się:
a) enzymy restrykcyjne I klasy
b) enzymy restrykcyjne II klasy
c) enzymy restrykcyjne III klasy
d) enzymy restrykcyjne IV klasy
6. Do grupy I zalicza się enzymy restrykcyjne, których aktywność in vitro zależy od:
a) ATP, SAM, Mg2+
b) ATP, Mg2+
c) Mg2+
d) ATP, SAM
7. Do grupy II zalicza się enzymy restrykcyjne, których aktywność in vitro zależy od:
a) ATP, SAM, Mg2+
b) ATP, Mg2+
c) Mg2+
d) ATP, SAM
8. Do grupy III zalicza się enzymy restrykcyjne, których aktywność in vitro zależy od:
a) ATP, SAM, Mg2+
b) ATP, Mg2+
c) Mg2+
d) ATP, SAM
9. Dwie aktywności (system restrykcji i metylacji) są w obrębie jednego kompleksu
enzymatycznego w:
a) enzymy restrykcyjne I klasy
b) enzymy restrykcyjne II klasy
c) enzymy restrykcyjne III klasy
d) enzymy restrykcyjne IV klasy
10. Enzymy restrykcyjne którego typu trawią obydwa pasma DNA w obrębie miejsca
rozpoznania:
a) enzymy restrykcyjne I klasy
b) enzymy restrykcyjne II klasy
c) enzymy restrykcyjne III klasy
d) enzymy restrykcyjne IV klasy
11. Które z wymienionych enzymów są uznawane za rzadkotnące:
a) enzymy, które rozpoznają sekwencje bogate w pary GC
b) enzymy, które rozpoznają sekwencje bogate w pary AT
c) enzymy 8nt
d) enzymy 6nt
12. Izoschizomery to:
a) enzymy pochodzące z różnych szczepów rozpoznające te same sekwencje DNA,
niekoniecznie przecinające DNA w tych samych miejscach
b) enzymy pochodzące z tego samego szczepu rozpoznające te same sekwencje DNA,
niekoniecznie przecinające DNA w tych samych miejscach
c) enzymy pochodzące z różnych szczepów rozpoznające, ale te same sekwencje DNA,
przecinające DNA w tych samych miejscach
d) enzymy pochodzące z tego samego szczepu, ale rozpoznające te same sekwencje DNA,
przecinające DNA w tych samych miejscach
13. Neoizoschizomery to:
a) enzymy rozpoznające taką samą sekwencję i przecinające ją w taki sam sposób sposób
b) enzymy rozpoznające różną sekwencję i przecinające ją w inny sposób
c) enzymy rozpoznające różną sekwencję, ale przecinające ją w taki sam sposób
d) enzymy rozpoznające taką samą sekwencję, ale przecinające ją w inny sposób
14. Po trawieniu enzymami restrykcyjnymi mogą powstać:
a) nadmierności typu 3’
b) nadmierności typu 5’
c) nadmierności typu 2’
d) żadne nadmierności
15. Enzymem łączącym „lepkie końce” jest:
a) polimeraza
b) endonukleaza
c) ligaza
d) lipaza
16. Lepkie końce mogą łączyć się ze sobą samoczynnie i taki proces nosi nazwę:
a) recyrkularyzacji
b) ligacji
c) alfa-komplementacji
d) recyklingu
17. Czynniki wpływające na działanie ER in vitro to:
a) temperatura inkubacji
b) stężenie ER
c) skład buforu
d) czas inkubacji
18. Aktywność gwiaździsta może być spowodowana przez:
a) wysokie pH
b) zbyt długą inkubację
c) zbyt niskie stężenie ER
d) zbyt wysokie stężenie ER
19. Zastosowanie enzymów restrykcyjnych:
a) izolacja i identyfikacja genów
b) rekombinowanie i klonowanie genów
c) mapowanie fizyczne genomów
d) identyfikacja genomów
Wykład drugi – Elektroforeza
20. Elektroforeza jest:
a) techniką oczyszczania DNA
b) techniką powielenia DNA
c) techniką rozdzielania fragmentów DNA według ich wielkości
d) techniką wizualizacji kwasów nukleinowych
21. Do rozdzielenia dużych cząsteczek DNA wykorzystuje się:
a) elektroforezę poliakrylamidową
b) elektroforezę agarozową
c) elektroforezę asocjacyjną
d) elektroforezę akrylamidową
22. Rozdział na zasadzie sita molekularnego działa dzięki różnicom w:
a) masie cząsteczek
b) ładunku cząsteczek
c) zależy od rodzaju elektroforezy
d) odpowiedzi A i B są prawidłowe
23. Agaroza zbudowana jest z:
a) merów L-galaktozy połączonych wiązaniami alfa-(1→3) alfa-(1→4) glikozydowymi
b) merów D-galaktozy połączonych wiązaniami alfa-(1→3) alfa-(1→4) glikozydowymi
c) merów D- i L-galaktozy połączonych wiązaniami alfa-(1→3) alfa-(1→4) glikozydowymi
d) merów L-glukozy połączonych wiązaniami alfa-(1→3) alfa-(1→4) glikozydowymi
24. Zaletami elektroforezy agarozowej są:
a) łatwość przygotowania żelu i elektroforezy
b) wysoka zdolność rozdzielcza żelu
c) niski koszt agarozy
d) duży zakres rozdzielanych fragmentów DNA
25. Czynniki wpływające na stopień migracji DNA w żelu agarozowym to:
a) wielkość cząsteczki
b) konformacja DNA
c) stężenie agarozy
d) skład buforu do elektroforezy
26. Najszybciej przez żel agarozowy przejdą cząsteczki w konformacji:
a) liniowej (L)
b) otwarto kolistej (OC)
c) superzwiniętej (CCC)
d) natywnej
27. Z jaką szybkością liniowe dsDNA migruje w żelu agarozowym?
a) z szybkością odwrotnie proporcjonalną do ilości par zasad
b) z szybkością wprost proporcjonalną do ilości par zasad
c) z szybkością odwrotnie proporcjonalną do napięcia prądu
d) z szybkością wprost proporcjonalną do napięcia prądu
28. Bromek etydyny odpowiada za:
a) spadek ładunku negatywnego w dsDNA
b) wzrost siły jonowej buforu do elektroforezy
c) spadek sztywności i długości DNA
d) wzrost sztywności i długości DNA
29. Wraz ze wzrostem stężenia agarozy możliwa jest separacja:
a) coraz mniejszych cząsteczek DNA
b) coraz większych cząsteczek DNA
c) większej liczby cząsteczek DNA
d) mniejszej liczby cząsteczek DNA
30. Wielkość cząsteczek DNA po elektroforezie oznacza się:
a) stosując barwienie bromkiem etydyny
b) porównując do znanych markerów wielkości
c) wykreślając krzywą wzorcową wielkości
d) używając specjalnych mierników mikromolekularnych
31. Do barwienia żeli agarozowych używa się:
a) barwnik Giemsy
b) bromku etydyny (EB)
c) błękit Coomassie
d) barwników fluorescencyjnych
32. W elektroforezie pulsacyjnej (PFGE) migrują cząsteczki wielkości:
a) 50 - 10 000 kb
b) 0,1 - 0,5 kb
c) 50 - 1 000 bp
d) 1 - 50 kb
33. W PFGE dłuższe cząsteczki DNA:
a) nie potrzebują czasu na reorientację w zmieniającym się napięciu pola, leczu dłużej trwa
ich migracja
b) więcej czasu potrzebują na migrację w zmieniającym się napięciu pola, niż na
reorientację
c) potrzebują tyle samo czasu na reorientację w zmieniającym się napięciu pola, co na
migrację
d) więcej czasu potrzebują na reorientację w zmieniającym się napięciu pola, niż na
migrację
34. Na przebieg PFGE wpływa:
a) czas trwania pulsu
b) konformacja cząsteczek
c) stężenie agarozy
d) stężenie DNA
35. W PFGE większe cząsteczki DNA wymagają:
a) wyższego napięcia niż mniejsze cząsteczki
b) niższego napięcia niż mniejsze cząsteczki
c) wyższego natężenia niż mniejsze cząsteczki
d) niższego natężenia niż mniejsze cząsteczki
36. Rozdzielanie małych fragmentów DNA w żelu poliakrylamidowym przeprowadza się
zazwyczaj przy:
a) 20 V/cm
b) 100 V/cm
c) 5 V/cm
d) 200 V/cm
37. Elektroforeza w żelu poliakrylamidowym służy do rozdziału:
a) dsDNA
b) ssDNA
c) białek
d) RNA
38. W porównaniu do żelów agarozowych żele poliakrylamidowe cechują się:
a) wysoką zdolnością rozdzielczą
b) zdolnością rozdzielania dużych ilości DNA bez utraty zdolności rozdzielczej
c) niskimi kosztami
d) wysoką czystością DNA
39. Do barwienia żeli agarozowych używa się:
a) barwnik Giemsy
b) bromku etydyny (EB)
c) błękit Coomassie
d) SYBR Green
40. Zdolność rozdzielcza w żelu poliakrylamidowym zależy od:
a) stężenia akrylamidu
b) stężenia N,N’-metylenbisakrylamidu
c) napięcia prądu
d) natężenia prądu
41. Żele poliakrylamidowe denaturujące są polimeryzowane w obecności:
a) mocznika
b) bromku etydyny
c) formaldehydu
d) TEMEDu
Wykład trzeci - Wektory
42. Wektor to:
a) zrekombinowany fragment DNA zdolny do „wnikania” do wnętrza komórek tego
gospodarza i do autonomicznej replikacji
b) zrekombinowany fragment DNA niezdolny do „wnikania” do wnętrza komórek tego
gospodarza i do autonomicznej replikacji
c) zrekombinowany fragment DNA zdolny do „wnikania” do wnętrza komórek tego
gospodarza, ale niezdolny do autonomicznej replikacji
d) zrekombinowany fragment DNA niezdolny do „wnikania” do wnętrza komórek tego
gospodarza, ale zdolny do autonomicznej replikacji
43. Klonowanie molekularne umożliwia:
a) powstanie genetycznie zmodyfikowanych komórek, wykazujących niezwykłe dla nich
funkcje
b) przeprowadzenie manipulacji, na przykład mutagenezy
c) uzyskanie ekspresji genu, czyli produkcji kodowanego przez niego produktu
d) powstawanie stabilnych struktur dwuniciowych z cząsteczek jednoniciowych o
komplementarnych sekwencjach nukleotydów
44. Do klonowania molekularnego niezbędne są:
a) krowa
b) wektor
c) sonda molekularna
d) gospodarz
45. Klonowanie w komórkach prokariotycznych jest prostsze, ponieważ:
a) nie uciekają
b) komórki bakteryjne łatwo jest hodować
c) łatwo z nich izolować duże ilości specyficznego DNA
d) mają mniej DNA
46. Jako wektorów do klonowania molekularnego w mikroorganizmach używa się:
a) plazmidów
b) bakteriofagów
c) ksenobiontów
d) kosmidów
47. Typowe (nie-specjalne) wektory plazmidowe umożliwiają:
a) wydajną ekspresję sklonowanego genu – produkcję białka
b) proste powielenie wybranego genu
c) badanie własności sklonowanego genu lub odcinka DNA
d) otrzymywanie jednoniciowego DNA (ssDNA)
48. Dobry wektor plazmidowy cechuje się obecnością:
a) MCS (polilinkera)
b) markeru selekcyjnego
c) regionu ori replikacji
d) zdolności koniugacyjnych
49. Wektor z serii pACYC znajduje się w komórce zwykle w liczbie:
a) 15-20 kopii
b) 500-700 kopii
c) 10-12 kopii
d) ~5 kopii
50. Wektor z serii pUC znajduje się w komórce zwykle w liczbie:
a) 15-20 kopii
b) 500-700 kopii
c) 10-12 kopii
d) ~5 kopii
51. Wizualną identyfikację klonów zrekombinowanych umożliwia:
a) pUC
b) Col E1
c) pACYC
d) pBR322
52. Alfa-komplementacja to proces polgający na:
a) asocjacji dwóch zmutowanych peptydów
b) asocjacji dwóch peptydów wytworzonych w różnych miejscach na genomie
c) asocjacji dwóch peptydów wytworzonych na różnych plazmidach
d) asocjacji dwóch peptydów wytworzonych na genomie oraz plazmidach
53. X-gal to:
a) fragment wektora pUC
b) sztuczny substrat dla beta-galaktozydazy
c) sztuczna beta-galaktozydaza
d) sztuczny induktor beta-galaktozydazy (tzw. bezinteresowny)
54. IPTG to:
a) fragment wektora pUC
b) sztuczny substrat dla beta-galaktozydazy
c) część C-końcową beta-galaktozydazy (niosąca zmutowany geny lacZ)
d) sztuczny induktor beta-galaktozydazy (tzw. bezinteresowny)
55. Insercja odcinka obcego DNA od początkowych sekwencji fragmentu genu lacZ wektotra
przerywa jego ciągłość i uniemożliwia syntezę peptydu zdolnego do tworzenia aktywnej
cząsteczki B-galaktozydazy. Wykrycie takich rekombinantów jest możliwe na podstawie
barwy kolonii bakteryjnych na agarze, które są:
a) niebieskie
b) żółte
c) białe
d) czerwone
56. Insercja odcinka obcego DNA od początkowych sekwencji fragmentu genu lacZ wektotra
przerywa jego ciągłość i uniemożliwia syntezę peptydu zdolnego do tworzenia aktywnej
cząsteczki B-galaktozydazy. Wykrycie komórek niezrekombinowanych jest możliwe na
podstawie barwy kolonii bakteryjnych na agarze, które są:
a) niebieskie
b) żółte
c) białe
d) czerwone
57. Plazmidowe wektory ekspresyjne wyróżnia:
a) silny, regulowany promotor
b) umiejętność maskowania się przed nukleazami
c) obecność sekwencji niezbędnych do translacji mRNA sklonowanego genu
d) łańcuch poli-A odchodzący od miejsca ori
58. Do wektorów bakteriofagowych zaiczamy:
a) fag lambda
b) fag T7
c) fag M13
d) fag P1
59. Do otrzymywania jednoniciowych kopii DNA służą:
a) fagemidy
b) kosmidy
c) fosmidy
d) wektory fagowe
60. Kosmidy to:
a) wektory plazmidowe wyposażone w sekwencję cos faga lambda
b) wektory plazmidowe wyposażone w miejsce startu replikacji z plazmidu F oraz
sekwencję cos z faga M13
c) wektory plazmidowe wyposażone w miejsce startu replikacji z plazmidu F oraz
sekwencję cos z faga lambda
d) wektory plazmidowe wyposażone w miejsce startu replikacji z drożdży S. cervicae oraz
sekwencję cos z faga lambda
61. Kosmidy wykorzystywane są do:
a) otrzymywania jednoniciowych kopii DNA
b) konstrukcji bibliotek genomowych
c) badania własności sklonowanego genu
d) sekwencjonowania DNA
62. Wykorzystanie wektorów drożdżowych ma niewątpliwe zalety. Należą do nich:
a) obecność struktur komórkowych typowych dla eukariota
b) geny w nich klonowane mogą zawierać sekwencje intronowe ponieważ proces
obróbki mRNA jest zbliżony do tego, który występuje u wyższych eukariontów
c) możliwość modyfikacji potranslacyjnych
d) obecność dwóch miejsc replikacji, dla prokariota i eukariota
63. Wektory wahadłowe mają:
a) struktury pozwalające na ekspresję białek kodowanych w wektorze
b) dwa miejsca MCS (polilinker)
c) dwa odrębne miejsca startu replikacji (jedno z nich uruchamiane jest w
eukariotycznych komórkach - drożdży, drugie w komórkach prokariotycznych E. coli)
d) dwa typy markerów selekcyjnych: dla komórek drożdżowych jak i bakteryjnych
64. Chromosom drożdżowy YAC standardowo jest w stanie sklonować odcinek DNA o wielkości:
a) ok. 1 Mpz
b) ok. 800 kpz
c) ok. 600 kpz
d) ok. 400 kpz
65. Sztuczny chromosom drożdżowy musi zawierać następujące funkcjonalne składniki
chromosomu drożdży:
a) odcinek ori (ARS), centromer (CEN), telomer i geny struktury
b) odcinek ori (ARS), centromer (CEN), telomer
c) odcinek ori prokariotycznego, centromer (CEN), telomer i geny struktury
d) odcinek ori (ARS), centromer (CEN) i geny struktury
66. Kompleks ekspresyjny (kaseta ekspresyjna), znajdujący się w części eukariotycznej
chromosomu drożdżowego YAC zawiera:
a) promotor rozpoznawany przez polimerazę RNA gospodarza eukariotycznego
(drożdżową polimerazę RNA)
b) terminator transkrypcji
c) MCS
d) sztuczne sekwencje intronowe, które umożliwiają dojrzewanie klonowanego DNA
eukariotycznego
67. W trakcie konstrukcji wektora można usunąć z wirusa:
a) gen cen
b) geny trans
c) geny cis
d) miejsce ori replikacji
Wykład piąty - Inne enzymy
68. Ligazy:
a) katalizują tworzenie wiązań fosfodiestrowych między sąsiednimi grupami 3’ OH i 5’
PO4 w kwasach nukleinowych – DNA lub RNA
b) katalizują tworzenie wiązań fosfodiestrowych między sąsiednimi grupami 5’ OH i 3’ PO4
w kwasach nukleinowych – DNA lub RNA
c) katalizują tworzenie wiązań fosfoglikozydowych między sąsiednimi grupami 3’ OH i 5’
PO4 w kwasach nukleinowych – DNA lub RNA
d) katalizują tworzenie mostków disiarczkowych między sąsiednimi grupami 3’ OH i 5’ PO4
w kwasach nukleinowych – DNA lub RNA
69. Bakteryjna ligaza jest zależna od:
a) ADP i Mg2+
b) ATP i Mg2+
c) GTP i Mg2+
d) NAD i Mg2+
70. Eukariotyczne i fagowe ligazy są zależne od:
a) NAD i Mg2+
b) ATP i Mg2+
c) GTP i Mg2+
d) ADP i Mg2+
71. Fosfataza alkaliczna:
a) jest metaloenzmem
b) usuwa 3’-fosforan z ssDNA, dsDNA
c) usuwa 5’-fosforan z ssDNA, dsDNA
d) zapobiega autoligacji po strawieniu ER
72. Polimeraza I Kornberga wkazuje aktywność:
a) 3’→5’ polimeryzacyjna
b) 3’→5’ egzonukleolityczna
c) 5’→3’ polimeryzacyjna
d) 5’→3’ egzonukleolityczna
73. Fragment Klenowa polimerazy I wykorzystywany jest do:
a) znakowania sond molekularnych
b) syntezy dsDNA na matrycy ssDNA
c) wypełniania cofniętych 3’-końców we fragmentach DNA
d) wytrawiania wystających 3’-końców
74. Do polimeraz termostabilnych zaliczamy:
a) Taq
b) Kor
c) Vent
d) Pfu
75. Główne zastosowanie odwrotnej transkryptazy to:
a) kopiowanie RNA na DNA
b) sekwencjonowanie DNA metodą Sangera
c) defosforylacja DNA
d) tworzenie kopii DNA z RNA przed amplifikacją PCR, w reakcji zwanej RT-PCR
76. Terminalna transferaza:
a) wymaga startera i matrycy
b) nie wymaga startera, ani matrycy
c) wymaga startera, ale nie matrycy
d) nie wymaga startera i matrycy
77. Zastosowania terminalnej transferazy to:
a) znakowanie 3’-końców DNA
b) dodawanie nukleotydów dNTP do 3’ OH-końca DNA
c) dodawanie 5'-fosforanów do DNA
d) dodawanie homopolimerowych ogonków do DNA
78. Kinaza polinukleotydowa ma skrót:
a) PDF
b) PNK
c) KPN
d) PKN
79. Który z enzymów nie wymaga obecności jonów Mg2+:
a) polimeraza I
b) fosfataza alkaliczna
c) kinaza polinukleotydowa
d) terminalna transferaza
80. DNAzy są używane do:
a) usuwania DNA z preparatów RNA
b) analizy interakcji DNA-białko (tzw. footprinting)
c) nadtrawianie DNA w reakcji przesunięcia przerwy
d) konwersja na tępe końce
Opracował Jakub Knurek