1
II (B) OPIS POSZCZEGÓLNYCH PRZEDMIOTÓW
Nazwa jednostki
prowadzącej kierunek
Wydział Biologii i Ochrony Środowiska
Nazwa kierunku
Biotechnologia
Specjalność
Biotechnologia roślin użytkowych, Biotechnologia środowiska
II B 1.
Nazwa przedmiotu
Genetyka molekularna
Katedra prowadząca: Katedra Genetyki
Katedra
współpracująca:
Katedra
Biochemii,
Katedra
Mikrobiologii
II B 2.
Kod przedmiotu
II B 3.
Typ przedmiotu
Obowiązkowy
II B 4.
Poziom przedmiotu
Ś
rednio zaawansowany
II B 5.
Rok studiów, semestr Rok II, semestr 4 - Studia I stopnia
II B 6.
Liczba punktów
5
II B 7.
Metody nauczania
Wykłady (30 godz.) z wykorzystaniem środków audiowizualnych,
prowadzone przez 15 tygodni (2 godz./ tydzień). Ćwiczenia
(30 godz.) w laboratorium biologii molekularnej, polegające na
wykonywaniu doświadczeń na podstawie instrukcji, analizie
uzyskanych wyników i przygotowaniu pisemnych sprawozdań,
prowadzone przez 6 tygodni (5 godz./ tydzień).
II B 8.
Język wykładowy
Polski
II B 9.
Imię i nazwisko
wykładowcy
Prof. dr hab. Iwona Szarejko
dr Justyna Guzy-Wróbelska – koordynator
II B 10. Wymagania wstępne
Znajomość podstaw zjawisk fizycznych i chemicznych oraz
podstaw genetyki, mikrobiologii i biochemii.
II B 11. Cele przedmiotu
(wskazane jest
określenie celów jako
efektów kształcenia i
kompetencji)
Uzyskanie podstawowej wiedzy z zakresu genetyki molekularnej
i technik molekularnych.
II B 12. Treści merytoryczne
przedmiotu
W
YKŁADY
Anatomia
genomów
pro-
i
eukariotycznych
(organizacja, struktura i wielkość genomów, organizacja
i
znaczenie
pozachromosomowego
DNA,
projekty
sekwencjonowania genomów, budowa genomu człowieka).
Ruchome
elementy
genetyczne.
Molekularne
podstawy
i genetyczne skutki transpozycji. Molekularne podstawy ewolucji
genomów. Regulacja ekspresji informacji genetycznej u Pro-
i Eukaryota na różnych poziomach jej realizacji. Budowa i rola
białek
wiążących
DNA.
Dziedziczenie
epigenetyczne.
Podstawowe metody badania struktury i funkcji genów
i genomów.
Ć
WICZENIA
Izolacja chromosomalnego DNA z komórek bakterii
E.
coli. Izolacja plazmidowego DNA z komórek szczepów bakterii
Pseudomonas
sp. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia
i czystości izolowanego DNA. Horyzontalny transfer genów
u bakterii, koniugacja bakterii. Wektory pochodne fagów.
Transdukcja ogólna Salmonella sp. przy pomocy faga P22.
Restrykcja DNA roślinnego i faga Lambda za pomocą enzymów
restrykcyjnych oraz ligacja fragmentów restrykcyjnych. Reakcja
PCR i projektowanie starterów do PCR.
II B 13. Metody oceny
Ć
wiczenia:
po
zakończeniu
każdego
eksperymentu
laboratoryjnego kolokwium pisemne w postaci pytań testowych
otwartych i opisowych lub/i pozytywna ocena ze sprawozdania.
2
Egzamin: pisemny, obejmujący materiał z wykładów oraz
z ćwiczeń, w postaci pytań testowych otwartych.
II B 14. Spis zalecanych lektur
podstawowych
Alberts B., Bray D., Hopkin K., Johnson A., Lewis J., Raff M.,
Roberts K., Walter P. 2005. Podstawy Biologii Komórki. PWN,
Warszawa
Brown T. A. 2009. Genomy. PWN, Warszawa
Węgleński P. 2006. Genetyka Molekularna. PWN, Warszawa
II B 15. Spis zalecanych lektur
uzupełniających
Turner P.C., McLennan A.G., Bates A. D., White M.R.H. 2007.
Krótkie Wykłady. Biologia Molekularna. Wydanie II, PWN,
Warszawa