background image

Sprawozdanie 9. 

Politechnika Wrocławska 

Wydział Chemiczny 

Strona 1 z 3 
Data zajęć: 2008/05/21 

Biochemia 1 (BTC3009l) 
laboratorium 
dr inż. Beata Greb-Markiewicz 

Ćwiczenie O 

Elektroforetyczny rozkład białek

 

Łukasz Czok 
Mateusz Jędrzejewski 
Grupa: IV 

 

Wstęp 

Elektroforeza  to  dyfuzja  fazy  rozproszonej  względem  ośrodka  dyspersyjnego  pod  wpływem 

przyłożonego  z  zewnątrz  pola  elektrycznego.  Następuje  rozdział  cząsteczek  obdarzonych  

ładunkiem. Szybkość przemieszczania się zależy od własności takich jak: wielkość cząsteczki, 

ładunek,  zdolność  do  wiązania  wody  i  jonów.  Szybkość  jest  także  wprost  proporcjonalna 

do przyłożonego napięcia. Miarą szybkości poruszania się jest szybkość w jednostkowym polu 

elektrycznym  zwana  ruchliwością  elektroforetyczną  (R

f

).    Ruchliwość    elektroforetyczna 

danego  rozdzielanego  składnika  jest  stała  podczas  elektroforezy  dla  stałych  warunków 

eksperymentu  takich  jak:  natężenie  i  napięcie  prądu,  pH,  temperatura  oraz  siła  jonowa. 

Ruchliwość  elektroforetyczna  jest  wprost  proporcjonalny  do  ładunku  elektrycznego 

cząsteczki i odwrotnie proporcjonalny do jej wielkości. Zależy także od kształtu cząsteczki. 

Ruchliwość elektroforetyczna 















 

gdzie: 

 





 

droga przebyta przez i-ty składnik (prążek), 

 





 

droga przebyta przez wskaźnik. 

Elektroforeza  jako  technika  analityczna  ma  wiele  odmian.  Ze  względu  na  rodzaj  ośrodka 

dyspersyjnego  wyróżniamy:  elektroforezę  bibułową,  kapilarną  i  żelową.  Elektroforeza 

kapilarna  zwana  jest  też  elektroforezą  w  wolnym  buforze.  Elektrolit  swobodnie  przemiesza 

się  w  aparacie  o  kształcie  U-rurki.  Ten  rodzaj  elektroforezy  służy  najczęściej  do  rozdziału 

niewielkich cząsteczek. 

W elektroforezie żelowej ośrodkiem w którym przemieszczają się badane substancje jest żel. 

Najczęściej  spotykanym  jest  żel  poliakrylamidowy.  Spełnia  ona  wszystkie  cech  idealnego 

nośnika.  Jest  uformowany  najczęściej  na  płytce  długości  kilkunastu  centymetrów.  Równie 

dobrze  może  być  w  kształcie  okrągłej  rurki.    Nanosi  się  próbkę  na  żel,  a  do  końców  żelu 

przykłada  się  stałe  napięcie.  Otrzymany  żel  po  rozdziale  wybarwia  się.  Rozdzielone  frakcje 

są widoczne w postaci pasków (prążków). Ten rodzaj elektroforezy jest kombinacją wędrówki 

w polu elektrycznym oraz sądzenia molekularnego. Jest najczęściej stosowany do rozdzielania 

DNA, RNA lub białek. W elektroforezie można badać ładunek czy wielkość poruszających się 

cząsteczek, ale także jednorodność wyizolowanych makrocząsteczek. 

Celem  ćwiczenia  jest  przeprowadzenie  rozdziału  elektroforetycznego  w  żelu  poliakrylamidowym 

białka albuminy oraz kwaśnej fosfatazy. 

Materiały 

a)

 

Odczynniki: 



 

0,065 M TRIS – kwas borowy (H

3

BO

3

) – bufor do elektroforezy o pH 9,0, 



 

0,1% roztwór wodny błękitu bromofenolowego – wskaźnik, 



 

50% roztwór sacharozy zabarwionej wskaźnikiem, 



 

rurki z żelem poliakrylamidowym, 



 

roztwór do barwienia żeli, 



 

roztwór do odbarwiania żeli, 



 

roztwór albuminy i fosfatazy kwaśnej – próbki do badań. 

(1) 

background image

Sprawozdanie 9. 

Politechnika Wrocławska 

Wydział Chemiczny 

Strona 2 z 3 
Data zajęć: 2008/05/21 

Biochemia 1 (BTC3009l) 
laboratorium 
dr inż. Beata Greb-Markiewicz 

Ćwiczenie O 

Elektroforetyczny rozkład białek

 

Łukasz Czok 
Mateusz Jędrzejewski 
Grupa: IV 

 

b)

 

Szkło laboratoryjne: 



 

probówki małe (2 szt.), 



 

probówki z korkiem (2 szt.), 



 

bagietka, 



 

szkiełko mikroskopowe podstawowe, 



 

pipeta pasteurowska. 

c)

 

Aparatura: 



 

aparat do elektroforezy z pełnym wyposażeniem, 



 

łaźnia wodna o temperaturze 55°C. 

Wykonanie 

Część I 

Nanoszenie próbek na żel 

1.

 

Przygotowano dwie małe probówki. 

2.

 

Do każdej z nich dodano po 100 μl sacharozy z barwnikiem. 

3.

 

Do pierwszej probówki dodano 100 μl albuminy. Wymieszano. 

4.

 

Do drugiej probówki dodano 100 μl kwaśnej fosfatazy. Wymieszano. 

5.

 

Zgodnie z instrukcją „O” przygotowano aparat do elektroforezy. 

6.

 

Na górę żelu z pierwszej rurki naniesiono 100 μl zawartości probówki pierwszej. 

7.

 

Na górę żelu z drugiej rurki naniesiono 100 μl zawartości probówki drugiej. 

Część II 

Rozdział elektroforetyczny 

1.

 

Zamknięto górną pokrywą aparat do elektroforezy. 

2.

 

Podłączono przewodami do zasilacza i włączono przepływ prądu. 

3.

 

Ustawiono natężenie prądu na 3 mA na jeden żel. 

4.

 

Odczekano aż wskaźnik przejdzie z żelu zagęszczającego do żelu rozdzielającego w rurce. 

5.

 

Ustawiono natężenie prądu na 5 mA na jeden żel. 

6.

 

Gdy wskaźnik osiągnął dół żelu wyłączono zasilanie. 

Część III 

Wybarwienie i odbarwianie żelu 

1.

 

Wykręcono obie rurki z aparatu do elektroforezy. 

2.

 

Żel z każdej rurki wypchnięto bagietką na szkiełko mikroskopowe podstawowe. 

3.

 

Odcięto żel zagęszczający oraz część żelu rozdzielającego poniżej wskaźnika. 

4.

 

Środkowe części żeli przełożono do odpowiednich probówek z korkami, wskaźnikiem do dołu. 

5.

 

Dodano odczynnika zabarwiającego, tyle żeby każdy żelu był całkowicie zalany. 

6.

 

Probówki umieszczono w łaźni wodnej 55°C na 15 minut. 

7.

 

Odlano barwnik do specjalnego pojemnika. 

8.

 

Do żeli w probówkach dodano odczynnika odbarwiającego. 

9.

 

Inkubowano w łaźni wodnej 55°C przez 15 minut. 

10.

 

Mieszano zawartość probówek. 

11.

 

Odlano roztwór. 

12.

 

Czynności z pkt. 8, 9, 10,11 powtarzano aż cały żel (poza białkami) odbarwi się. 

13.

 

Naszkicowano położenie prążków rysunek 1. oraz rysunek 2. 

14.

 

Zmierzono położenie powstałych prążków. 

Uwagi 

Wybarwianie powtórzono 5-krotnie. 

Nie przygotowywano żeli ani nie wypełniano rurek żelem. Skorzystano z już przygotowanych. 

background image

Sprawozdanie 9. 

Politechnika Wrocławska 

Wydział Chemiczny 

Strona 3 z 3 
Data zajęć: 2008/05/21 

Biochemia 1 (BTC3009l) 
laboratorium 
dr inż. Beata Greb-Markiewicz 

Ćwiczenie O 

Elektroforetyczny rozkład białek

 

Łukasz Czok 
Mateusz Jędrzejewski 
Grupa: IV 

 

Wyniki 

Po elektroforezie, wybarwieniu i odbarwianiu otrzymano obrazy* prążków na żelu**. 

 

Rysunek. 1. – żel z prążkami 

albuminy

Rysunek. 2. – żel z prążkami 

kwaśnej fosfatazy 

* zachowano skalę 1:1, kierunek dyfuzji białek przebiega z góry na dół, 

** z góry odcięto żel zagęszczający, z dołu żel rozdzielający poniżej linii wskaźnika. 

 

Zmierzono położenie prążków w żelu i wyznaczono ruchliwości elektroforetyczne ze wzoru (1). 

 

Dla albuminy (rysunek 1.) 





 43 mm 



 25 mm 





 33 mm 



,











25 mm

43 mm

 0,58 



,













33 mm

43 mm

 0,77 

Dla kwaśnej fosfatazy (rysunek 2.) 





 47 mm 



 20 mm 





 25 mm 





 28 mm 



,











20 mm

47 mm

 0,43 



,













25 mm

47 mm

 0,53 



,













28 mm

47 mm

 0,60 

 

 

Wnioski 

Rozdział  białek  nastąpił  ponieważ  składają  się  one  z  różnych  domen,  które  wykazują  różną 

ruchliwość elektroforetyczną. 

Albumina  w  elektroforezie  dała  dwa  prążki.  Można  domniemywać,  że  składa  się  z  dwóch 

heterogenicznych  domen.  Kwaśna  fosfataza  w  elektroforezie  dała  trzy  prążki.  Można 

domniemywać, że jest trimerem. 

Nie  można  jednoznacznie  zidentyfikować  kolejnych  domen,  ponieważ  nie  przeprowadzono 

elektroforezy  porównawczej  dla  wzorca  mas  białek.  W  związku  z  tym  położenie  prążka 

na żelu nie można przeliczyć na masę danej domeny w Daltonach. 

Nie można też jednoznacznie przesądzić o jednorodności badanych preparatów. W tym celu 

należałoby  przeprowadzić  elektroforezę  w  różnych  warunkach,  stosując  bufory  różniące  się 

pH i siłą jonową.