Zaawansowane metody usuwania azotu mineralnego ze ścieków

Zaawansowane metody usuwania azotu mineralnego ze ścieków

Azot jest czwartym pierwiastkiem pod względem występowania w organizmach żywych. Ma znaczny wpływ na wzrost roślin i większości organizmów heterotroficznych. Jednocześnie jego nadmierna ilość w ekosystemach wodnych powoduje eutrofizację zbiorników, która prowadzi do zachwiania równowagi ekologicznej. Znaczne ilości azotu występują w ściekach komunalnych i ściekach pochodzących z różnych gałęzi przemysłu. W biologicznych oczyszczalniach ścieków prowadzone są działania mające na celu zmniejszenie ilości azotu w oczyszczonych ściekach odprowadzanych do wód powierzchniowych (powszechnie zgodne z normami). Istnieją w wielu krajach biologiczne oczyszczalnie ścieków, które wykorzystują zarówno konwencjonalne, jak i nowoczesne technologie usuwania azotu ze ścieków. Metodami konwencjonalnymi biologicznego usuwania azotu mineralnego ze ścieków jest hodowla glonów oraz nitryfikacja i denitryfikacja.

Nowe biotechnologie

SHARON (single reactor system for high ammonia removal over nitrite process) jest biologiczną transformacją azotu amonowego uzyskiwaną w pojedynczym bioreaktorze z napowietrzaniem, bez zawracania biomasy, w temperaturze 35°C i pH ~7,0. W tych warunkach następuje częściowe utlenienie jonów amonowych do azotynów. Hodowlę mikroorganizmów prowadzi się w pojedynczym bioreaktorze z ciągłym mieszaniem (CSTR). W procesie SHARON uzyskuje się transformację azotu w ściekach zawierających amon w stężeniu > 0,5 g N/l.

Częściowa nitryfikacja amonu zachodzi w warunkach, w których parametry fizykochemiczne, takie jak temperatura, pH, czas zatrzymania ścieków, stężenie substratu oraz ilości tlenu rozpuszczonego w chemostacie, są kontrolowane. Utrzymywanie odpowiednich parametrów fizykochemicznych w skali technicznej jest trudne. W technologii SHARON wykorzystuje się różnice szybkości wzrostu pomiędzy nitrozobakteriami (NH4+ => N02~) a nitrobakteriami, które utleniają azotyny do azotanów w temperaturze inkubacji > 15°C. W temperaturze inkubacji wynoszącej 35°C szybkość wzrostu nitrobakterii jest dwukrotnie mniejsza niż nitrozobakterii. Jedynie w temperaturze inkubacji bakterii powyżej 25°C oraz odpowiednio krótkim czasie zatrzymania ścieków (wymywanie nitrobakterii) w bioreaktorze możliwe jest utlenianie amonu do azotynów.

Utlenianie amonu jest związane z procesem zakwaszenia przez produkt, którym jest kwas azotawy. Dlatego też kontrola i korekta pH w hodowli jest bardzo ważnym czynnikiem zabezpieczającym przed inhibicją procesu. Nitrobakterie są szczególnie wrażliwe na zmiany pH w hodowli. Optymalne pH dla rozwoju nitrozobakterii mieści się w zakresie od 6,5 do 7,5. Dodatek węglanu do ścieków zawierających amon w stosunku 1,1:1,0 sprawia, że połowa amonu przetransferowana przez mikroorganizmy do azotynów nie wymaga korekty pH. Dodatkowym czynnikiem, który sprzyja rozwojowi nitrozobakterii jest małe stężenie tlenu w bioreaktorze. Ponadto nitrozobakterie wykazują niską tolerancję wobec amonu (od 20-40 mg N-NH4+/1) i stosunkowo wysoką tolerancję na duże stężenia azotynów w podłożu (>0,5 g N-N02"/1) przy pH - 7,0. W porównaniu z tradycyjną metodą nitryfikacji do azotanów i jednoczesną/następczą denitryfikacją, reakcja SHARON wymaga 25% nakładów związanych z napowietrzaniem, pomijając konieczność dodawania węgla organicznego dla bakterii denitryfikacyjnych.

Z badań laboratoryjnych nad reakcją SHARON, prowadzonych przez dwa lata w 10-litrowym bioreaktorze typu CSTR (ciągłym mieszaniem) z ciągłym napowietrzaniem i 24-godzinnym czasem zatrzymania ścieków, wynika, że 53% amonu było transformowane jedynie do azotynów.

Anammox (anaerobic ammonia oxidation) (lub anamoks). Dotychczas wiedziano, że utlenianie amonu odbywa się w warunkach tlenowych lub w warunkach o obniżonej ilości tlenu w hodowlach z zastosowaniem bakterii nitryfikacyjnych. Utlenianie amonu było również obserwowane w warunkach beztlenowych, w obecności gazowego dwutlenku azotu (N02). Nitrozobakterie mogą również prowadzić proces denitryfikacji w obecności amonu jako donora elektronów, w warunkach zmniejszonego stężenia tlenu. Wg Mulder’a i wsp., duże ilości amonu (NH4) znikały w obecności azotanów, z wydzieleniem azotu cząsteczkowego, zgodnie z reakcją:
5 NH4+ + 3 N03 -> 4 N2 + 9 H20 + 2H+ ΔG = -1483,5 kJ/reakcję

Dalsze badania dowodzą, że w procesie anammox preferowanymi akceptorami elektronów okazały się azotyny:
NH4+ + NO2 -> N2 + 2 H20 ΔG = -358 kJ/mol NH4+

Głównym produktem utleniania amonu w procesie anammox był N2, a jedynie około 10% azotu było transferowane do azotanów. Sumarycznie reakcje anammox można zapisać równaniem reakcji:
NH4+ + 1,31 N02- + 0,066 HC03- + 0,13 H+ -> 1,02 N2 + 0,26 NO3 + 2,03 H20 + 0,066 CH2O0,5N0,15

Reakcje prowadzone w procesie anammox otwierają nowe możliwości usuwania azotu ze ścieków, bez dodawania egzogennego źródła węgla i energii. Produktami pośrednimi utleniania amonu w obecności azotynów, z udziałem mikroorganizmów, jest hydroksylamina i hydrazyna. Głównym źródłem węgla dla bakterii prowadzących reakcje anammox jest dwutlenek węgla.

Bakterie prowadzące reakcje anammox należą do trzech rodzajów: Brocadia, Kuenenia i Scalindua, przy czym pierwsze dwa rodzaje zostały wyizolowane z systemów oczyszczających ścieki, ostatni Scalindua wyizolowano z prób pobranych w Morzu Czarnym. Jest to grupa mikroorganizmów należących do rzędu Planctomycetes w domenie Bacteria. Mikroorganizmy prowadzące reakcje anammox - utleniania amonu w warunkach beztlenowych najlepiej rosną w podłożach lub ściekach zawierających amon w stężeniu 5-30 mM (milimole), azotyny 5-35 mM, węglany w stężeniu 10 mM, fosforany w stężeniu poniżej 0,5 mM oraz tlen w stężeniu < 1 mM. Z zachowaniem tych warunków mikroorganizmy anammox hodowane w beztlenowym złożu fluidalnym zdolne były do konwersji azotu z 0,4 g do 3 g/l∙doba-1, przy maksymalnej aktywności wynoszącej 25 nmoli/mg s.m.∙min-1. Zasymilowanie jednej cząsteczki CO2 wymaga utlenienia 24 moli amonu. Jednakże specyficzna szybkość wzrostu wynosiła 0,001 godz -1co odpowiada czasowi podwojenia komórek około 29 dni.

Wysoka aktywność w procesie anammox jest wykrywana u tych gatunków bakterii w środowisku pH 6,4 do 8,3, w temperaturze od 20 do 43°C dla szczepów mezofilnych i od 6°C dla szczepów morskich. Bardziej aktywne bakterie należą do Kuenenia stuttgar-tiensis (55 nmoli N2/mg białka • min-1 przy pH 8,0 i temperaturze inkubacji 40°C) niż gatunku Brocadia anammoxidans (26,5 nmoli N2/mg białka • min-1 przy pH 8,0 i temperaturze inkubacji 37°C). Dodatkowo szczep Kuenenia stuttgartiensis jest bardziej oporny na azotyny niż Brocadia anammońdans. Aktywność bakterii prowadzących reakcje anammox jest dwadzieścia pięć razy większa niż tlenowych nitrozobakterii utleniających amon w warunkach denitryfikacyjnych. Ale z drugiej strony, są one siedem razy mniej aktywne niż nitrozobakterie utleniające amon w warunkach tlenowych. Ogólnie bakterie prowadzące reakcje anammox są bardzo wrażliwe na tlen przy stężeniu tak małym jak 2 mM oraz nz azotyny (5-10 mM całkowicie hamuje aktywność, która może być odwracalna).

Proces anammox jest intensywnie badany w kontekście jego praktycznego zastosowania do usuwania azotu ze ścieków. Badania te koncentrują sie głównie na unieruchomieniu biomasy mikroorganizmów lub wytworzeniu osadu granulowanego. Z badań tych wynika, że możliwe jest usunięcie azotu w ilości 8,9 g N/l-doba1. Szybkość usuwania azotu została zwiększona ponad dwudziestokrotnie w porównaniu z wynikami uzyskiwanymi uprzednio.

Liczne są zalety mikroorganizmów prowadzących reakcje anammox. Częściowo znitryfikowany amon do azotynów jest akceptorem elektronów, których donorem jest amon. Mikroorganizmy prowadzące reakcje anammox nie wymagają wzbogacenia w związek organiczny, który jest konieczny dla bakterii denitryfikacyjnych. Reakcje anammox dostarczają niewiele energii, w związku z tym przyrosty biomasy są niewielkie. Jest to problem bardzo istotny dla każdej biologicznej oczyszczalni ścieków.

Na schemacie widać jak unika się konieczności utleniania do NO3-.Czyli różni się jedną reakcją czyli w praktyce:

- nie potrzebne jest dodatkowe źródło węgla

- nie potrzeba ogromnych ilości tlenu do utlenienia NO2- do NO3-

- nie powstają ogromne ilości biomasy, z którą trzeba "coś zrobić" a i reaktory mogą być mniejsze.

SHARON-ANAMMOX. W praktyce połączenie tych reakcji jest nową technologią usuwania azotu ze ścieków. Amon znajdujący się w ściekach jest częściowo (~50%) utleniany w warunkach tlenowych przez nitrozobakterie do azotynów zgodnie z reakcją:
NH4+ + HC03 + 0,75O2 -> 0,5 NH4+ + 0,5 N02 + C02 + 1,5 H20

Odpływ z bioreaktora SHARON zawierający amon i azotyny (50% + 50%) jest kierowany do bioreaktora anammox, gdzie mieszanina amonu i azotynów jest konwertowana do azotu cząsteczkowego. Metoda ta jest rekomendowana do ścieków zawierających głównie amon z uprzednio usuniętym ładunkiem organicznym. Reakcje SHARON i anammox prowadzi się w dwóch oddzielnych reaktorach. Proces ten wymaga znacznie mniejszej ilości tlenu niż klasyczne utlenianie amonu do azotanów metodą nitryfikacji (1,9 g 02/g N zamiast 4,6 g 02/g N), produkcja biomasy jest bardzo mała w porównaniu z biomasą produkowaną w procesie nitryfikacji (odpowiednio 0,08 g zamiast 1 g/g N).

Złożony proces SHARON-anammox stosowany jest na ogół jako drugi stopień oczyszczania ścieków mało obciążonych ładunkiem organicznym lub jako pierwszy stopień oczyszczania ścieków nieorganicznych pochodzących z produkcji nawozów azotowych. Jest on o 90% tańszy niż konwencjonalne usuwanie azotu metodą nitryfikacji i denitryfikacji.

CANON (completely autotrophic nitrogen removal process over nitrite) Jest on prowadzony w hodowlach mikroorganizmów przy małym stężeniu tlenu w pojedynczym bioreaktorze mieszanym lub w mikroflorze tworzącej biofilm. Ogólnie reakcje CANON polegają na częściowej nitryfikacji amonu do azotynów w warunkach mikroaerofilnych i jednoczesnym jego utlenianiu.

Przy ograniczonym nasyceniu podłoża hodowlanego w tlen (<0,5%) w bioreaktorze namnażają się kokultury mikroorganizmów zdolne do tlenowego i beztlenowego utleniania amonu. W skład kokultury wchodzą dwie populacje chemolitotroficznych mikroorganizmów: tlenowe nitrozobakterie i beztlenowe należące, odpowiednio, do rzędu Planctomycetes: Brocadia (B. anammoxidans) i Kuenenia (K. stuttgartiensis). Przy ograniczeniu tlenu mikroorganizmy tworzące naturalne kokultury bezpośrednio prowadzą konwersję amonu do azotu cząsteczkowego, z azotynami będącymi produktami pośrednimi. Reakcje CANON mogą być wykorzystywane jako technologia usuwania amonu ze ścieków w pojedynczym autotroficznym bioreaktorze. Populacje tworzące kokultury prowadzą jednocześnie reakcje tlenowego i beztlenowego utleniania amonu (NH4), z wydzieleniem azotu cząsteczkowego:
NH4+ + 1,5 02 -> N02' + 2 H+ + H20

NH4+ + 1,3 N02 -> 1,02 N2 + 0,26 N03~ + 2 H20
Sumarycznie te dwie reakcje można zapisać następująco:
NH4+ + 1,3NO2 => 0,435N2 + 0,13NO3- + 1,3H2O + 1,4H+

Usuwanie azotu ze ścieków o niewielkim ładunku zanieczyszczeń organicznych z zastosowaniem reakcji CANON jest ekonomicznie uzasadnione, gdyż proces jest autotroficzny i nie wymaga dodatkowego wzbogacania w związki organiczne, a jedynie nieznacznych ilości tlenu (37% zapotrzebowania tlenowego do nitryfikacji). Biologiczne usuwanie amonu ze ścieków może być efektywnie prowadzone w warunkach autotroficznych, z zastosowaniem procesu anammox, w kombinacji z procesem tego typu jak SHARON. To autotroficzna, alternatywna biologiczna metoda usuwania azotu amonowego w stosunku do tradycyjnej metody nitryfikacji i denitryfikacji. Metoda nitryfikacji-denitryfikacji wymaga dodatkowego, egzogennego źródła węgla organicznego dla bakterii denitryfikacyjnych. W procesie denitryfikacji wytwarza się duża biomasa bakterii heterotroficznych. Procesy autotroficzne wymagają rygorystycznego utrzymania optymalnych warunków hodowli.


Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
Biologiczne usuwanie azotu mineralnego ze ścieków
Biologiczne usuwanie azotu mineralnego ze ścieków
Biologiczne metody usuwania związków biogennych ze ścieków, Inżynieria Środowiska, Oczyszczanie Wody
Usuwanie Cr(III) ze ścieków metodą biosorpcji, Studia, Studia II-stopień, Ochrona środowiska, Labora
ZWIĄZKI REFRAKCYJNE I METODY ICH USUWANIA ZE ŚCIEKÓW, Technologia Wody i Ścieków
ZWIĄZKI REFRAKCYJNE I METODY ICH USUWANIA ZE ŚCIEKÓW, Technologia Wody i Ścieków
Metody biologiczne usuwania zanieczyszczenazotowych ze sciekow1
ćw 7 usuwanie fosforu ze ścieków
CHEMICZNE USUWANIE FOSFORU ZE ŚCIEKÓW
Usuwanie fosforu ze ścieków przemysłowych, Studia, Studia II-stopień, Ochrona środowiska, Laboratori
CHEMICZNE USUWANIE FOSFORU ZE ŚCIEKÓW
Poprawa skuteczności usuwania azotu w oczyszczalni ścieków Zürich Werdhöelzli
biologia, biologiczne usuwanie odpadow i sciekow, BIOLOGICZNE METODY USUWANIA ODPADÓW I ŚCIEKÓW
Usuwanie i odzysk?noli ze ścieków przemysłowych w procesie ekstrakcji
Usuwanie fosforu ze ścieków metodą osadu czynnego polega na pobieraniu fosforanów z wody osadowej pr
USUWANIE Z WODY I ZE ŚCIEKÓW ZWIĄZKÓW AZOTOWYCH
Usuwanie metali ze sciekow
Zaawansowane metody udrażniania dród oddechowych

więcej podobnych podstron