Nr. ćwiczenia: 9 | Kamil Gawlik | Nr. grupy: 7 |
---|---|---|
Data wykonania ćwiczenia: 15.05.2013 | Temat ćwiczenia: Fermentacja alkoholowa: Działanie inhibitora w procesie fermentacji. Wpływ temperatury na natężenie oddychania. |
Zaliczenie: |
Data oddania sprawozdania: 22.05.2013 |
Definicje:
Fermentacja – proces beztlenowych przemian enzymatycznych związków chemicznych (przede wszystkim zawierających grupę hydroksylową), których efektem jest uzyskanie energii, najczęściej pod postacią ATP. Wyróżniamy:
fermentacja alkoholowa- proces rozkładu węglowodanów pod wpływem enzymów wytwarzanych przez drożdże z wytworzeniemalkoholu etylowego i dwutlenku węgla:
C6H12O6 → 2C2H5OH + 2CO2
Metody badania natężenia fotosyntezy:
1)Ilość zużytego substratu (glukoza):
Płyn fehlinga (spektrofotometr)
Polarymetr
Refraktometr (sacharoza)
2)Ilość wydzielonego produktu (CO2):
Wagowa (2 filtry H2SO4- pochłania parę wodną, CaCl2-pochłania wodę z otoczenia)
3)Ilość etanolu:
Destylacja
Piknometr
Wapno palone
Rachunkowa
Oddychanie tlenowe- jest procesem katabolicznym polegającym na enzymatycznym rozkładzie złożonych związków organicznych na związki proste z wydzieleniem energii. Jest to proces złożony, zależny od obecności tlenu. Pobierany jest O2, wydzielany CO2.
Oddychanie dzielimy na 4 etapy:
1. Glikoliza_ zachodzi w cytoplazmie , jest to rozkład sacharozy z udziałem inwertaz do glukozy i fruktozy. Aby rozpocząć glikolizę musi być dostarczona energia w postaci ATPx2. Końcowym produktem glikolizy jest pirogronian. U roślin może występować szlak jabłczanowy, który odróżnia rośliny od zwierząt. Jest on preferowany gdy istnieje duże zapotrzebowanie na tlen. PEP jest wtedy przekształcany w jabłczan i szybciej transportowany do mitochondrium.
2. Oksydacyjna dekarboksylacja pirogronianu -zachodzi w matrix mitochondrium, powstaje acetylo-CoA i NADH
3. Cykl Krebsa (cykl kwasu cytrynowego)- w matrix mitochondrium. Zachodzą tu reakcje dehydrogenacji (odłączenia H2) i dekarboksylacji (odłączenie CO2), miejscem w którym tworzy się ATP jest przejście bursztynylo-CoA w bursztynian
4. Łańcuch oddechowy -w wewnętrznej błonie mitochondrium. Składa się z wielobiałkowych kompleksów biorących udział w przenoszeniu elektronów z różnych substratów na O2.
Czynniki wpływające na intensywność oddychania:
Temperatura:
ok. OOC proces oddychania jest spowolniony
wraz ze wzrostem temperatury intensywność procesu oddychania zwiększa się;
34 – 40OC – spowolnienie intensywności procesu oddychania
50OC – proces oddychania spada, ponieważ enzymy ( czyli białka ) ulegają denatunacji;
jeżeli temperatura przez dłuższy czas wynosi ponad 30OC to proces oddychania przebiega na takim samym poziomie.
Ilość tlenu:
w niskiej ilości tlenu intensywność procesu oddychania jest słaba
proporcjonalnie do zwiększania się stężenia tlenu wzrasta intensywność procesu oddychania;
gdy stężenie tlenu jest już bardzo wysokie, na optymalnym poziomie, to mimo to, proces oddychania nie wzrasta
stężenie O2 na ziemi wynosi 21 %
niedostatek O2 w glebach ciężkich spowalnia proces oddychania i prowadzi do jego zaniku
niedostatek tlenu prowadzi do fermentacji alkoholowej i powstania alkoholu – jest to proces końcowy.
Ilość wydzielonego CO2
zwiększone stężenie CO2 obniża i hamuje proces oddechowy
ilość CO2w atmosferze nie przeszkadza intensywności oddechowej
zwiększona ilość CO2 wykorzystywana jest do przechowywania owoców i warzyw w chłodniach
Woda
Nasiona suche, z małą ilością H2O ( 10-12 % ) mają proces oddychania spowolniony, gdy dostarczy się jej więcej enzymy zostają uwolnione, podnosi się temperatura i wzrasta intensywność procesu oddychania.
Światło
promieniowanie niebieskie zwiększają oddychanie ciemniowe – mitochondrialne,
w ciągu dnia podczas fotosyntezy pierwsze etapy procesu oddychania tlenowego są zahamowane; w niektórych roślinach zachodzi fotorespiracja ( wydzielenie CO2 i pochłanianie O2 ); zachodzi ona w 3 miejscach :
- mitochondriach
- chloroplastach
- peroksysomach
Inhibitory oddychania:
Glikolizy:
Jony fluorkowe- inhibitor enolazy,
Kwas jodooctowy- inhibitor dehydrogenazy aldehydu 3-fosfoglicerynowego,
Cyklu Krebsa:
Fluorooctan- inhibitor przejścia cytrynianu w cis-akonitan,
Arsenian- inhibitor dehydrogenazyα-ketoglutaranowej,
Kwas Malanowy (malonian)- inhibitor dehydrogenazy bursztynianowej,
Transport elektronów:
Cyjanki- blokada oksydazy cytochromowej,
Tlenki węgla- blokada oksydazy cytochromowej,
Rotenon- zatrzymuje przenoszenie elektronów z kompleksu I na ubichinon poprzez zablokowanie miejsca wiązania ubichinonu,
Ćwiczenie 1.
Działanie inhibitora w procesie fermentacji.
Sporządzono 100ml 10% roztworu glukozy i 200ml 25% zawiesiny drożdży w wodzie destylowanej. W zlewkach przygotowano po 120ml roztworów:
-40ml zawiesiny drożdży i 80ml wody destylowanej,
-40ml zawiesiny drożdży, 40ml roztworu glukozy i 40ml wody destylowanej
-40ml zawiesiny drożdży, 40ml roztworów glukozy i 40ml NaF.
Następnie rozlano do próbek i umieścić w temp. 37 stopni.
Wyniki:
Rodzaj roztworu | Długość pęcherzyka [mm] |
---|---|
10min | |
A | 0 |
B | 24 |
C | 0 |
Wnioski:
Glukoza jest substratem w procesie fermentacji alkoholowej. Jest ona ważna w celu zajścia glikolizy i powstania dwóch cząsteczek pirogronianu. Fermentacja alkoholowa zaszła jedynie w próbce B ponieważ był tam substrat i organizm zdolny do jej przeprowadzania. W próbce A nie znajdował się substrat a w próbce C znajdował się inhibitor czyli jony fluorkowe. Jony fluorkowe blokują fermentacje alkoholową na poziomie glikolizy hamując działanie enolazy, Jony fluorkowe blokują przyłączenie substratu tworząc w miejscu aktywnym kompleks z jonami magnezu inaktywując w ten sposób działanie enzymu.
Ćwiczenie 2.
Wpływ temperatury na natężenie oddychania.
Przygotowano cztery woreczki ze zbożem 5g każdy oraz pięć erlenmajerek z 25ml wodorotlenku baru i kilkoma kroplami fenoloftaleiny. Po 10 minutowej adaptacji w odpowiednich temp.: 2, 20, 37 i 60 stopni umieszczono nasiona zboża w środku kolb. Po godzinie miareczkowano dwa razy po 10ml wody barytowej roztworem HCl aż do uzyskania zmiany barwy z malinowego na cebulkowy.
Wyniki:
Próba: | Próba I [mm] | Próba II [mm] | Średnia [mm] |
---|---|---|---|
Kontrola | 9,2 | 9,2 | 9,2 |
2 stopni C | 7,6 | 7,6 | 7,6 |
20 stopni C | 6,7 | 6,3 | 6,5 |
37 stopni C | 4,5 | 4,6 | 4,55 |
60 stopni C | 4,7 | 4,6 | 4,65 |
1 M – 1000 mM
197 g/dm3 – 1000 mM [1M]
X – 10 mM
X= 1,97 g/dm3
1,97 g – 1000 ml
X – 1 ml
X= 0,00197 g/ml
1 M BaCO3- 197g
1 M CO2- 44g
197g BaCO3 - 44g CO2
0,00197 g BaCO3 - x
X=0,00044 g/ 1000 ml CO2
Kontrola:
9,2 ml HCl– 10 ml 10mM Ba(OH)2
X - 25 ml 10mM Ba(OH)2
X= 23 ml 20mM HCl
25 ml 10mM Ba(OH)2 - 23 ml HCl = 2 ml BaCO3
2ºC:
7,6 ml HCl– 10 ml 10mM Ba(OH)2
X - 25 ml 10mM Ba(OH)2
X= 19 ml 20mM HCl
25 ml 10mM Ba(OH)2 - 19 ml HCl = 6 ml BaCO3
6 ml BaCO3 - 2 ml BaCO3 = 4 ml BaCO3
4 ml BaCO3 * 0,00197 g/ml BaCO3 = 0,00788 g/ ml
1 M BaCO3 – 197 g
X – 0,00788 g
X= 0,00004 M BaCO3
1 M CO2 – 44 g
0,00004 M BaCO3 – x
X CO2 = 0,00176 g = 1,76 mg
1,76 mg – 5 g rośliny
X – 1 g rośliny
X= 0,352 mg CO2 / 1g / 1h
POZOSTAŁE OBLICZENIA ZOSTAŁY WYKONANE ANALOGICZNIE.
Kontrola
X= 0,176mg CO2 / 1g / 1h
20ºC
X= 0,594 mg CO2 / 1g / 1h
37ºC
X= 1,023 mg CO2 / 1g / 1h
60ºC
X= 1,001 mg CO2 / 1g / 1h