Ramięga Tomasz Data wykonania: 22.10.08
Kopciara Marcin ŚRODA
Świątczak Piotr godz. 1515-1900
BIOTECHNOLOGIA ŚRODOWISKA
LABORATORIUM
ĆWICZENIE NR 3
„BIODEGRADACJA BIAŁEK”
Wstęp:
Odpady białkowe z przemysłu stanowią spory problem dla ich wytwórców. Białka z przemysłu mleczarskiego czy ubojni mogą być degradowane do niskocząsteczkowych peptydów czy aminokwasów na drodze różnych reakcji chemicznych jak hydroliza kwasowa wymagająca dużych nakładów energii i odczynników lub za pomocą metod ekologicznych. Tu z pomocą przychodzą człowiekowi drobnoustroje. Wytwarzane przez nie hydrolazy peptydowe rozszczepiają wiązania peptydowe (występujące między aminokwasami, łączy grupę α-aminową jednego aminokwasu z grupą α-karboksylową drugiego aminokwasu) rozkładając białko do mniejszych podjednostek. W wielu krajach na świecie stosuje się podczyszczanie takich ścieków z przemysłu metodą osadu czynnego, w którym bytują mikroorganizmy żywiące się zanieczyszczeniami. Jest to tani i bardzo efektywny sposób utylizacji tych odpadów. W wypadku gdy ścieki zawierają duże ilości białka (np., kazeiny i hemoglobiny) ważne jest by w osadzie bytowały drobnoustroje wytwarzające enzymy o dużym powinowactwie do tych zanieczyszczeń.
W oznaczeniach będziemy używać proteinazy serynowej Bacillusi subtilis . Jest to enzym o bardzo szerokiej specyficzności substratowej co sprawia, że można go zastosować do degradacji zróżnicowanych zanieczyszczeń białkowych.
Wykonanie oznaczenia:
Wykonane przez nas ćwiczenie miało na celu wyznaczenie dynamiki reakcji hydrolizy kazeiny zawartej w ściekach z mleczarni i hemoglobiny zawartej w ściekach z zakładu mięsnego.
Nasza grupa zajmowała się ściekami z mleczarni, czyli oznaczaliśmy prędkość rozkładu kazeiny.
Do kolby stożkowej dodaliśmy 20ml ścieków mleczarskich o pH początkowym 9.0 skorygowanym za pomocą 0.05 N NaOH i umieściliśmy ją w łaźni wodnej o temperaturze 37ºC. Po 3 min. do kolbki dodaliśmy 1ml odpowiednio rozcieńczonego enzymu proteolitycznego- proteinazy serynowej Bacillus subtilis. Po 0, 15, 30, 45 minutach od momentu dodania enzymu pobieraliśmy po 1ml mieszaniny reakcyjnej celem oznaczenia z odczynnikiem Folina.
Wykonanie oznaczenia z odczynnikiem Folina:
Proteinaza serynowa - subtylizyna uwalnia z kazeiny mleka krótkie peptydy, rozpuszczalne w roztworze kwasu trójchlorooctowego, które oznacza się ilościowo w reakcji z odczynnikiem Folina.
Do 1ml mieszaniny reakcyjnej pobranej wcześniej w odpowiednim czasie dodaliśmy 2ml 5% roztworu CCL3COOH, służącego do odbiałczenia roztworu. Dokładnie wymieszaliśmy i pozostawiliśmy na 30 minut w temperaturze pokojowej, po czym przesączyliśmy przez sączki z bibuły. Pobraliśmy 1ml klarownego przesączu i dodaliśmy 2ml 0.6 N NaOH oraz 0.6ml odczynnika Folina (1:2), całość wymieszaliśmy. Po 10 minutach oznaczyliśmy absorbancję przy długości fali 690nm wobec próby, która zawierała 1ml wody zamiast badanej mieszaniny reakcyjnej. Wyniki umieściliśmy w tabeli poniżej.
Tabela 1. Wyniki pomiarów
Czas inkubacji [min] |
Ścieki [ΔE] |
|||
|
ubojnia |
mleczarnia |
||
0 |
0,27 |
0,19 |
0,15 |
0,12 |
|
0,34 |
0,22 |
0,01 |
0,05 |
15 |
0,62 |
0,69 |
0,28 |
0,25 |
|
0,71 |
0,64 |
0,20 |
0,17 |
30 |
1,00 |
1,10 |
0,30 |
0,29 |
|
1,05 |
1,05 |
0,28 |
0,25 |
45 |
1,25 |
1,50 |
0,42 |
0,40 |
|
1,4 |
1,70 |
0,35 |
0,35 |
Tabela 2. Wyniki uśrednione, z których wykonano wykres (wyniki po odrzuceniu skrajnych wartości)
Czas inkubacji [min] |
Ścieki [ΔE] |
|
|
ubojnia |
mleczarnia |
0 |
0,26 |
0,09 |
15 |
0,69 |
0,21 |
30 |
1,05 |
0,29 |
45 |
1,38 |
0,37 |
Obliczenia:
Z wyników otrzymanych powyżej obliczamy wartości ΔE690 potrzebne do utworzenia wykresu obrazującego kinetykę reakcji. Obliczamy ze wzoru:
Gdzie:
oznacza absorbancję po czasie n minut
oznacza absorbancję na początku procesu
Wyniki obliczeń wykonanych w arkuszu zamieszczam w tabeli 3.
Tabela 3. Wyniki do wykresu zależności ΔE690 od czasu.
Czas inkubacji [min] |
ΔE690 |
|
|
ubojnia |
mleczarnia |
15 |
0,44 |
0,12 |
30 |
0,80 |
0,21 |
45 |
1,13 |
0,28 |
Wykres obrazujący kinetykę reakcji:
Wnioski:
Z wykresu wynika, że użyty do oznaczeń preparat enzymatyczny wykazuje większe powinowactwo do hemoglobiny niż kazeiny. Wykresy wskazują na stały przyrost produktów hydrolizy w czasie wykonywania oznaczeń.