ĆWICZENIE 3
FUNKCJE FIZJOLOGICZNE ORGANIZMÓW: FOTOSYNTEZA I CHEMOSYNTEZA
Zad.1. Oznaczenie współczynnika fotosyntezy AQ w warunkach świetlnych i ciemnych.
Próba ciemna:
Przebieg ćwiczenia: Napełniamy butelkę wodą tak, aby przy zamykaniu korkiem wylewała się, po otwarciu butelki, dodajemy pipetą pod powierzchnię cieczy 1 cm3 r-u siarczanu manganawego i 1 cm3 alkalicznego r-u jodku potasowego, zamykamy butelkę i mieszamy. Odstawiamy na 30 min w ciemne miejsce. Dodajemy 1 cm3 kwasu siarkowego, zamykamy mieszamy do całkowitego rozpuszczenia osadu, do kolbki stożkowej wlewamy 50 cm3 płynu, miareczkujemy (tiosiarczanu sodu) do odbarwienia.
Obliczamy zawartość tlenu ze wzoru: ilość O2 [mg] = a · 0,2 · 10, gdzie:
a - objętość tiosiarczanu sodu zużytego do miareczkowania,
0,2 - liczba mg O2 odpowiadająca 1 cm3 0,025 n r-u tiosiarczanu sodu,
10 - stosunek objętości wody w butli (1000 cm3) do objętości próby badanej
(100cm3).
Ponieważ użyliśmy butelek o V = 50 cm3, należy zmniejszyć o połowę objętości wszystkich odczynników i odpowiednio zmodyfikować wzór. Po zmianie wzoru wyszły następujące wyniki:
Próba jasna |
Próba ciemna |
||
O2 |
1,7 2,0 |
O2 |
5,5 2,4 |
|
1,4 0,6 |
|
0,8 0,4 |
Wnioski:
Istnieje wyraźna różnica pomiędzy ilością tlenu pomiędzy dwoma butelkami. W próbce badanej zawartość tlenu jest wyraźnie niższa.
Tlen rozpuszczany w H20 utlenia w środowisku alkalicznym wodorotlenek Mn(II) do Mn(IV). W środowisku kwaśnym jony Mn IV utleniają jony jodkowe w ilości równoważnej zawartości tlenu w wodzie.
Zad. 2.
Próba ciemna:
Przebieg ćwiczenia: Napełniamy butelkę wodą z moczarki tak, aby przy zamykaniu korkiem wylewała się, po otwarciu butelki, dodajemy pipetą pod powierzchnię cieczy 1 cm3 r-u siarczanu manganawego i 1 cm3 alkalicznego r-u jodku potasowego, zamykamy butelkę i mieszamy. Odstawiamy na 30 min w ciemne miejsce. Dodajemy 1 cm3 kwasu siarkowego, zamykamy, mieszamy do całkowitego rozpuszczenia osadu, do kolbki stożkowej wlewamy 50 cm3 płynu, miareczkujemy (tiosiarczanu sodu) do odbarwienia.
Obserwacje: osad opadł na dół, po dodaniu kwasu siarkowego zabarwienie zmieniło się na żółte, zniknął osad. Po miareczkowaniu doszło do odbarwienia, przezroczysta zawartość kolby stożkowej.
Wnioski:
Zad.3.
Przebieg ćwiczenia: W probówce umieszczamy białko ugotowanego jajka, przysypujemy osadem dennym. Odkładamy na 14 dni.
Obserwacje:
Wnioski:
Oznaczanie CO2
Zad.4. Wykrywanie aktywności nitryfikacyjnej bakterii wodnych i glebowych.
Przebieg ćwiczenia: Do probówki z pożywką mineralną Winogradskiego dla I fazy (zawierającą kationy amonowe) wprowadzić osad czynny. Tak samo zaszczepić pożywkę Winogradskiego dla II fazy (zawierającą azotyny). Inkubujemy przez 14 dni w temp. pokojowej. Po inkubacji badamy obecność produktów nitryfikacji I fazy (azotynów) i II fazy(azotanów) oraz zanik substratów w odpowiednich probówkach.
Wykrywanie azotynów:
Na szkiełko zegarkowe nanosimy pipetą 0,2 cm3 hodowli, dodajemy : 0,1 cm3 r-u kwasu sulfanilowego i 0,1 cm3 r-u α- naftyloaminy (odczynnik Griessa).
Obserwacje: Brak zmiany zabarwienia
Wnioski: Ćwiczenie się nie powiodło; w przypadku obecności azotynów powinno pojawić się czerwono - amarantowe (do brunatnego) zabarwienie.
Wykrywanie kationów amonowych:
Na szkiełko zegarkowe nanosimy 0,2 cm3 odczynnika Nesslera, dodajemy 0,2 cm3 badanej hodowli i mieszamy.
Obserwacje: Brak zmiany koloru.
Wnioski: Ćwiczenie nie powiodło się. Pojawienie się żółtopomarańczowego do czerwonobrunatnego zabarwienia świadczy o obecności kationów amonowych