dria tubulamć) o mniej więcej równomiernym świetle; ten kształt grzebieni mają mitochondria riielttórych pierwotniaków i tkanek steroidotwórezydi u kręgowców.
r Liczebność grzebieni, mitochondriąinych jest proporcjonalna do intensywności, oddychania mitochondrialnego i ilości kompleksów łańcucha transportu elektronów. Na przykład iloścgrze-bieni jest bardzo duża w mitochondriąch mięśni kręgowców i owadów, a mała w mitochondriach roślin i wątroby kręgowców. W komórkafch wątroby,. ssaków-dączn^gowreBchmaT grzebieni mitochondriąinych stanowi około 35'a sumy wszystkich błon w tych komórkach, ''
Konfiguracja grzebieni i szerokość przestaerumiędzybłonowej mitochondriów^ zarówno izolowanych, jak i w komórce ulega silnym zmianom zależnie od stanirfunkcjonalnego (rys. 11.3) mitochondrium i osmotyczności środowiska.
Rys. 11.3. Zmiany morfologii mitochondriów przy przejściu od stanu oddechowego spoczynkowego (a) do stanu fosforylującego (b). W tym ostatnim stanie (mitochondria „zenergizowane”) powiększa się przestrzeń miedzybłonoWS a zmniejsza objętość matriks. W (b) widoczne miejsca kontaktowe (styk obu błon)
W matriks mitochondrialnej można też kontrastem pozytywowym wykazać w niektórych przypadkach obecność skupień mtDNA, rybosomów mitochondriąinych oraz złogów amorficznych i krystalicznych różnego charakteru i pochodzenia.
Metody kontrastowania negatywowego całych mitochondriów udzielają innego typu informacji o ich strukturze. Użycie izotonicznego roztwom molibdenianu amonu uwidacznia, że ta substancja kontrastująca przenika swobodnie do przestrzeni międzybłonowej ale nie do matriks mitochondrialnej i przez to odtwarza obraz pofałdowania wewnętrznej błony mitochondrialnej oraz zarys gładkiej błony zewnętrznej. ,
Natomiast użycie hipotonicznego względem mitochondriów roztworu fosforowolfnunianu wprowadza substancjękontrastującąprzez pękającą wtedy błonę wewnętrzną do matriks i ujawnia obecność w tej błonie eksponowanych ku matriks licznych buławkowatych cząstek o średnicy dkoło 9 nm i o zagęszczeniu do kilku tysięcy na pm2 (rys. 11.2). Cząstki te są odpowiednikiem katalitycznej części (Fj) kompleksu ATPazy mitochondrialnej'. Widzialnoić tych^cząstek jest ważnym kryterium orientacji przestrzennej fragmentów wewnętrznej błony mitochondrialnej i powstających w niej cząstek submitochondrialnych (patrz dalej).'........
Technika zamrażania-rytowania (patrz rozdz. 1) ujawnia w obu błonach mitochondriąinych proporcje domen zajmowanych przez lipidy i kompleksy białkowe (rys. 11.2). Te ostatnie przedstawiają na cieniowanych replikach globulame cząstki o średnicy okT 5 nm, zajmujące 12-35% powierzchni. Liczebność ich jcst przeważnie różna przy każdym liGu-hyffiblobów^ Każdejz'błoii; stą3 wnioskujerriy o asymetrii rozmieszczenia białek błonowych. Rozmieszczenie i zagęszczenie^ lokalne tych cząstek w płaszczy^źnie_hłonjfist_odbiciem stanu funkcjonalnego 0iitochondrium.Jechhikala7est bardzo użyteczna przy lokalizowaniu miejsc kontaktowych, tj. miejsc, w których obie błony mitochondrialne są w maksymalnym zbliżeniu.
TabeJa 11.1. Skład i funkcje błon oraz przestrzeni mitochondriąinych
Błona mitochondrialna ze-| wnętrzna |
Przestrzeń mię-d2ybłonowa |
Błona mitochondrialna wewnętrzna |
Matriks |
0- |
B |
i |
M |
i Mono-amino oksydaza- |
kinazy nukleotydo-we, np. aaenilanowa, kreatynowa |
składniki łańcucha oddechowego: dh kw. bursztynowego* |
kompleks dehydrogenazy 1 pirogromanowej 1 |
NADHdh (niewrażliwa na rotenon) |
dh NADH wrażliwa na rotenon |
cykl kwasów trójkar- , boksylowyćh ] | |
! Cytochrom b$ |
dh NADH niewrażliwa na rotenon** |
dh glutaminianowa i | |
Elongacja kwasów tłuszczowych (synteza acylo-CoA) |
difosfokinaza nukleozydowa |
koenzym Q cytochromy b, c\, c, oaz |
dh asparaginianowa 1 utlenianie kwasów tłuszczowych |
Desatumcja kwasów tłuszczowych |
oksydaza cytochromowa* |
cykl mocznikowy | |
Synteza fosfolipidów (?) |
oksydaza alternatywna niewrażliwa na KCN** |
pula NAD(H) | |
Poryna* |
generacja |
pula nukleotydów | adeninowych ! enzymy importu 1 białek chaperony i metalopeptydazy 1 | |
transhydrogenaza |
mt. rybosomy 1 | ||
Miejsca kontaktowe |
FoFiATPaza (syntetaza ATP) |
genom (mtDNA) 1 | |
c |
fosforylacja oksydacyjna |
replikacja i | |
Receptory importu białek |
przenośniki metabolitów, Na+ i K+ |
transkrypcja 1 | |
Kompleks TOM |
przenośniki Ca2+ |
translacja \ | |
Heksokinaza II |
acylotransferaza karnitynowa (transport kwasów tłuszczowych) | ||
kompleks TIM kanał anionowy (IMAĆ) | |||
L____ |
kanał K+atp |
Topografia błon i przestrzeni oraz odpowiednie symbole literowe (O, B, I, M, C) jak na rys. 11.4. ^enzymy i inne białka markerowe; w mitochondriach roślin i Protistcr, mitochondrialny, dh — dehydrogenaza
149