dria tubułamć) o mniej więcej równomiernym świetle; ten kształt grzebieni mają mitochondria niektórych pierwotniaków i tkanek: steroidotwórczych u kręgowców.
r Liczebność grzebieni.mitochondriąinych jest proporcjonalna dq_ intensywności oddychania mitochoridrialnego i ilości kompleksów łańcucha transportu elektronów. Na przykład ilo.ść grze-
bieni jest bardzo duża w mitochondriach mięśni kręgowców i owadów, a mała w mitochondriach roślin i wątroby kręgowców. W komórkafch wątroby. ssaków łącznajpgwdeiichnia gfzebiem mitochondrialnych stanowi około 35% sumy wszystkich błon w tych komórkach.
Konfiguracja grzebieni i szerokość przestrzeni międzybtonowej mitochondrióWi zarówno izolowanych, jak i w komórce ulega silnytn zraianom zależnie od stanrrfunkcjonalnego (rys. 11.3.) mitochondrium i osmotyczności środowiska.
Rys. 11.3. Zmiany morfologii mitochondriów przy przejściu od stanu oddechowego spoczynkowego (a) do stanu fosforylującego (b). W tym ostatnim stanie (mitochondria „zenergizowane”) powiększa się przestrzeń miedzybfonoWS a zmniejsza objętość matriks. W (b) widoczne miejsca kontaktowe (styk obu bion)
W matriks mitochondrialnej można też kontrastem pozytywowym wykazać w niektórych przypadkach obecność skupień mtDNA, rybosomów mitochondrialnych oraz złogów amorficznych i krystalicznych różnego charakteru i pochodzenia.
Metody kontrastowania negatywowego całych mitochondriów udzielają innego typu informacji o ich strukturze. Użycie izotonicznego roztworu molibdenianu amonu uwidacznia, że ta substancja kontrastująca przenika swobodnie do przestrzeni międzybłonowej ale nie do matriks mitochondrialnej i przez to odtwarza obraz pofałdowania wewnętrznej błony mitochondrialnej oraz zarys gładkiej błony zewnętrznej. ,
Natomiast użycie hipotonicznego względem mitochondriów roztworu fosforowolframianu wprowadza substancję kontrastującą przez pękającą wtedy błonę wewnętrzną do matriks i ujawmii obecność w tej błonie eksponowanych ku matriks licznych buławkowatych cząstek o średnicy dkoło 9 nm i o zagęszczeniu do kilku tysięcy na pm2 (rys. 11.2). Cząstki te są odpowiednikiem katalitycznej części (Fj) kompleksu ATPazy mitochondrialnej. Widzialnó.fćtycb“óZĘStek jest ważnym kryterium "orientacji przestrzennej-fragmęntów7Vvewnętrznej błony mitochondrialiig i powstających w niej cząstek submitocliondrialnych (patrz dalej).'
Technika zamrażania-rytowania (patrz rozdz. 1) ujawnia w obu błonach mitochondrialnych proporcje domen zajmowanych przez lipidy i kompleksy białkowe (rys. 11.2). Te ostatnie przedstawiają na cieniowanych replikach globulame cząstki o średnicy oŁ 5 nm, zajmujące 12-35% powierzchni. Liczebnoś^ k^jwt jj^eważnie różn^pizy kaŻdym liGuriTydrbTóbbwegó^wnętfza każdej^rbłotirsfąd wnroskujemy o asymetrii rozmieszczenia białek błonowych. Rozmieszczenie i zaggszgzeaie lokalne tych cząstek w płaszczyźnie Mon .jest odbiciem stanu Funkcjonalnego nńtochondriumrjecRriiFalaTest bardzo użyteczna przy lokalizowaniu miejsc kontaktowych, tj. miejsc, w których obie błony mitochondrialne są w maksymalnym zbliżeniu.
Tabela 31,1. Skład i funkcje błon oraz przestrzeni mitochondrialnych
| Błona mitochondrialna żeli wnętrzna |
Przestrzeń mię-d2ybłonowa |
Błona mitochondrialna wewnętrzna |
Matriks | |
1_____o_ |
_Ey |
i |
M I |
1 Mono-amino oksydaza' |
kinazy nukleotydo-we, np. aaenilanowa, kreatynowa |
składniki łańcucha oddechowego: dh kw. bursztynowego* |
kompleks 1 dehydrogenazy [ pirogromanowej | |
I NADHdh (niewrażliwa na | rotenon) |
dh NADH wrażliwa na rotenon |
cykl kwasów trójkar- | boksytowych U | |
1 Cytochrom bs |
dh NADH niewrażliwa na rotenon** |
dh glutaminianowa | | |
| Elongacja kwasów tłuszczo- f wych j (synteza acylo-CoA) |
difosfokinaza nukleozydowa |
koenzym Q cytochromy b, ci, c, aai |
dh asparaginianowa | utlenianie kwasów | tłuszczowych i |
1 Desaturacja kwasów | tłuszczowych |
oksydaza cytochromowa* |
cykl mocznikowy | | |
I Synteza fosfolipidów (?) |
oksydaza alternatywna niewrażliwa na KCN** |
pulaNAD(H) 1 | |
1 Poryna* |
generacja |
pula nukleotydów J adeninowycn | enzymy importu I białek | chaperony ] metalopeptydazy I | |
transhydrogenaza |
rat. rybosomy J | ||
1 Miejsca kontaktowe |
FoFiATPaza (syntetaza ATP) |
genom (mtDNA) | | |
!___c_ |
fosforylacja oksydacyjna |
replikacja J | |
[ Receptory importu białek |
przenośniki metabolitów, Na+ i K+ |
transkrypcja I | |
[ Kompleks TOM |
przenośniki Ca2+ |
translacja | | |
j Heksokinaza II |
acylotransferaza kamitynowa (itransport kwasów tłuszczowych) | ||
kompleks TIM kanał anionowy (IMAĆ) kanał K+atp |
Topografia błon i przestrzeni oraz odpowiednie symbole literowe (O, B, I, M, C) jak na rys. 11.4. enźymy i inne białka markerowe;
W Kutochondriach roślin i Protista; mfc-= mitochondrialny, dh — dehydrogenaza
149