Obrazek 0003(3)

i inkubuje w cieplarce. Wzrost drobnoustrojów świadczy o nieskuteczności procesu sterylizacji.

•S

WSKAZÓWKA

Użycie sporali jest najpewniejszą metodą kontroli urządzeń!

i

Obecnie, z metod chemicznych badania procesu sterylizacji najpopularniejsze jest stosowanie taśm, które są przyklejane w różnych miejscach sterylizowanych opakowań. Zmieniają one zabarwienie po osiągnięciu przez aparat właściwej temperatury. Jest to metoda nieprecyzyjna, jednakże mało kosztowna i możliwa do codziennego stosowania.

Innym sposobem jest użycie tzw rurek Browna. Są to szklane rurki zawierające odczynniki chemiczne zmieniające zabarwienie pod wpływem temperatury

■    rurki ze znakiem czarnym są stosowane dla temperatur < 126°C (para pod ciśnieniem)

■    rurki ze znakiem żółtym są stosowane dla temperatur > 130‘C (para pod ciśnieniem)

■    rurki ze znakiem zielonym są stosowane dla temperatur 160^r'C (suche gorące powietrze)

» rurki ze znakiem niebieskim są stosowane dla kontroli sterylizacji w podczerwieni

Tabela 1

Metody sterylizacji na gorąco

l Czynnik I sterylizujący l _ ____ _____________	Parametry stosowane w praktyce	i Urządzenie	Nazwa metody	Zastosowanie \ 1
; Bardzo wysoka j temperatura ^!	~600°C ^! . i	Palnik I	Wyżarzanie !	ezy | bakteriologiczne ;
Bardzo wysoka ; ,c temperatura j		I Palnik ■i	1 Opalanie j	wloty kolbek, ] probówek, pipety, j bagietki, itp. j
„suche gorąco" wysoka temperatura	160^cC/2h 180°C/1h	j Suszarka	| Sterylizacja „na sucho"	szkło laboratoryjne, | ! jednorodny sprzęt (skalpele, waciki I do wymazów, itp.) j
^: „wilgotne gorąco" para nasycona pod ciśnieniem. . 0.08-0,1 MPa	i iwcns' 121°C/15' I i i . ...	Autoklaw I !	Sterylizacja „na mokro"	podłoża bakteriologiczne, i płyny do rozcieńczeń, | j zestawy złożone j i z materiałów o różnej i rozszerzalności j ciepinej _
„wilgotne gorąco" :_para bieżąca	i 100°C/30' ; Aparat Kocha		Sterylizacja frakcjonowana	1 niektóre podłoża j j lub składniki

(tyndaiizacja) ~*1 podłóż

j bakteriologicznych ]

Tabela 2

Metody sterylizacji na zimno

Proces	Urządzenie	Parametry	Zastosowanie
Sączenie przez filtry .......!	Membranowe z octanu celulozy lub innych polimerów Seitza - azbestowo-celulozowy * Berkefelda - z ziemi okrzemkowej * • Chamberlanda - z riieglazurowanej porcelany * Schotta - ze sproszkowanego szklą *	1 Wielkość por 0,2 - 0,45pm	sterylizacja roztworów cukrów, enzymów, witamin, płynów ustrojowych (składowe podłoży, wrażliwe na czynnik termiczny)
Promieniowanie! UV	Lampy kwarcowe j	Długość fali 250 - 260nm	jałowienie powierzchni roboczych, powietrza
Promieniowanie i jonizujące i	Bomby kobaltowe Akceleratory liniowe	Dawka promieniowania 0,1 -50 kGy **	sterylizacja przypraw, konserwowanie owoców, hamowanie kiełkowania cebuli i ziemniaków

‘praktycznie nie używane

*⁴kGy - (kilo) Gray- jednostka promieniowania pochłoniętego

ĆWICZENIA

ĆWICZENIE 1

TEMAT: ĆWICZENIE DEMONSTRACYJNE

Cel: Zapoznanie studentów z zasadami postępowania,

wyposażeniem i metodami pracy w pracowni mikrobiologicznej

Zasady BHP na zajęciach z mikrobiologii

1.    Zwiedzanie pracowni bakteriologicznej

2. Demonstracja szkła laboratoryjnego, sprzętu i aparatury charakterystycznej dla; pracowni mikrobiologicznej

3. Demonstracja przygotowania szkła i sprzętu laboratoryjnego do sterylizacji; (przygotowywanie korków do kolb, probówek; zatykanie i pakowanie pipet, pakowanie; płytek, pipet, bagietek, itp.)

4.    Demonstracja działania suszarki

5.    Demonstracja zestawów do filtracji; sposób przygotowania jałowego sprzętu

6.    Demonstracja działania autoklawu i aparatu Kocha