służących do tego celu (w Finlandii Rotstop, w Polsce PG-IBL, PG-Fungler, i in., w Anglii byl to PG Suspension).
Inne biopreparaty, które znalazły zastosowanie głównie w ochronie roślin przed chorobami odglebowymi, to Dygali, Nogali, Galltrol, Norbac i polski Po* lagrocyna (seria preparatów opartych na bakterii Agrobacterium radiobacter, szczep K 84 lub K. 1026) do ochrony korzeni sadzonek drzew przed guzowatością korzeni, oraz grupa biopreparatów do ochrony roślin ogrodniczych przed grzybami glebowymi powodującymi zgnilizny korzeni i więdnięcia: Mycostop (oparty na promieniowcu Streptomyces griseo-viridis), Conąueror i Dagger (oparte na bakterii Pseudomonas fluorescens), Trichodermin. Trichodex 25 \VP, Binap, F-stop (oparte na grzybach rodzaju Trichoderma) oraz inne.
i
Większość niepowodzeń prac nad biologiczną ochroną roślin przed chorobami w drugim etapie tych prac wynikała z niewystarczającego uwzględnienia środowiska rośliny-gospodarza, a przede wszystkim jednej z podstawowych zasad biologiczno-ekologicznych, w myśl której zbiorowisko organizmów występujące w danym środowisku odzwierciedla ogół jego czynników ekologicznych. Wraz ze zrozumieniem i uwzględnieniem w badaniach tej zasady zaczął się trzeci etap rozwoju metody biologicznej ochrony.
Etap ten można wiązać z inicjatywami badawczymi trwającymi do dziś. Już w 1921 r. Hartley zwrócił uwagę, że wprowadzenie do gleby świeżej, zielonej materii organicznej zmienia równowagę mikrobiologiczną tego środowiska, co z kolei może mieć wpływ na występowanie chorób korzeni roślin. W związku z tą hipotezą i wykazaniem jej słuszności Fawcett (1931) zachęcał do badania wpływu mieszanin mikroorganizmów o znanym składzie na organizmy fitopatogeniczne.
W celu zwiększenia możliwości biologicznej ochrony roślin przed chorobami rozwinął się w Polsce kierunek badawczy uwzględniający zarówno zbiorowiska (zespoły) mikroorganizmów o znanej strukturze ilościowo-jakościowej, jak i odnoszące się do tych zbiorowisk środowisko rośliny-gospodarza, a opierający się na metodzie szeregów biotycznych. Praca tą metodą dzieli się na dwa zasadnicze etapy:
1) wyizolowanie z odpowiedniej części środowiska rośliny-gospodarza (najbliżej narządu, przez który następuje infekcja, w miarę możności w okresie, w którym zwykle dokonuje się zakażenie) wystarczająco kompletnego zbiorowiska mikroorganizmów;
2) ustalenie wpływu całości tego zbiorowiska na rozwój patogena (Mańka 1970, 1974);
3) tworzenie biopreparatów zawierających mikroorganizmy antagonistyczne (Mańka 1975).
Metoda szeregów biotycznych może mieć także szersze zastosowanie, np. do badań fitosocjologicznych w ekosystemach leśnych (Gierczak 1972), śledzenia zmian zachodzących w środowisku przyrodniczym (Mańka 1973) itd., ale głównym powodem, dla którego ona powstała, była chęć dokonania metodycznego postępu w zakresie badania interakcji między patogenem i środowiskiem w obecności rośliny-gospodarza. Taki zaś postęp pociąga za sobą powstanie nowych możliwości pogłębienia podstaw biologicznej ochrony roślin przed chorobami,; W szczególności omawiana metoda umożliwia szybsze i precyzyjniejsze niż do--tąd ujmowanie zmian układów biologicznych powstających w środowisku roi ny-gospodarza, zarówno w następstwie różnych zjawisk naturalnych (wahat klimatyczne, działanie żywiołów itp.), jak i w następstwie sztucznych zabiegi
i działań różnego typu oraz związku tych zmian z zachowaniem się organizmów fitopatogenicznych w stosunku do ich gospodarzy.
Jako przykład zastosowania metody szeregów biotycznych niech posłuży fragment badań Przezbórskiego (1974) przedstawiony w tabelach 4 i 5.
Tabela 4. Wpływ zbiorowiska grzybów wyizolowanego z pniaków sześciu drzewostanów sosnowych w nadleśnictwie Zielonka (oddz. 39d, wiek 30 lat, bór świeży) na rozwój grzybów Heterobasidion tnnosurn i Phlebia gigantea | |||||
Gatunek grzyba |
Często tliwość występo- wania |
Heterobasidion annosum |
Phlebia gigantea | ||
efekt biotyczny | |||||
indywidualny |
ogólny |
indywidualny |
ogólny | ||
Phlebia gigantea |
828 |
+6 |
+4968 |
0 |
0 |
Leptographiion lundbergii |
622 |
+5 |
+3220 |
-1 |
-622 |
Discula pinicola |
244 |
-2 |
-492 |
-5 |
-1230 |
Ceratocystis pHifera |
221 |
-2 |
-442 |
-3 |
-663 |
Basidiomycoiina sp. 1 |
199 |
0 |
0 |
-6 |
-1194 |
Sclerophoma pythiophila |
151 |
-1 |
-151 |
-4 |
-604 |
Stibella subinconspicua |
144 |
-1 |
-144 |
-5 |
-720 |
Dendrophoma euntorpha |
143 |
+4 |
+572 |
-4 |
-572 |
Trichoderma lignorum |
128 |
+8 |
+ 1024 |
+8 |
+ 1024 |
Basidiomycoiina sp. 2 |
III |
0 |
0 |
-6 |
-666 |
Niezarodnikujący |
108 |
+4 |
+432 |
+2 |
+216 |
Cephalosporium acremonium |
83 |
-4 |
-332 |
-6 |
-468 |
Hirschioporus abietinus |
81 |
-3 |
-243 |
-7 |
-567 |
Leptogapliium serpens |
79 |
-2 |
+ 158 |
-5 |
-395 |
Botrylis cinerea |
72 |
+6 |
+432 |
0 |
0 |
Sumaryczny efekt biotyczny |
+8576 |
-6491 |
Tabela 5. Wpływ zbiorowiska grzybów wyizolowanego z pniaków sześciu drzewostanów sosnowych w nadleśnictwie Laski (oddz. 17g, wiek ok. 30 lat, bór świeży) na rozwój grzybów Heterobasidion aiutosum i Phlehiu gigantea
Często tliwość |
Heterobasidion annosum |
Phlebia gigantea | ||
występo- |
efekt biotyczny | |||
wania |
indywidualny |
ogólny |
indywidualny |
ogólny |
629 |
+4 |
+2516 |
0 |
0 |
358 |
0 |
0 |
-4 |
-1432 |
341 |
-2 |
-682 |
-4 |
-1364 |
317 |
-2 |
-634 |
+3 |
+951 |
165 |
+2 |
+330 |
0 |
0 |
145 |
-1 |
-145 |
-4 |
-580 |
105 |
-4 |
-420 |
-6 |
-630 |
99 |
+8 |
+792 |
+8 |
+792 |
76 |
+ 1 |
+76 |
0 |
0 |
61 |
-1 |
-61 |
-3 |
-183 |
61 |
-3 |
-183 |
-3 |
-183 |
53 |
+2 |
+ 106 |
-3 |
-159 |
50 |
-1 |
-50 |
-1 |
-50 |
44 |
-5 |
-220 |
-4 |
-176 |
36 |
-3 |
-108 |
-6 |
-180 |
+ 1317 |
-3194 |
Gatunek grzyba
Phlebia gigantea Heterobasidion annosum Basidiomycoiina sp. 3 Ceratocystis minor Leptographiwu lundbergii Sclerophoma pythiophila Cephalosporium acremonium Trkhoderma lignorum Niezarodnikujący Mortierella isabellina Paecilomyces elegans Penicillium spinulosum Discula brunneotingens Apodphaeria fuscomaculans Ceratocystis piceae
laryczny efekt biotyczny