Analiza Zmian na Poziomie Chromati Cyklu Komórkowym 17
Analiza Zmian na Poziomie Chromati Cyklu Komórkowym 17
Masy cząsteczkowe histonów
Histon |
Masa (kDa] |
HI |
19; 29 |
H2a |
14,0 |
H2b |
13,8 |
H3 |
15,3 |
Barwienie białek w żelu
Spośród wielu metod barwienia białek po SDS-PAGE wybrano najpowszechniej stosowaną metodę barwienia Coomassie Brillant Blue. Histony są białkami wysoce zasadowymi. W związku z tym ich migracja w żelu SDS jest zaburzona - tzn. położenie prążków nie odzwierciedla prawdziwej wielkości białek.
Należy pamiętać o tym, że jakość rozdziału w SDS-PAGE zależy od poprawnego i solidnego wykonania szeregu prostych czynności. Dlatego też, mimo iż technika nie jest skomplikowana, może zajmować sporo czasu, kilkakrotnie więcej niż elektroforeza w żelach agarozowych służąca do rozdziału preparatów DNA.
Przed przejściem do kolejnych etapów doświadczenia, ilość białek we wszystkich analizowanych próbach powinna być taka sama -wystandaryzowana.
Uwaga: jeśli planujemy wykonanie transferu białek warto przygotować żel na poprzednich zajęciach
Wykonanie
1. Po zakończeniu elektroforezy należy rozmontować aparat i delikatnie rozdzielić szyby.
2. Żel umieścić w roztworze utrwalającym i zostawić na kołysce laboratoryjnej na 15 - 30 minut.
3. Następnie usunąć utrwalacz i zalać roztworem barwiącym. Barwić do uzyskania wyraźnych prążków - pozostawienie żelu na dłużej w roztworze utrwalającym (np. na noc) przyspiesza barwienie białek.
4.
5.
Po zabarwieniu żel inkubować w roztworze odbarwiającym do uzyskania prawie przezroczystego tła i wyraźnych prążków białek - od kilku do kilkudziesięciu minut. Żel po odbarwieniu może być długo przechowywany w 10% metanolu. kDa
Oszacować względne ilości “ z białka w poszczególnych
zeskanować wybarwiony __ _
żel białkowy i oszacować ---25
ilości za pomocą programu
(densytometry cznie).
Podczas kolejnej
elektroforezy nakładać Rys 5. Standard zbliżone ilości badanego wielkości-PageRuler białka do każdej studzienki Protein Molecular żelu. Weight Marker