8857685804

8857685804



Analiza Mu RNAi w Gf.I' Kodujących Warianty Histonu HI 13

Analiza Mu RNAi w Gf.I' Kodujących Warianty Histonu HI 13

Co 1-0    -RT H1 RNAi -RT


Primery

Hl-1

Hl-2

Hl-3

Aktyna

152 hl-lF

154 hl-2F

156 hl-3F

158 aktvnaF

153 hl-lR

155 hl-2R

157 hl-3R

159aktynaR

Długość produktu (nukleotydów)

783

618 | 380 | 196


7.    Inkubować w 37°C przez 1 h (termocykler). W tym etapie zachodzi reakcja odwrotnej transkrypcji.

8.    Reakcję zatrzymać przez ogrzewanie w 70°C (termocykler) przez lOmin.

cDNA należy przechowywać w -20°C. Zsyntetyzowane cDNA posłuży jako matryca do amplifikacji analizowanych sekwencji metodą PCR.

Dzień 3. Półilościowy multiplex PCR

Multiplex PCR polega na amplifikacji jednocześnie kilku sekwencji w jednej reakcji PCR. Warunkiem powodzenia takiego typu reakcji jest optymalizacja jej warunków- odpowiedni dobór buforu oraz primerów, liczby cykli, jednakowej temperatury przyłączenia starterów, itd.

Multiplex PCR ma istotną przewagę nad zwykłym PCR. W półilościowym multiplex RT-PCR produkty amplifikacji określonych transkryptów oraz kontroli uzyskane są w jednej reakcji i w jednakowych warunkach, co pozwala na lepsze porównanie ich ilości.

Dla dwóch wariantów eksperymentalnych (Col-0 i hl-RNAi):

2. Po zakończeniu reakcji PCR do probówek należy dodać 1/5 obj. barwnika do elektroforezy.

3. 20 pl próbki nałożyć na 1,2 % żel agarozowy

Przygotowanie żelu agarozowego

1.    Odważyć 0,6g agarozy (1,2%)

2.    Agarozę przesypać do kolby, dodać 50 ml buforu TBE (45 mM Tris-boran, 1 mM EDTA)

3.    Rozpuścić agarozę przez podgrzanie w kuchence mikrofalowej

4.    Schłodzić kolbę pod bieżącą wodą, dodać ^ 0,5 pg/ml (stężenie końcowe) bromku etydyny

5.    Wylać żel do wanienki, włożyć grzebień, pozostawić do zastygnięcia

6.    Prowadzić elektroforezę w buforze TBE przy napięciu ok. 100V w obecności markera wielkości.

Oczekiwany wynik dla roślin dzikich

z uwzględnieniem kontroli wewnętrznej (aktyna)

przedstawia Rys. 3.

1.    Przygotować mix do PCR według schematu:

(próbki przygotowywać w lodzie) na 1 reakcję:

Mattyca cDNA

1-2 pl

H 1.1

Mix Primerów

4 pl

H 1.2

Bufor Taq (10x)

5 pl

dNTP (20pM)

1,25 pl

H 1.3a

MgCl2 (25pM)

6 pl

H 1.3b

Polimeraza Taq

1 Pl

H20 milliQ

do 50 pl

Aktyna

Warunki reakcji PCR:

- hołd 94°C


cDNA - Kontrola Col-O

-Ganomov

1Kb+ 1/4    1/2    1    1-RT DNA

H 1.1 H 1.2

H 1.3


-    94°C 2 min.    Rys. 3. Rodział elektroforetyczny produktów

-94°C30s I    amplifikacji wariantów histonu HI.

-    65°C 5 min. 125 Cykli    Histon HI.3 występuje w dwuch wariantach

-    hołd 4°C    splicingowych (a i b).



Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
10 Biologia Molekularna Rośli 2. Analiza mutantów RNAi w genach kodujących warianty histonu HI wArab
14. ANALIZA ELEKTROFORETYCZNA PRODUKTÓW TRAWIENIA HISTONU HI PAPAINĄ Sprawozdanie, wersja
defosforylację zasad azotowych białka P34"*2. Jednymi z substratów MPF sąm.in. histon HI (wymag
13 Przykład 9.4 Hi = 13,90 kN (10,69 kN), H, = 6,95 kN (5,35 kN). Obliczenia ramy wg teorii I rzędu
r^L---T::—-r—r-— " »nrwi*w«4 i vun i v*. .1 , * pn;h MdI.k** II HI-13:45
89458 Str201 (2) b (hi 1) C B 13.8. DOKŁADNOŚĆ WYKONANIA CZĘŚCI KORPUSOWYCH, wg [52] Rys. 13.8.1. Oz
WARSZAWSKO-UKRAINSKI WARIANT POLSKIEGO ROMANTYZMU 13 Na przemianę rozumienia istoty świata i sposobó
2009 01 02 2500 O W V4iliw<« S J DulT>    JU) i ISBN WMWI. 15.124-1.0By WN PfcN
Mutantów RNAi w Git Kodujących Warianty Histc onu HI odwrotnej transkryptazy (w ćwiczeniu
SL274070 Hi! / LM I y ; : SmS ? ^KoyOyy    u & ck ?fS33rtELi IT r immES®h mu
img067 (23) W 7/4^ t& M!qj ~MU - hecK,^, / o Arld /_ Hi <2. SL~ ^Ć/S h&STWf h

więcej podobnych podstron