Wykład 5.
Epidemiologia zatruć
Według danych Wojewódzkiej stacji Sanitarno-
Epidemiologicznej w Poznaniu (1977-2004)
•
Ogółem w Polsce (27 lat) grzybami zatruły się 10 274
osoby, w tym 601 (5,8%) śmiertelnie (osoby przebywały
co najmniej 3 dni w szpitalu)
I dekada (1977-1987): 5793 zatrucia, 329 śmiertelne
II dekada (1988-1998): 3697 zatrucia, 237 śmiertelne
Ostatnie 7-lecie (1999-2004): 784 zatrucia, 35 śmiertelne
Z chwilą przejęcia (1993r.) przez laboratoria szpitalne od stacji
sanitarno-epidemiologicznych
obowiązku
wykonywania
analiz
diagnostycznych materiału biologicznego pochodzącego od osób
zatrutych grzybami obserwuje się duży spadek zgłaszalności zatruć
Gatunki najważniejsze w toksykologii zatruć
grzybami w Polsce:
Paxillus involutus - 2836 przypadków
Amanita phalloides – wraz z muchomorem wiosennym i
jadowitym 2632 przypadki
Gyromitra esculenta
•
Największą liczbę zatruć wywołuje Paxillus involutus,
ale najwięcej zgonów jest notowanych po spożyciu
Amanita phalloides
•
Od 1994 roku nie zanotowano zatruć Cortinarius
orellanus
•
Od 1995 roku nasiliła się liczba zatruć grzybami
halucynogennymi: Psilocybe semilanceata, a od 1999
roku również Panaeolus papilionaceus
•
Corocznie notowane są zatrucia nieswoiste (1977-
2004:
ponad 12%)
•
Najwięcej zatruć notuje się w grupie wiekowej 21-45 lat
(ponad 35,3%), znacznie mniej powyżej 60 roku życia
(ponad 8%)
•
Największa umieralność: dzieci do 14 lat – ponad 30% i
osoby 21-45 lat
powierzchnia wchłaniania w przewodzie pokarmowym dzieci
względnie większa niż u dorosłych + szybsze procesy metaboliczne
=
szybsze
wchłanianie
toksyn;
u
osób
starszych
słabsze
funkcjonowanie
systemów
enzymatycznych,
upośledzenie
wchłaniania
•
Największa liczba zatruć: lipiec-październik
•
Roczna krzywa zatruć wskazuje na dwa
maxima:
1. kwiecień + początek maja: piestrzenica kasztanowata
Gyromitra esculenta,
dzwonkówka
trująca
(wieruszka
zatokowata) Entoloma sinuatum
2. koniec lipca + sierpień (Amanita spp., Russula
spp.,
Clitocybe spp.)
•
Zatrucia w ciągu tygodnia
1. poniedziałek + poniedziałek/wtorek (noc)
2. piątek/sobota (noc) – objawy zatrucia A. phalloides 12-24h
•
Szczególnie wysoka śmiertelność występuje wtedy, gdy A.
phalloides spożywany jest jako
jedyny gatunek
!!!
•
Przebieg zatrucia zależy od ilości zjedzonej potrawy i wiąże się
z ilością wchłoniętej trucizny/kg masy ciała
•
Nasilenie zatrucia postępuje tylko do pewnych granic
proporcjonalnie do ilości spożytego grzyba – receptory
komórek
wątroby
są
zdolne
do
wchłonięcia
pewnej
maksymalnej
dla
siebie
dawki
trucizn
A.
phalloides
powodującej ich uszkodzenie
•
Niektóre inne gatunki łagodzą objawy zatrucia A. phalloides;
najprawdopodobniej toksyny konkurują o enzymy komórkowe
wątroby
•
Najwięcej zatruć spowodowanych jest grzybami zebranymi na
własny użytek – ok. 91%, grzybami zakupionymi – ok. 8%,
spożytymi w zakładach zbiorowego żywienia – ok. 0,1%
Postępowanie przy zatruciach grzybami
I.
Pierwsza pomoc
– postępowanie przedlekarskie
II. Postępowanie lekarskie i szpitalne
– leczenie specyficzne
I. Pierwsza pomoc
•
Optymalny czas – 30 min. od spożycia (pierwsze objawy rzadko
notowane)
•
Z
chwilą
wystąpienia
pierwszych
dolegliwości
żołądkowo-
jelitowych należy sprowokować wymioty (dorośli 200-300 ml
wody, dzieci 100 ml, może być lekko osolona) powtarzając do
uzyskania czystych popłuczyn, bez zawartości treści pokarmowej
(substancje trujące grzybów wchłaniają się z żołądka i jelit w
ciągu kilku godzin)
•
Koniecznie zabezpieczyć wymiociny (lub popłuczyny) do badań
mikologicznych !!!
•
Podanie węgla aktywowanego w zawiesinie wodnej (dzieci: 15-30
g w 150 ml, dorośli 30-60(-100) g w 240 ml wody) + szybko
działający środek przeczyszczający
UWAGA!
WĘGIEL AKTYWOWANY UTRUDNIA
BADANIE MIKOLOGICZNE – przed jego
podaniem zabezpieczy wymiociny!
•
Przeciwwskazaniem
do
prowokowania
wymiotów
są
zaburzenia świadomości i pobudzenie psychoruchowe (częste
zachłyśnięcia !)
rezygnujemy
z
ww.
zabiegów,
wzywamy
lekarza,
układając chorego w pozycji bezpiecznej, u osób starszych
usuwamy protezy zębowe
II. Postępowanie lekarskie i szpitalne
•
Postępowanie szpitalne jest leczeniem objawowym, zachowawczym
•
Bardzo ważne jest aby chory otrzymał jak najszybciej pomoc
lekarską (szpital rejonowy), niekoniecznie w regionalnym Ośrodku
Ostrych Zatruć
•
Płukanie żołądka
•
Chorego z zaburzeniami świadomości przed założeniem sondy
dożołądkowej należy koniecznie zaintubować (ewentualnie środek
uspokajający)
•
Pobranie materiałów biologicznych do badań mikologicznych:
wymiociny,
popłuczyny
żołądka,
stolec
+
resztki
potrawy
(najwartościowszy materiał !!!)
•
Wykonanie podstawowych analiz laboratoryjnych: hematokryt,
jonogram, zasób zasad, wskaźnik protrombinowy, stężenie glukozy
we krwi, kreatynina (czynności nerek), transaminazy i bilirubina
(czynność wątroby)
Leczenie specyficzne
•
Brak swoistych odtrutek dla toksyn grzybów
•
Próbą leczenia specyficznego jest zabieg plazmaferezy w
przypadku zatrucia Amanita phalloides
•
Hemoperfuzja, dializoterapia (hemodializa) – leczenie
powikłań
Zabieg plazmaferezy lub hemoperfuzji należy przeprowadzić w najkrótszym czasie od zatrucia nie
później niż do 24 godzin – zabiegi te są najskuteczniejsze do 10-12 godziny od zatrucia
Trudności w leczeniu zatruć muchomorami:
•
Cała dawka toksyn muchomora szybko (4-6 godzin) znika
z surowicy i rozprzestrzenia się w organiźmie
•
Trucizna pozostaje w tkankach i tylko ta zawarta w
nerkach wydala się z moczem
•
Nie ma leków chroniących komórki wątroby przed
amanityną – raz związana z nimi lub ich strukturami
niszczy je nieodwracalnie
•
Wydalanie
amanityny
z
moczem
nie
zmniejsza
uszkodzenia innych narządów
Wywiad epidemiologiczny
(należy ustalić):
1.
Przynależność gatunkowa grzybów
czy potrawa, która mogła być przyczyną zatrucia, była sporządzona z jednego czy z wielu
gatunków grzybów
jakie gatunki czy grupy grzybów wchodziły w skład potrawy:
•
czy tylko grzyby „rurkowe”
•
czy tylko grzyby „blaszkowe”, jakiej barwy były blaszki
•
czy
były
to
grzyby
mieszane
o
różnym
zabarwieniu
blaszek:
białym,
kremowym,
pomarańczowym, brązowym, inaczej zabarwione
jaki grzyb pokazał chory na plakacie „Grzyby trujące i podobne do nich gatunki jadalne”
2. Sposób przygotowania potrawy
czy surowcem do przygotowania potrawy były: grzyby świeże, grzyby suszone, przetwory
(grzyby solone, sterylizowane, marynowane)
czy grzyby były wstępnie obgotowane i wywar odrzucony
czy potrawę stanowiły grzyby duszone, smażone na tłuszczu, czy na blasze
3. Ilość spożytej potrawy
4. Liczbę osób, które spożywały potrawę i liczbę zachorowań
5. Po ilu godzinach od spożycia wystąpiły pierwsze objawy chorobowe
6. Po ilu godzinach od zachorowania zgłoszono się do szpitala
7. Pochodzenie grzybów: zbiór na własny użytek, zakupione jako grzyby świeże lub przetwory
8. Kto zbierał grzyby: dzieci czy osoby dorosłe, zbieracze indywidualni czy uczestnicy
wycieczki
9. Miejsce spożycia: dom, zakład zbiorowego żywienia otwartego, zakład zbiorowego żywienia
zamkniętego
Materiał biologiczny do badań mikologicznych
W przypadku podejrzenia zatrucia grzybami materiał do badań powinien być
pobrany przez lekarza udzielającego pierwszej pomocy osobie lub osobom
zatrutym. Obowiązek ten spoczywa na lekarzu pogotowia, lekarzu
rodzinnym lub lekarzu rejonowym.
1.
Resztki nie spożytych potraw
•
zupy grzybowe, grzyby gotowane
•
tzw. drugie danie – grzyby duszone w tłuszczu i śmietanie, grzyby smażone na tłuszczu, grzyby
smażone na blasze, grzyby panierowane
•
sos grzybowy
•
przetwory grzybowe: grzyby solone, kiszone, marynowane, sterylizowane, suszone bądź
przygotowane do suszenia, które zjedzono na surowo, farsz do pierogów, obierzyny, grzyby
ś
wieże, nalewki spirytusowe
2. Materiał pochodzący z przewody pokarmowego
•
wymiociny [największa wartość diagnostyczna i analityczna]
•
zgłębnikowana treść żołądkowa [zarodniki obecne zwykle do końca 3 doby, materiał bogatszy w
zarodniki niż popłuczyny]
•
popłuczyny (żołądka, jelita grubego) [materiał najczęściej trafiający do analiz mikologicznych]
•
kał [dobry materiał do badań mikologicznych, obecność zarodników można stwierdzić nawet w
5 dobie]
Do materiału przesłanego do badań mikologicznych musi być dołączona wypełniona
„Karta zleceń na wykonanie badań mikologicznych”
Sposób pobierania i zabezpieczania prób
Wyposa
ż
enie:
Słoiki typu twist off poj. 0,45 dm
3
– szczelnie zamkni
ę
te,
na zewn
ą
trz etykieta, na której mo
ż
na pisa
ć
dane chorego
Nerka do zbierania wymiocin (szczególnie wa
ż
ne dla
karetek Pogotowia Ratunkowego oraz izby przyj
ęć
Butelki z szerok
ą
szyjk
ą
, poj. 0,25 dm
3
, szczelnie
zamkni
ę
te z etykiet
ą
Probówki
Plastikowe pojemniki do kału – kałówki
Karta zlece
ń
na wykonanie bada
ń
– druk
Sposób pobierania i zabezpieczania prób - cd
Zabezpieczenie prób
Resztki nie spo
ż
ytych potraw
Resztki nie spo
ż
ytej potrawy nale
ż
y pobra
ć
do czystych, szczelnie zamkni
ę
tych słoików typu twist
off. Na etykiecie napisa
ć
wyra
ź
nie (drukowanymi literami):
Imi
ę
i nazwisko chorego
Rodzaj pobranej próby
Dat
ę
i godzin
ę
pobrania
Oddział, na który pacjent zostaje skierowany
Zabezpieczenie materiału pochodz
ą
cego z przewodu pokarmowego
Wymiociny – bardzo cenny materiał diagnostyczny (zwłaszcza pierwsze wymiociny) rzadko
trafiaj
ą
cy do bada
ń
mikologicznych (pojawi
ą
si
ę
zwykle jako pierwsze objawy zatrucia w domu
chorego – materiał ten jest skrz
ę
tnie usuwany, brak odpowiedniego wyposa
ż
enia w karetce).
Zwymiotowan
ą
tre
ść
przenie
ść
do czystego słoika, szczelnie zamkn
ąć
i na etykiecie napisa
ć
niezb
ę
dne dane
Zgł
ę
bnikowana tre
ść ż
oł
ą
dkowa – pobiera si
ę
do probówek lub butelek po płynach infuzyjnych
pojemno
ś
ci 0,25dm
3
, u dzieci mo
ż
na do szerokich probówek, poniewa
ż
materiału jest mało.
Pojemniki szczelnie zamyka si
ę
i przesyła do bada
ń
.
Popłuczyny jelit (tzw. gł
ę
boki wlew) – materiał pobiera si
ę
do czystych naczy
ń
, zamyka, opisuje i
przekazuje do bada
ń
; materiał nale
ż
y zabezpieczy
ć
przed wykonaniem wła
ś
ciwego płukania
ż
oł
ą
dka, zalecanym w Polsce w przypadku zatru
ć
grzybami
Kał – próby kału pobiera si
ę
do plastikowych pojemników, zamyka, opisuje i przesyła do badania.
W przypadku stolca wodnistego prób
ę
nale
ż
y pobra
ć
do butelki po płynach infuzyjnych o
pojemno
ś
ci 0,25dm3, zamkn
ąć
korkiem, opisa
ć
i przesła
ć
do bada
ń
.
Literatura:
Klawitter
M.
2005.
Diagnostyka
mikologiczna
zatru
ć
grzybami. Wydawnictwo „
Ś
l
ą
sk”, Katowice.
Borowiak K.S., Machoy-Mokrzy
ń
ska A. (red.). 2003.
Wybrane zagadnienia z toksykologii ogólnej i ostrych zatru
ć
.
Wydawnictwo Pomorskiej Akademii Medycznej, Szczecin.
Burda P.R. 1998. Zatrucia ostre grzybami i ro
ś
linami
wy
ż
szymi. PWN, Warszawa.
Henneberg M., Skrzydlewska E. 1984. Zatrucia ro
ś
linami
wy
ż
szymi i grzybami. PWWL, Warszawa.