1
Transformacja bakterii E. coli
metodą elektroporacji
Materiał: elektrokompetentne komórki E. coli (szczep DH5α) przechowywane w postaci stocków glicerolowych (-
80°C).
1.
Zawiesinę elektrokompetentnych komórek rozmrozić na lodzie. Umieścić w lodzie kuwetę do
e
lektroporacji (szczelina grubości 1 mm) w celu jej schłodzenia.
2.
Przenieść 40 μl zawiesiny bakterii do kuwety elektroporacyjnej tak, aby cała zawiesina
znajdowała się na dnie kuwety. Unikać tworzenia pęcherzyków powietrza. Trzymać w lodzie.
3.
Dodać 100 ng plazmidowego DNA.
4.
Ustawić parametry elektroporacji wg poniższej tabeli:
grupa 1
grupa 2
grupa 3
grupa 4
grupa 5
grupa 6
napi
ęcie
[kV]
0.9 kV
1.1 kV
1.3 kV
1.6 kV
1.7 kV
Kontrola
(-)
Warunki
wspólne (dla wszystkich grup):
Mode: 2.5kV/RESISTANCE High Voltage
Resistance: R5 (129 ohm)
5.
Wytrzeć kuwetę elektroporacyjną do sucha (!!!), umieścić w komorze elektroporatora i
zabezpieczyć przez dokręcenie.
6.
Przyłożyć impuls (przycisk ‘PULSE).
7.
Odczytać i zapisać wartość czasu trwania impulsu oraz faktyczną wartość napięcia. (UWAGA:
przed następną elektroporacją należy nacisnąć ‘RESET’)
8.
Niezwłocznie dodać 1 ml pożywki LB (bez ampicyliny!) ogrzanej do temp. 37° C.
9.
Przenieść bakterie do probówek 1.5 lub 2.0 ml.
10.
Inkubować w temperaturze 37° C z wytrząsaniem przez 1 godz.
11. Dla
kontroli
do
świadczenia należy użyć jednej porcji (40 μl) bakterii
elektrokompetentnych bez podawania impulsu elektrycznego. Post
ępować identycznie
jak z bakteriami poddawanymi elektroporacji.
12.
Wysiać bakterie na płytki z zestaloną pożywką LB z dodatkiem czynnika selekcyjnego
(ampicyliny)
– do posiewu pobrać po 1 i/lub 10 μl hodowli rozcieńczonej 1:100 i natychmiast
rozprowadzić równomiernie po całej płytce Petriego za pomocą głaszczki.
13.
Szalki inkubować w cieplarce 37° C przez 24 h do uzyskania wzrostu transformantów.
Protokół przygotowania komórek elektrokompetentnych:
1.
Przygotować 1 litr hodowli E.coli na podłożu LB (inkubować z wytrząsaniem przez noc do OD
600
=0,5-1,0,
co odpowiada ~10
10
komórek/ml).
2.
Schłodzić hodowlę w lodzie. Zwirować (4000 g, 15’, 4°C), osad komórek rozbić i zawiesić w 1 objętości
(1 litr) zimnej sterylnej wody.
3.
Ponownie zwirować hodowlę i zawiesić w 0,5 objętości zimnej wody. Powtórzyć płukanie.
4.
Zwirować hodowlę i zawiesić w 0,02 objętości zimnej wody.
5.
Zwirować hodowlę i zawiesić w 0,002-0,003 objętości zimnej wody z dodatkiem 10% glicerolu.
Rozporcjować zawiesinę po 40 µl do jałowych probówek i przechowywać w temp. -80°C.