Molekularne podstawy pośredniej
diagnostyki pasożytów tkanek narządowych
Opracowała
Paulina
Werner
Procesy immunologiczne w
przebiegu zarażenia pasożytami
tkanek narządowych
W procesach immunologicznych podczas
zakażenia pasożytami przeważa
odpowiedź komórkowa związana z
aktywnością limfocytów T.
Limfocyty T charakteryzują się
obecnością na powierzchni receptora
komórek T (
TCR
) oraz następujących
cząsteczek różnicujących: CD2, CD3,
CD4
, CD5, CD7,
CD8
, CD28, CD154
Limfocyty dzieli się na:
Ze względu
na funkcję
:
Limfocyty Tc
(cytotoksyczne) - są odpowiedzialne za niszczenie komórek
zakażonych przez drobnoustroje oraz za niszczenie komórek nowotworowych.
Większość tych limfocytów posiada na swojej powierzchni CD8+. Rozpoznają obce
MHC klasy I
Limfocyty Th
(pomocnicze) - wspomagają odpowiedź
humoralną i komórkową poprzez bezpośredni kontakt oraz wydzielanie cytokin.
Ponadto ułatwiają aktywację limfocytów B i makrofagów. 90% tych limfocytów
posiada CD4+. Rozpoznają MHC klasy II. Dzielimy je na :
• Limfocyty Th1
- wspomagają odpowiedź komórkową. Aktywują makrofagi i
limfocyty Tc, stymulują wytwarzanie przeciwciał
IgG1 i IgG3
. Wytwarzają
IL-
2 oraz interferon γ
• Limfocyty Th2
- wspomagają odpowiedź humoralną. Stymulują rozwój reakcji
alergicznych, pobudzają wytwarzanie przeciwciał
IgA, IgE i IgG4
.
Wytwarzają
IL-4, IL-5, IL-10, IL-13
które są czynnikami wzrostu i
różnicowania limfocytów B
• Limfocyty Th0
- limfocyty będące na etapie rozwoju. Wydzielają wiele różnych
cytokin
• Limfocyty Th17
- dzięki wydzielanej
IL-17
są odpowiedzialne za szybki rozwój
reakcji
zapalnej i pojawienie się neutrofilów
Limfocyty Treg
(regulatorowe) - są odpowiedzialne za hamowanie nadmiernej
reakcji przeciwzapalnej i reakcji nadwrażliwości, zabezpieczają organizm przed
autoagresją, zwiększają tolerancję na zewnętrzne antygeny, chronią płód przed
odrzuceniem przez układ odpornościowy matki
Ze względu na
budowę receptora TCR
:
Limfocyty Tαβ
- 90% limfocytów w organizmie człowieka
Limfocyty Tγδ
- uczestniczą w odpowiedzi przeciwzakaźnej
(przeciw wirusom, bakteriom i pierwotniakom) oraz w
odpowiedzi przeciwnowotworowej, rozpoznają białka szoku
cieplnego
kompleks receptorowy limfocytów
T
Jest receptorem glikoproteinowym, którego białkowa część przenika
całkowicie błonę komórkową- jest białkiem transbłonowym o strukturze podobnej
do immunoglobulin. Składa się z
łańcuchów α i β
(rzadziej: γ i δ; wyjątkowo: γ i γ, β i
β, β i δ) posiadających część zmienną i stałą.
W błonie komórkowej
obok TCR znajduje się glikoproteina CD3, której
kompleks przekazuje sygnał do wnętrza komórki o związaniu antygenu
przez TCR. CD3 posiadają charakterystyczny
motyw sekwencji dla
fosforylacji tyrozyny
, znany jako
ITAMs
(Immunoreceptor Tyrosine-based
Activation Motifs)
Schemat TCR (łańcuch TCR-α i TCR-β).
Niebieskie segmenty
- ITAMs
. Obok TCR
znajdują się 4 łańcuchy CD3 ( gamma,
delta, epsilon) oraz łańcuch CD4 lub CD8
Przebieg reakcji immunologicznej z udziałem
limfocytów T
1.Związanie antygenu z cząsteczkami
MHC
(glikoproteiny głównego
układu zgodności tkankowej kodowane przez geny na chromosomie 6).
Wyróżnia się:
• MHC I
- występują na powierzchni
wszystkich komórek jądrowych
.
Cząsteczki te łączą się z peptydami antygenowymi oraz mikrotubuliną b2
w kompleks, który po przejściu przez aparat Golgiego jest eksponowany
na zewnętrznej stronie błony komórkowej. Z tym kompleksem wiążą się
za pomocą TCR limfocyty
Tc (CD8)
• MHC II
– występują
na powierzchni komórek prezentujących antygeny
(gł. komórek dendrytycznych) , które za pomocą receptorów wiążą obce
białka , endocytują i poddają proteolizie. Następuje synteza MHC,
połączenie go z obcym peptydem i prezentacja na powierzchni błony
komórkowej. Z tym kompleksem wiążą się limfocyty
Th (CD4).
2. Wytworzenie synapsy immunologicznej – struktury powstającej na
styku komórki prezentującej antygen (APC) oraz pobudzanego limfocytu.
Dzięki utworzeniu synapsy obydwie komórki mogą zostać zaktywowane.
3. Przekazanie 2 sygnałów aktywacji
4. Dojrzewanie synapsy
5. Przekazanie sygnału do wnętrza
limfocytu
6. Transkrypcja genów i produkcja
białek
7. Wydzielanie cytokin i proliferacja
Cytokiny
Cytokiny − białka wpływające na wzrost, proliferację i pobudzenie komórek biorących
udział w odpowiedzi odpornościowej oraz komórek hemopoetycznych. Cytokiny mogą
wybiórczo pobudzać odpowiedź komórkową lub humoralną, co w połączeniu z ich ilością
(ponad 100 opisanych cytokin i wciąż odkrywane nowe) powoduje, że powstaje niezwykle
skuteczny, ale także bardzo skomplikowany i czuły system powiązań pomiędzy komórkami
układu odpornościowego, tzw. sieć cytokin.
interleukiny są cytokinami, które umożliwiają komunikację leukocytów ze sobą i pozwalają na
wpływ jednych populacji leukocytów na inne. Najważniejsze interleukiny to:
•Interleukina 1
- niezwykle istotna w procesach inicjujących stan zapalny, pobudza
wytwarzanie Interleukiny 6
•Interleukina 2
- bardzo ważna w pobudzeniu limfocytów T oraz komórek NK
•Interleukina 3
- zaliczana także do cytokin hemopoetycznych, silnie stymuluje
krwiotworzenie
•Interleukina 4
- pobudza podział limfocytów B
•Interleukina 6
- indukuje zapalenie, bierze udział w krwiotworzeniu i uczestniczy w wielu
różnych mechanizmach odpornościowych
•Interleukina 7
- jedna z podstawowych cytokin w limfopoezie
•Interleukina 8
- cytokina zaliczana również do chemokin, główna cytokina
aktywująca neutrofile
•Interleukina 10
- cytokina immunosupresyjna, uczestniczy w wygaszaniu odpowiedzi
odpornościowej i wytwarzaniu immunotolerancji
•Interleukina 12
- stymuluje komórki NK, limfocyty T oraz bierze udział w polaryzacji
immunologicznej
•Interleukina 18
- efekty podobne do efektów IL-1, działa przez te same receptory
Do grupy cytokin zaliczmy także
interferony
zaangażowane w reakcje
przeciw wirusom, bakteriom,
pasożytom
i nowotworom. Wyróżniamy:
• interferony typu I (oznaczone literami α, β, κ i ω) są wydzielane
przez leukocyty i inne komórki
•
interferon typu II (IFN-γ) - wydzielany przez limfocyty T i
komórki NK
Molekularne strategie obronne pasożytów tkanek narządowych
I. Toxoplasma gondii
1. budowanie niszy w wakuoli:
• szczególna rola białek mikronem
MIC2 i M2AP
, których domeny
cytoplazmatyczne wiążą się z aldolazą. Tworzy się kompleks, który
umożliwia wsunięcie pasożyta do komórki
• Odcinanie mikronem przez proteazy i zamknięcie pasożyta w
wakuoli pasożytniczej powstałej ze zlania się błony zewnętrznej, z
którą związane są białka pasożyta
ROP1-9
-> ich funkcją jest ułatwienie formowania wakuoli i
uniemożliwienie fuzji wakuoli z lizosomem komórki gospodarza.
ROP1 pojawia się w początkowej fazie inwazji i ułatwia wnikanie
pasożyta do komórki żywiciela,
ROP2 umożliwia dołączenie do
wakuoli mitochondriów gospodarza.
• wnętrze wakuoli budują białka granul o dużej gęstości
GRA
–
umożliwiają kontakt z komórką gospodarza i transport substancji
odżywczych (
GRA 3,5,8
) oraz budują wewnętrzną sieć mikrotubul,
która stabilizuje strukturę i umożliwia wzrost wakuoli (
GRA
1,2,4,6,7,9
)
• wakuola jest oddzielona od szlaków endo i egzocytozy komórki
gospodarza, obojętne pH, obecność inhibitorów proteaz nie
powodują degradacji cząsteczek co umożliwia namnażanie komórek
pasożyta
2. Molekularna manipulacja metabolizmu zarażonej
komórki:
T. gondii wykształcił kilka technik do modyfikowania funkcji
komórek gospodarza:
• Blokuje apoptozę w zarażonych komórkach poprzez:
a). włączanie transkrypcji czynników anty-apoptotycznych
(Bcl2) i ubiwyktynację pro-apoptotycznych (Bax i Bak)
b). Zmniejszone uwalnianie cytochromu c (blokada szlaku
mitochondrialnego)
c). Blokadę kaspazy 8 (blokada szlaku receptorowego)
• Zaburza funkcje czynników transkrypcyjnych gospodarza
włącznie ze STAT1
->
obniżenie ekspresji genów kodujących antygeny
powierzchowne MHC II i tym samym odpowiedzi komórkowej
• Blokuje ekspresję genów zapalnych cytokin takich jak TNF-
α
oraz IL-12 (odpowiedzialne białko pasożyta
ROP16
) –> ich brak
powoduje
zahamowanie produkcji IFN-γ
od którego zależy
odporność na pasożyta
• Pobudza aktywność czynników transkrypcyjnych STAT3/6
(białko pasożyta
ROP16
)
• „ rozbraja” makrofagi przez fosforylację
IRG
– GTPaz
związanych z odpornością
(odpowiedzialne białko pasożyta
ROP18
)
3. profilowanie odpowiedzi immunologicznej żywiciela:
Odpowiedź humoralna polega na wytwarzaniu różnych klas
przeciwciał w zależności od fazy zakażenia.
-W pierwszych tygodniach po zarażeniu pojawiają się
przeciwciała:
IgM
(przeciwko antygenowi ROP-1 oraz
antygenom GRA) ,
IgG
(przeciwko GRA 7,8 i SAG1),
IgA
-W 3 do 6 miesiąca najwyższe stężenie przeciwciał
IgG
przeciwko GRA1
-Od 6 do 12 miesiąca od zarażenia pojawiają się
IgG
anty
rSAG1 i
IgM
anty ROP-1c
- powyżej 12 miesięcy przeciwciała IgA i IgM zazwyczaj już nie
występują, obecne
IgG
dla antygenu rSAG1.
Molekularne strategie obronne pasożytów tkanek narządowych:
II. Leishmania
1.Kryjówka w fagosomie:
• Postacie promastigota wykorzystują proteazę powierzchniową
GP63 by ułatwić fagocytozę poprzez receptory błonowe
makrofagów
• Powierzchniowy lipofosfoglikan LPG postaci promastigota
opóźnia fuzję fagosomu z lizosomem oraz wydzielanie lokalnych
nadtlenków co umożliwia namnażanie.
• Postacie amastigota są oporne na kwaśne środowisko
fagolizosomu
• Białka
A2
u postaci amastigota chronią pasożyta przed
działaniem szoku cieplnego i stresu oksydacyjnego
• Adaptacją do wewnątrzkomórkowego środowiska jest ekspresja
genu białka błony mitochondrialnej Ldp27, który jako składnik
kompleksu COX związany jest z produkcją ATP u postaci
amastigota co umożliwia efektywne namnażanie
2.Molekularna manipulacja metabolizmu zarażonej komórki:
•Hamowanie kinazy PKC makrofagów
•Wybiórcze hamowanie ekspresji genów dla IL-12 ->
brak produkcji
INF-g
• pobudzanie
nadekspresji czynnika HIF-1a
przez wyczerpywanie
zasobów żelaza w komórce gospodarza , co sprzyja
wewnątrzkomórkowemu wzrostowi pasożyta
• inhibicja szlaków apoptozy komórek
Molekularne strategie obronne pasożytów tkanek
narządowych
III. Trypanosoma cruzi
Ucieczka z endosomu do cytoplazmy
• Mechanizm tego procesu zależy od pH wewnątrz endosomu
• Uwalniany jest czynnik
TcTox
a później czynnik lityczny
LYT1
kiedy endosom ulegnie fuzji z lizosomem
• Błona ulega lizie i umożliwia wyjście pasożyta z endosomu
do cytoplazmy
IV. Trichinella spiralis
Kryjówka w cyście
Po wniknięciu do mięśni nicień modyfikuje mechanizm regeneracji
komórki mięśniowej, która staje się komórką-piastunką:
• Utrata organizacji miofibrylarnej komórki
• Tworzy się przegroda z bazofilnej cytoplazmy, która ma odgraniczyć
zarażoną część od zdrowej
• Aktywacja komórek satelitarnych, które tworzą eozynofilną
cytoplazmę, zanik cytoplazmy bazofilnej
• W formowaniu cysty bierze udział ścieżka sygnalizacyjna
TGF-b -
zatrzymanie podziałów komórkowych w fazie G2/M
• Jądra komórkowe ulegają hipertrofii
• Tworzy się kolagenowa otoczka dookoła komórki z larwą
Nurse cell formation:
F
: Invasion of Trichinella larva causes dissolution and
complete loss of myofibrillar organization;
G
: Satellite cells are activated.
Basophilic transformation occurs in the infected muscle cell. A septum is formed
to limit damaged area;
H
: Activated satellite cells proliferate, differentiate and
fuse to each other or with the infected muscle cell, which provides eosinophilic
cytoplasm. The infected muscle cell dedifferentiates, reenters cell cycle and
arrests at G2/M. There are many hypertrophy nuclei;
I and J
: The eosinophilic
cytoplasm (which is provided by satellite cells) increases in volume and the
basophilic cytoplasm (which originates from infected muscle cell) decreases in
volume;
K:
The mature nurse cell is formed. The cytoplasm of nurse cell is
eosinophilic.
Diagnostyka pośrednia pasożytów tkanek narządowych
1. Odczyn barwny Sabina-Feldmana (1948r.) –
rozpoznanie
toksoplazmozy
• Tachyzoity Toxoplasma gondii pochłaniają barwnik błękitu
metylenowego
• Tachyzoity nie barwią się w obecności dopełniacza i przeciwciał
klasy IgM i IgG
• Odczyn jest wysoce czuły i swoisty ale nie różnicuje przeciwciał,
naraża personel laboratoryjny na zakażenia (stosuje się żywe
tachyzoity)
2. Test transformacji blastycznej limfocytów
•ocenia zdolność limfocytów do proliferacji
•Izolacja limfocytów z krwi poprzez metodę sedymentacji lub w
gradientach gęstości (do krwi dodawany antykoagulant,
nawarstwienie na warstwę gradientu,wirowanie)
•Limfocyty stymuluje się swoistymi antygenami
• 2 metody uzyskania wyników:
1. metoda morfologiczna
– odsetek komórek blastycznych ocenia
się w mikroskopie świetlnym, w preparacie wykonanym z osadu
3-5 dniowej hodowli izolowanych limfocytów z antygenem.
2. metoda izotopowa
– proliferację ocenia się przez pomiar
włączania tymidyny znakowanej trytem do DNA jąder dzielących
się intensywnie komórek blastycznych po stymulacji antygenem.
Określa się indeks stymulacyjny w stosunku do kontroli (hodowla
limfocytów bez stymulacji).
Dziękuję za
uwagę