Immunologia – wejściówka 26.10.2012
Podstawowe zasady BHP
Typy zagrożeń bezpieczeństwa:
Zagrożenia biologiczne
Prawidłowe mycie rąk
Środki ochrony indywidualnej
Właściwe składowanie odpadów
Zagrożenia chemiczne
Szeregi rozcieńczeń
Zagrożenia biologiczne – czynniki zakaźne np. infekcje bakteryjne, pasożyty.
Ostre narzędzia np. tłuczone szkło
W laboratorium immunologicznym zagrożeniem dla pracownika jest kontakt z materiałem biologicznym.
Trzy elementy niezbędne do wystąpienia zagrożenia biologicznego:
Źródło
Droga transmisji
Gospodarz
Technika mycia rąk
Ręce płukać pod bieżącą wodą
Z dozownika pobrać mydło w płynie i zgodnie z podaną techniką myć ręce przez około 30s
Wypłukać ręce pod bieżącą wodą
Ręce dokładnie osuszyć papierowym ręcznikiem, którym następnie należy zakręcić kran
Zużyty ręcznik wyrzucić do pojemnika na odpady
Ręce myjemy zawsze przed kontaktem z pacjentem, po zdjęciu rękawiczek, gdy opuszczamy salę ćwiczeń, w chwili gdy możemy ulec skażeniu, przed i po skorzystaniu z urządzeń sanitarnych.
Środki ochrony indywidualnej
Rękawiczki
Fartuchy
Maski
Okulary
Czepki
Typy rękawiczek ochronnych
Do pracy z materiałem zakaźnym: lateksowe, winylowe, PCV, polipropylenowe. Należy wybrać odpowiedni typ rękawiczek w zależności od spełnianych funkcji. Zawsze po zdjęciu należy myć ręce. Fartuch musi być zapięty na ostatni guzik! Zawsze należy zawiązywać włosy!. Odzież ochronna musi być wykonana z materiałów niepalnych. Nigdy nie jemy, nie pijemy w pracowni. Miejsce pracy powinno być posprzątane.
Odpady medyczne
Suche, stałe
Pojemniki, probówki, pipety, końcówki do pipet
Płyny ustrojowe, krew
Urządzenia potrzebne do wykonywania ćwiczeń
Służą do przenoszenia i odmierzania cieczy
Występują trzy rodzaje pipet laboratoryjnych
Pipeta Pasteura – najprostszy rodzaj pipety, rurka szklana lub plastykowa. Pobierają bardzo małe objętości
Pipety miarowe
Pipety automatyczne – to specjalne pipety miarowe. Jej mechanizm składa się z:
Precyzyjnego tłoczka ze sprężynką
Rączki
Regulatora wymiennej końcówki
Odmierzana ciecz jest odmierzana tylko do końcówki.
Rozcieńczanie roztworów.
Wyrażane w postaci ułamka. Stosunek rozcieńczenia – objętość próbki całkowitej objętości roztworu przy czym objętość końcowa jest równa objętości próby i objętości rozpuszczalnika
Rozcieńczenie 1/10 = objętość probówki/objętość rozpuszczalnika = 1ml/1+9ml
Temat: Metody barwienia różnicowego komórek. Wykonanie preparatów, barwienie i różnicowanie komórek
Metody barwienia i różnicowania komórek:
Barwienia preparatów mikroskopowych
Barwienie preparatów hematologicznych
Barwienie preparatów mikrobiologicznych
Immunohistochemia
Barwienie komórek – organelle znajdujące się w komórkach identyfikowane są używając różnorodnych pigmentów i barwników. Za pomocą technik barwienia można zaobserwować duże organelle komórkowe.
Standardowa technika barwienia – eozyna-hematoksylina.
Eozyna jest kwaśnym barwnikiem, który wykazuje powinowactwo chemiczne z białkami cytoplazmy. Zabarwia głownie cytoplazmę. Zabarwione w ten sposób struktury nazywane są eozynofilnymi. Hematoksylina to podstawowy barwnik, który wykazuje powinowactwo z rybonukleoproteinami jądra. Barwi głównie jądro, a zabarwione struktury są bazofilnymi.
Istnieje również wiele sposobów barwienia, które używane są do wizualizacji poszczególnych tkanek. Krew obwodowa i szpik kostny są barwione techniką May-Grunwalda Giemzy. Wykonuje się w celu oceny leukocytów, erytrocytów i płytek krwi.
Rozmaz wykonuje się na szkiełku podstawowym z krwi wersanianowej żylnej lub włośniczkowej (jednak nie później niż 2h od pobrania). Krew wersenianową dokładnie, ale delikatnie wymieszać.
Nanieść niewielką kroplę krwi na szkiełko podstawowe ok. 1 cm od brzegu.
Powyżej kropli opieramy rozmazówkę do kropli krwi tak aby cała krew równomiernie rozmieściła się między szkiełkami.
Jednym zdecydowanym ruchem bez dociskania rozprowadzić krew utrzymując kąt między szkiełkami około 450.
Natychmiast suszyć rozmaz poprzez wykonanie kilku szybkich ruchów rozmazem w powietrzu – faza szybkiego suszenia.
Podpisać rozmaz zwykłym ołówkiem w jego najgrubszej części.
Imię i nazwisko pacjenta, ewentualnie data i numer badania.
Postawić rozmaz na powietrzu w temp. Pokojowej na ok. 1 h – faza wolnego suszenia.
W ten sam sposób wykonywać drugi preparat dla tego samego pacjenta – preparat rezerwowy w razie wątpliwości i wiarygodności pierwszego pomiaru.
Prawidłowo wykonany rozmaz:
Ma barwę żółtoróżową
Jest coraz cieńszy ku końcowi
Ma jednolitą powierzchnię bez smug, „schodków” , dziur
Ma odpowiednią grubość, nie jest zbyt cienki ani zbyt gruby. W zbyt grubym rozmazie trudno różnicować komórki (szczególnie blastyczne)
Ma długość 3-4 cm i sięga do 2/3 szkiełka
Brzegi rozmazu nie dochodzą do brzegów szkiełka podstawowego
Zakończony jest brodą
Najczęściej stosowaną metodą z użyciem dwóch barwników: May-Grunwalda i Giemzy
W skład barwników wchodzą:
May-Grunwalda: błękit metylenowy, eozyna, metanol
Giemzy: błękit metylenowy, eozyna i ażur
Do barwienia stosuje się rozcieńczony barwnik May-Grunwalda dzięki czemu preparat nie musi być utrwalany (gdyż w skład barwnika wchodzi alkohol metylenowy). Eozyna jest barwnikiem kwaśnym, który barwi zasadowe struktury komórkowe (hemoglobina).
Ogólny schemat
Wysuszony preparat barwimy zgodnie z instrukcją podaną przez producenta barwników
Zalać preparat May-Grunwalda na 3-5 minut
Spłukać wodą destylowaną lub wodociągową
Zalać preparat rozcieńczonym barwnikiem Giemzy 13-15 min
Spłukać wodą destylowaną lub wodociągową
Pozostawić do wyschnięcia na powietrzu w temperaturze pokojowej
Wyniki barwienia:
Cytoplazma
Zasadochłonna – niebieska (limfocyty, monocyty, plazmocyty)
Kwasochłonna – w różnych odcieniach różu i czerwieni (erytrocyty, granulocyty)
Amfoteryczna – w różnych odcieniach fioletu
Jądro komórkowe – odcienie fioletu – młodsze postacie jaśniejsze, starsze ciemniejsze
Ziarnistości
Azurochłonne – w odcieniach fioletowe od granatu do czerwieni (w granulocytach obojętnochłonnych, monocyty, limfocyty)
Kwasochłonne – żółtobrunatne (w eozynofilach)
Zasadochłonne – ciemnofioletowe z czerwoną poświatą (w bazofilach)
Wybarwiony i wysuszony preparat oglądamy w powiększeniu 1000-krotnym (10 okular x 100 obiektyw) z użyciem olejku immersyjnego. Oceniamy wszystkie komórki obecne w rozmazie:
Leukocyty – oceniamy morfologię i różnicujemy na poszczególne klasy
Erytrocyty – oceniamy morfologię (wielkość, kształt, wybarwienie, występowanie wtrętów, rulonizację, aglutynację)
Płytki krwi – oceniamy morfologię i występowanie agregatów
Decydujący wpływ na wynik badania na wybór odpowiedniego miejsca do oceny morfologii komórek. Preparaty oceniamy najczęściej w 2/3 długości rozmazu gdzie:
Erytrocyty są ułożone równomiernie nie nakładają się na siebie, ale nie ma też między nimi wolnych przestrzeni
W erytrocytach dobrze widoczna jest della, czyli przejaśnienie .
Po rozmazie poruszamy się linią meandrową, inaczej ruchem konika szachowego, ponieważ większe komórki np. monocyty itp. Ponieważ komórki te występują raczej w bocznej i dolnej części preparatu.
Wartości prawidłowego leukogramu
Granulocyty
Obojętnochłonny
O jądrze pałeczkowatym 3-6%
O jądrze podzielonym 58-66%
Kwasochłonne 2-4%
Zasadochłonne 0-0,5%
Limfocyty 20-45%
Monocyty 4-5%
Granulocyt obojętnochłonny o jądrze pałeczkowatym
Kształt okrągły lub owalny
Cytoplazma – różowa, ziarnistości nieliczne, azurochłonna i obojętnochłonna
Jądro: nie jest podzielone, płaty, pałeczkowate
Granulocyt obojętnochłonny o jądrze podzielonym:
Kształt okrągły lub owalny
Jądro komórkowe z ok 5 płatów
Cytoplazma – różowa, ziarnistości nieliczne azurochłonna i obojętnochłonna
Granulocyt kwasochłonny
Okrągły lub owalny kształt
Cytoplazma – różowa zwykle zakryta ziarnistościami
Ziarnistości – bardzo liczne, barwy od złocistej do brunatnej, kwasochłonne
Jądro – dwupłatowe
Granulocyt zasadochłonny
Owalny lub okrągły kształt
Cytoplazma – różowa (blada) zwykle zakryta
Ziarnistości – różne wielkości metachromatyczne, koloru atramentowego
Jądro – płatowe
Limfocyty
Średnica limfocytów jest różna około 9-12 μm
Jądro – owalne, okrągłe
Jąderko - w barwieniu MGG są niewidoczne
Cytoplazma – niebieska w różnych odcieniach
W cytoplazmie niektórych komórek mogą występować ziarnistości azurochłonne (czerwono-fioletowe błyszczące, dość grube o ostrych nieregularnych kształtach)
Limfocyty to komórki układu odpornościowego należące do agranulocytów. Uczestniczą i są podstawą do odpowiedzi odpornościowej swoistej. Stężenie limfocytów we krwi obwodowej człowieka wynosi 1,1 – 3,5 x 109/l. Co stanowi 25 – 35% populacji leukocytów
Wszystkie limfocyty oraz komórki NK rozwijają się ze wspólnej progenitorowej komórki limfopoezy pochodzącej z komórki macierzystej hemopoezy. Większość limfocytów dojrzewa w grasicy, natomiast limfocyty B powstają w czerwonym szpiku kostnym i nigdy nie przechodzą przez grasicę.
Limfocyty B – są odpowiedzialne za rozpoznawanie antygenu i wytwarzanie przeciwciał.
Limfocyty B1 – 20% limfocytów B we krwi obwodowej dominują w okresie płodowym, wytwarzają autoprzeciwciała oraz mają czynny udział w usuwaniu pozostałości po aptozie
Limfocyty B2 – zasadnicza, dominująca subpopulacja
Limfocyty T – są odpowiedzialne za odpowiedź komórkową
Limfocyty Tc – są odpowiedzialne za zabijanie komórek docelowych
Limfocyty Th – wspomagają odpowiedź immunologiczną, wydzielanie cytokiny
Limfocyty Treg – hamują odpowiedź immunologiczną, wydzielają cytokiny
Limfocyty Tγδ – uczestniczą w odpowiedzi przeciwzapalnej i przeciwnowotworowej
Komórki NK – cechy zarówno limfocytów T jak i komórek NK
Monocyty
Największe komórki widoczne w prawidłowym rozmazie krwi obwodowej średnica 16-20 μm. Nieregularny kształt: okrągły lub owalny
Jądro – nieregularne. Przypomina litery J, E, L, U
Cytoplazma niebieskosina
Ziarnistości – nieobecne lub azurochłonne ziarnistości ułożone o jednym lub kilku skupisach
W cytoplazmie obecne są wodniczki