Izolacja kwaśnej fosfatazy z nasion łubinu
2g mąki otrzymanej przez zmielenie nasion łubinu zalewa się porcjami 20 ml buforu ekstrakcyjnego i uciera się w moździerzu w temperaturze pokojowej przez 10 min. Następnie wirujemy po zrównoważeniu w wirówce K-24 przy 10 tys. obrotów przez 10 min. Po odwirowaniu osad odrzucamy, a supematant służył nam będzie jako źródło kwaśnej fosfatazy.
1. Wpływ pH na aktywność kwaśnej fosfatazy.
Do 10 czystych probówek dodajemy roztwór p-nitrofenylofosforanu rozpuszczonego w buforze cytrynianowym o różnym pH.
Do prób 1, 3, 5, 7 i 9 dodajemy roztworu NaOH przed dodaniem fosfatazy, zatem ta silna zasada obecna w probówce spowoduje inaktywację enzymu. Próby 1, 3, 5, 7 i 9 będą więc próbami zerowymi odpowiednio dla prób 2, 4, 6, 8 i 10 w których enzym będzie działał w różnym pH.
Schemat doświadczenia ilustrującego wpływ pH na aktywność kwaśnej fosfatazy
Numer próby |
Dodać po lmł buforu o pH (zawierającego substrat): |
Dodać po 4ml 0,IM NaOH |
Dodać po 0,2ml |
Po 15 min inkubacji w temp. pokojowej dodać po 4ml 0,1M NaOH |
enzymu i wymieszać | ||||
1 |
3,0 |
+ |
+ |
- |
2 |
3,0 |
- |
+ |
+ |
3 |
4,0 |
+ |
+ |
- |
4 |
4,0 |
- |
+ |
+ |
5 |
5,0 |
+ |
+ |
- |
6 |
5,0 |
- |
+ |
+ |
7 |
6,0 |
+ |
4- |
- |
8 |
6,0 |
- |
+ |
+ |
9 |
7,0 |
+ |
+ |
- |
10 |
7,0 |
- |
+ |
+ |
9