Wydział Chemiczny Politechniki Gda
ń
skiej
Katedra Technologii Leków i Biochemii
Kultury tkankowe i komórkowe ro
ś
lin i zwierz
ą
t
Izolacja DNA z komórki zwierz
ę
cej
Izolacja i oczyszczanie DNA jest kluczowym etapem wi
ę
kszo
ś
ci procedur stosowanych
w biologii molekularnej, diagnostyce i innych badaniach. Głównym celem tego etapu jest
uzyskanie wysokiej jako
ś
ci i czysto
ś
ci materiału biologicznego, niezale
ż
nie od
ź
ródła jego
pochodzenia. Wybór odpowiedniej metody izolacji zale
ż
y:
•
od rodzaju badanego kwasu nukleinowego jaki chcemy uzyska
ć
(DNA genomowe,
mitochondrialne, plazmidowe, RNA itd.),
•
pochodzenia (ro
ś
linne, zwierz
ę
ce, bakteryjne, wirusowe itd.),
•
rodzaju materiału z jakiego przeprowadzamy izolacj
ę
(z tkanek, organu, hodowli
komórkowej itd.),
•
oczekiwanych rezultatów (czysto
ść
, jako
ść
, czas izolacji itd.)
•
przeznaczenia (PCR, klonowanie, itd.).
Znanych jest wiele procedur izolacji DNA, w wyniku których otrzymuje si
ę
DNA:
biologicznie aktywne, chemicznie stabilne oraz wolne od RNA i białek. Jednak
ż
e ze
wzgl
ę
du na wielko
ść
i wra
ż
liwo
ść
chromosomalnego DNA praktycznie niemo
ż
liwa jest jego
izolacja w formie niezmienionej. Cz
ęść
DNA ulega mechanicznym uszkodzeniom.
Podczas izolacji DNA z komórki nale
ż
y wzi
ąć
pod uwag
ę
nast
ę
puj
ą
ce parametry,
warunkuj
ą
ce zachowanie natywnej struktury DNA:
1. ph:
•
wi
ą
zania
wodorowe
pomi
ę
dzy komplementarnymi ła
ń
cuchami s
ą
stabilne
w
ś
rodowisku o pH = 4 ÷ 10
•
wi
ą
zania fosfodiestrowe w szkielecie DNA s
ą
trwałe w zakresie pH = 3 ÷ 12
•
wi
ą
zania N-glikozydowe z zasadami purynowymi (adenin
ą
i guanin
ą
) ulegaj
ą
hydrolizie przy pH < 3
2. temperatura:
•
istniej
ą
znaczne ró
ż
nice w stabilno
ś
ci termicznej wi
ą
za
ń
wodorowych w podwójnej
spirali, ale wi
ę
kszo
ść
DNA ulega rozpleceniu w temperaturze 80÷90 °C
•
wi
ą
zania N-glikozydowe i fosfodiestrowe s
ą
trwałe do 100°C
3. siła jonowa :
•
DNA jest bardziej trwały i rozpuszczalny w roztworach soli
•
w st
ęż
eniu soli mniejszym ni
ż
0,1M osłabiaj
ą
si
ę
wi
ą
zania wodorowe pomi
ę
dzy
komplementarnymi ła
ń
cuchami;
4. warunki komórkowe:
•
przed uwolnieniem DNA konieczne jest rozbicie
ś
ciany komórkowej (komórki
grzybowe, bakteryjne i in.) i liza błon komórkowych (komórki zwierz
ę
ce i in.);
łatwo
ść
rozbicia
ś
ciany zale
ż
y od rodzaju organizmu, w niektórych przypadkach
konieczne jest intensywne ucieranie lub działanie ultrad
ź
wi
ę
kami (komórki dro
ż
d
ż
y,
tytoniu), podczas gdy w innych (E. coli) mo
ż
liwa jest enzymatyczna hydroliza
ś
ciany
komórkowej
•
w komórce wyst
ę
puje kilka enzymów, które hydrolizuj
ą
DNA; najistotniejszymi z nich
s
ą
deoksyrybonukleazy, które hydrolizuj
ą
wi
ą
zania fosfodiestrowe
•
natywny DNA wyst
ę
puje w komórkach w kompleksie z białkami (histony, helikazy,
polimerazy i in.), białka te musz
ą
by
ć
oddzielone podczas ekstrakcji;
5. odporno
ść
mechaniczna DNA:
•
łagodne manipulowanie nie zawsze jest mo
ż
liwe podczas izolacji DNA; ucieranie,
wytrz
ą
sanie, mieszanie i inne czynno
ś
ci mechaniczne mog
ą
spowodowa
ć
rozszczepienie DNA, zwykle nie powoduje to zniszczenia drugorz
ę
dowej struktury
DNA, ale zmniejsza długo
ść
cz
ą
steczki (fragmentacja).
Etapy izolacji DNA
Niezale
ż
nie od zastosowanej procedury wi
ę
kszo
ść
metod opiera si
ę
na kilku
podstawowych i niezmiennych etapach izolacji:
Etap 1. Wst
ę
pne przygotowanie materiału biologicznego do izolacji DNA
oczyszczenie, homogenizacja, zawieszenie w buforze
Materiałem wyj
ś
ciowym do izolacji DNA mo
ż
e by
ć
niemal ka
ż
dy materiał biologiczny
(tkanka, organ, zawiesina komórkowa i in.). W zale
ż
no
ś
ci od rodzaju, jak i pochodzenia
materiału, wst
ę
pne przygotowanie mo
ż
e obejmowa
ć
oczyszczenie z ró
ż
nego rodzaju
zanieczyszcze
ń
zewn
ę
trznych, po
ż
ywki i pozostało
ś
ci innych komórek (przemywanie
buforami stabilizuj
ą
cymi ), rozdrobnienie i homogenizacj
ę
, a nast
ę
pnie zawieszanie
jednolitej masy komórkowej w odpowiednim buforze.
Etap 2. Dezintegracja i liza komórek oraz uwolnienie DNA do roztworu, w którym jest
on rozpuszczalny i zabezpieczony przed degradacj
ą
rozbicie
ś
ciany i błony komórkowej
Dezintegracj
ę
komórek prowadzi si
ę
w zale
ż
no
ś
ci od rodzaju komórek i tkanek, np. poprzez
homogenizacj
ę
(mi
ę
kkie tkanki zwierz
ę
ce), sonifikacj
ę
(zawiesiny komórek), rozcieranie
(komórki ro
ś
linne, bakteryjne), liz
ę
detergentami (komórki z hodowli komórkowej), liz
ę
enzymatyczn
ą
(komórki bakteryjne, dro
ż
d
ż
owe)
uwolnienie DNA i innych komponentów wewn
ą
trzkomórkowych do roztworu
Destrukcji błon zewn
ę
trznych towarzyszy uwolnienie DNA oraz innych komponentów
wewn
ą
trzkomórkowych. St
ą
d bardzo istotne jest zachowanie odpowiednich warunków, aby
kwas nukleinowy nie uległ uszkodzeniom. Do rozpuszczenia DNA i lizy komórek słu
ż
y
roztwór soli, najcz
ęś
ciej NaCl, zawieraj
ą
cy Tris-HCl i EDTA. DNA, b
ę
d
ą
c zwi
ą
zkiem
jonowym jest bardziej stabilny i rozpuszczalny w roztworze NaCl ni
ż
w wodzie destylowanej.
Tris-HCl ma za zadanie utrzyma
ć
stałe, lekko zasadowe pH roztworu, co zmniejsza
oddziaływania elektrostatyczne pomi
ę
dzy DNA a zasadowymi białkami. EDTA wi
ąż
e jony
metali Cd
2+
, Mg
2+
,Mn
2+
, które mogłyby tworzy
ć
sole z anionowymi grupami fosforanowymi
DNA oraz hamuje działanie deoksyrybonukleaz, które wymagaj
ą
dla swojej aktywno
ś
ci
obecno
ś
ci jonów Mg
2+
lub Mn
2+
.
inaktywacja enzymów nukleolitycznych
Uwalniaj
ą
cy si
ę
z komórki kwas nukleinowy jest nara
ż
ony na działanie degraduj
ą
ce nukleaz
– enzymów katalizuj
ą
cych hydroliz
ę
1- i 2-niciowych kwasów nukleinowych (endo-, egzo-,
detoksy-, rybonukleazy i in.), przecinaj
ą
cych wi
ą
zania fosfodiestrowe. Unieczynnienie ich
prowadzi si
ę
silnymi enzymami proteolitycznymi (np. proteinaz
ą
K).
Etap 3. oddzielenie kwasu nukleinowego od pozostałych komponentów komórkowych
dysocjacja kompleksów DNA – białko
Celem zniesienia oddziaływa
ń
jonowych pomi
ę
dzy naładowanymi dodatnio histonami
i innymi białkami a ujemnie naładowanym szkieletem DNA stosuje si
ę
ró
ż
nego rodzaju
detergenty oraz sole. Sól sodowa siarczanu dodecylu (SDS) wi
ąż
e si
ę
z białkami i nadaje im
silnie anionowy charakter, a tak
ż
e działa jako czynnik denaturuj
ą
cy deoksyrybonukleazy
i inne białka. Łagodnie alkaliczne
ś
rodowisko (pH = 8,0) zmniejsza oddziaływania
elektrostatyczne pomi
ę
dzy DNA a zasadowymi histonami i polikationowymi aminami,
przyczynia si
ę
tak
ż
e do zmniejszenia aktywno
ś
ci nukleaz i denaturacji innych białek. Za
ś
sole w wysokich st
ęż
eniach (NaCl, NaClO4 lub inn
ą
sól) zapewniaj
ą
całkowit
ą
dysocjacj
ę
kompleksów DNA-białko i usuwaj
ą
zwi
ą
zane kationowe poliaminy;
oddzielenie DNA od innych rozpuszczalnych komponentów komórkowych
Całkowite odbiałczanie roztworu, przeprowadza si
ę
poprzez ekstrakcj
ę
rozpuszczalnikami
organicznymi, np. mieszanin
ą
chloroformu i alkoholu izoamylowego, a nast
ę
pnie
odwirowanie. W rezultacie powstaj
ą
trzy warstwy: górna faza wodna, zawieraj
ą
c
ą
kwasy
nukleinowe, dolna faza organiczna i w
ą
skie pasmo zdenaturowanego białka na granicy faz.
Chloroform powoduje powierzchniow
ą
denaturacj
ę
białek. Alkohol izoamylowy redukuje
pienienie i stabilizuje granic
ę
fazow
ą
, gdzie koncentruje si
ę
białko. Górna, wodna faza,
zawieraj
ą
ca kwasy nukleinowe jest nast
ę
pnie oddzielana i DNA jest wytr
ą
cany poprzez
dodanie etanolu.
Etap
4.
zag
ę
szczenie
preparatu
DNA
i
usuni
ę
cie
zanieczyszcze
ń
małocz
ą
steczkowych
uzyskanie roztworu DNA o po
żą
danej czysto
ś
ci i g
ę
sto
ś
ci
Po ekstrakcji kwasy nukleinowe znajduj
ą
si
ę
, przewa
ż
nie w du
ż
ym rozcie
ń
czeniu, w fazie
wodnej, zanieczyszczonej małocz
ą
steczkowymi zwi
ą
zkami. Dodaj
ą
c rozpuszczalnik
organiczny (np. etanol lub izopropanol) zmniejsza si
ę
polarno
ść
ś
rodowiska, co powoduje
zmniejszenie rozpuszczalno
ś
ci DNA, posiadaj
ą
cego struktur
ę
jonow
ą
i DNA tworzy
nitkowate osady, które mo
ż
na zebra
ć
poprzez odwirowanie. RNA w obecno
ś
ci alkoholu
etylowego zwykle nie str
ą
ca si
ę
tak jak DNA i wyst
ę
puje jedynie jako drobne
zanieczyszczenie, za
ś
przy precypitacji izopropanolem pozostaje w roztworze. Efektywno
ść
wytr
ą
cania kwasów nukleinowych zwi
ę
ksza si
ę
poprzez dodatek soli (np. NaCl, CH
3
COOH,
LiCl, MgCl, czy CH
3
COONH
4
).
Po wytr
ą
ceniu i przemyciu 70 % etanolem, DNA pozostawia si
ę
do wyschni
ę
cia i nast
ę
pnie
zawiesza w małej obj
ę
to
ś
ci buforu o niskiej sile jonowej (np. bufor TE) lub w wodzie.
Wykonanie
ć
wiczenia
Celem
ć
wiczenia jest izolacja DNA z komórek nowotworowych pochodzenia ludzkiego.
Materiały i sprz
ę
t
Zestaw do izolacji DNA z tkanek i linii komórkowych Genomic Mini AX Tissue
(A&A Biotechnology).
Materiały i sprz
ę
t:
•
komórki nowotworowe
1x10
6
•
70% EtOH
0,5ml
•
bufor TE
0,1ml
•
probówki Eppendorfa
•
probówki 15ml z kolumn
ą
•
pipety automatyczne
•
wirówka Eppendorfa 12 000 – 14 000 obr/min
•
termoblok
•
worteks
Izolacja DNA z wykorzystaniem zestawu Genomic Mini AX Tissue (A&A Biotechnology)
1. Do pelletu komórek nowotworowych doda
ć
0,9ml zawiesiny lizuj
ą
cej LS (
uwaga
:
zawiesin
ę
nale
ż
y wymiesza
ć
przez kilkukrotne odwracanie butelki) oraz 40µl Proteazy
LS składa si
ę
z:
Tritonu X-100
Chlorowodorku guanidyny
Bufor MOPS
2. Cało
ść
wymiesza
ć
i inkubowa
ć
w 50°C przez 30 min. Probówk
ę
nale
ż
y miesza
ć
od
czasu do czasu przez worteksowanie.
3. Po inkubacji próbk
ę
intensywnie worteksowa
ć
przez 15 sek., a nast
ę
pnie wirowa
ć
5 min.
przy 10 000 – 14 000 obr./min.
4. Podczas wirowania nanie
ść
na kolumn
ę
0,8ml roztworu równowa
ż
acego K1. Poczeka
ć
a
ż
roztwór wypłynie z kolumny.
5. Pobra
ć
supernatant
(na dnie powinien znajdowa
ć
si
ę
zwarty osad stanowi
ą
cy mieszanin
ę
niezlizowanego materiału oraz drobinek pochodz
ą
cych z mieszaniny lizuj
ą
cej)
i nanie
ść
go na kolumn
ę
umieszczon
ą
w probówce 15 ml. Poczeka
ć
a
ż
lizat przejdzie przez
kolumn
ę
.
6. Nast
ę
pnie dwukrotnie przepłuka
ć
kolumn
ę
przez dodanie 1,5 ml roztworu płucz
ą
cego
K2. Za ka
ż
dym razem poczeka
ć
a
ż
roztwór wypłynie z kolumny.
Skład roztworu K2:
0,8M NaCl
15% izopropanol
Bufor MOPS
7. Doda
ć
do kolumny 0,25 ml roztworu elucyjnego K3 i poczeka
ć
a
ż
wypłynie z kolumny
(krok ten ma na celu zmniejszenie całkowitej obj
ę
to
ś
ci eluatu, gdy
ż
martwa obj
ę
to
ść
kolumny wynosi 0,3ml)
.
Skład roztworu K3:
1,2M NaCl
15% izopropanol
bufor Tris-HCl, pH=8,0
8. Przenie
ść
kolumn
ę
do nowej probówki 2 ml, która posiada odpowiednie
ż
eberka
pozwalaj
ą
ce na łatwe umieszczenie w probówce i eluowa
ć
DNA przez dodanie do
kolumny 1 ml roztworu elucyjnego K3.
9. Do eluatu zwieraj
ą
cego DNA doda
ć
0,8 ml mieszaniny precypitacyjnej PM. Cało
ść
wymiesza
ć
i wirowa
ć
10 min. przy 12 000 obr./min (
uwaga
: roztwór PM zawiera
dodatkowo wzmacniacz precypitacji, dlatego przed u
ż
yciem nale
ż
y go wymiesza
ć
przez
kilkukrotne odwracanie butelki).
Skład PM:
izopropanol
akrylami liniowy (wzmacniacz precypitacji)
10. Po odwirowaniu zla
ć
supernatant (
na dnie powinien by
ć
widoczny jasnoniebieski osad
DNA)
i doda
ć
do probówki 0,5 ml 70% EtOH, w celu wytr
ą
cenia DNA. Próbk
ę
wymiesza
ć
i wirowa
ć
3 min. przy 12 000 obr./min.
11. Po odwirowaniu zla
ć
supernatant i trzymaj
ą
c probówk
ę
w pozycji odwróconej, przytkn
ąć
sam
ą
ko
ń
cówk
ę
pipety (bez pipety) do dna i
ś
cianek probówki celem kapilarnego
usuni
ę
cia resztek alkoholu. Nast
ę
pnie suszy
ć
odwrócon
ą
do góry dnem probówk
ę
przez
5 min. w temp. pokojowej.
12. Osad zawiesi
ć
w 20
µ
l buforu TE
(niebieska barwa osadu pozwala kontrolowa
ć
proces
rozpuszczania DNA)
.
OPRACOWANIE WYNIKÓW
1. Opisa
ć
procedur
ę
izolacji DNA z komórki zwierz
ę
cej i wyja
ś
ni
ć
cel ka
ż
dego etapu
i rol
ę
ka
ż
dego odczynnika.
2.
Scharakteryzowa
ć
inny ni
ż
Arabidopsis thaliana ro
ś
linny organizm modelowy.
3.
Wymieni
ć
główne ró
ż
nice mi
ę
dzy genomem komórki ro
ś
linnej i zwierz
ę
cej.
Literatura uzupełniaj
ą
ca
1. Brown TA. Genomy. Warszawa, PWN 2001
2. Bryszewska M, Leyko W. Biofizyka kwasów nukleinowych dla biologów. Warszawa: PWN
2000
3. Kłyszejko – Stefanowicz L.
Ć
wiczenia z biochemi. Warszawa, PWN 1999
4. Stryer L. Biochemia. Warszawa, PWN 2000.