Transplantologia jest jedna z najszybciej rozwijających
się gałęzi medycyny , jej dynamiczny postęp w ciągu
ostatnich kilkudziesięciu lat dał szansę wyleczenia
wielu chorych , dla których wcześniej nie było ratunku.
W roku 2004 minęła 50 rocznica pierwszego udanego
przeszczepienia nerki . Był to przeszczep izogeniczny ,
wykonany w Bostonie między bliźniakami
monozygotycznymi.
W Polsce w 1966 roku przeszczepianie nerek
pobranych ze zwłok rozpoczęli Nielubowicz i Orłowski .
W wielu ośrodkach naszego kraju przeprowadza się
udane zabiegi przeszczepienia nerek , wątroby ,serca ,
szpiku i trzustki , wysp trzustkowych ,płuc,
fragmentów jelita ,tchawicę czy krtań.
W zależności od różnicy genetycznej miedzy
dawcą a biorcą wyróżnia się następujące rodzaje
przeszczepów:
Autogeniczny (autologiczny), kiedy dawcą i biorcą
jest ten sam osobnik
Izogeniczny (syngeniczny ),między identycznymi
osobnikami tego samego gatunku (bliźnięta
monozygotyczne, szczepy wsobne u zwierząt
Allogeniczny ,między różnymi genetycznie
osobnikami tego samego gatunku
Ksenogeniczny , między osobnikami odmiennych
gatunków
Główny układ zgodności tkankowej człowieka -
HLA (human leukocyte antigens), został tak
nazwany ponieważ antygeny tego układu po raz
pierwszy wykryto na krwinkach białych.
Jest on układem wybitnie polimorficznym.
Kompleks genów układu HLA umiejscowiony jest
na chromosomie szóstym.
Obejmuje on ponad cztery miliony par zasad i
zawiera ponad sto genów.
Produkty genów układu HLA można podzielić na
cząsteczki klasy I - HLA -A ,-B, -C ,cząsteczki klasy
II -HLA- DP ,-DQ ,- DR oraz cząsteczki klasy III.
Główny układ zgodności tkankowej(major
histocompatibility complex –MHC)odkryto przy
okazji badań dotyczących odrzucania
przeszczepów skóry u myszy.
Antygeny odpowiedzialne za odrzucanie
przeszczepu allogenicznego nazwano
antygenami transplantacyjnymi lub antygenami
zgodności tkankowej.
Zespół kodujących je genów określono jako
główny układ zgodności tkankowej w odróżnieniu
od genów kodujących „słabe” antygeny
zgodności tkankowej.
Za badania nad układem zgodności tkankowej
badacz francuski Dausset oraz badacze
amerykańscy Snell i Benacerraf otrzymali W 1980
roku Nagrodę Nobla.
Cząsteczki MHC są glikoproteinami .Istnieją
cząsteczki MHC klasy I i klasy II, różniące się
zarówno pod względem budowy , jak i funkcji , a
także cząsteczki klasy III.
Cząsteczki MHC klasy I występują na powierzchni
wszystkich komórek jądrzastych , a niewielkich
ilościach również na erytrocytach. Cząsteczki
klasy II- głównie na limfocytach B ,makrofagach ,
komórkach dendrytycznych.
Zasadnicza rola tych antygenów polega na
prezentacji obcych antygenów własnym
limfocytom T i często używa się wobec nich
terminu cząsteczki MHC.
MHC obejmuje wiele genów odznaczających
się największym polimorfizmem z
dotychczas poznanych i że mają one
podstawowe znaczenie zarówno w inicjacji
,jak i w fazie efektorowej odpowiedzi
immunologicznej .
Poziom ekspresji cząsteczek HLA może się różnić.
Np. ekspresja cząsteczek HLA - C jest
dziesięciokrotnie mniejsza niż cząsteczek HLA - A
i HLA -B.
Cząsteczki MHC klasy I człowieka można podzielić
na klasyczne – należące do klasy I a (HLA -A, -B ,-
C ) oraz nieklasyczne należące do klasy I b (HLA
-F i - G oraz MICA MIBA).
Poza klasycznymi cząsteczkami MHC klasy II u
człowieka występują również nieklasyczne
cząsteczki MHC klasy II :HLA- DM , HLA -DO.
Do cząsteczek MHC klasy III należy wiele białek
,np. :składniki dopełniacza C2,C4 i czynnik B.
Cząsteczki MHC klasy I są zbudowane z dwóch
łańcuchów: lekkiego i ciężkiego połączonych ze
sobą niekonwalencyjnie.
Łańcuch lekki –β2 mikroglobulina (β2) jest u
człowieka identyczny we wszystkich cząsteczkach
MHC klasy I .
Łańcuch ciężki α składa się z trzech domen.
Dwie zewnętrzne domeny (α1,α2) odznaczają się
polimorfizmem ,który jest podstawą różnic
między cząsteczkami MHC klasy I.
Cząsteczki MHC klasy II są zbudowane z dwóch
łańcuchów α i β połączonych ze sobą
niekowalencyjnie.
Domeny zewnętrzne (α1, β1) obydwu łańcuchów
tworzą rowek podobny do tego ,który tworzą
domeny α1, α2 łańcucha ciężkiego cząsteczek
MHC klasy I.
Do niedawna wykluczano przeszczepy niezgodne
pod względem układu grupowego krwi ABO,
jednak ze względu na pogłębiającą się
dysproporcję miedzy liczba dawców a liczbą
oczekujących biorców na przeszczepienie
podejmuje się próby ominięcia tej bariery i
przeszczepianie ze zgodną grupą krwi(np. dawca
narządów grupy O dla biorców A , AB , B)
Inne układy grupowe krwi nie odgrywają
znaczącej roli przy doborze dawcy i biorcy.
Cząsteczki układu Rh nie występują na innych
komórkach niż erytrocyty.
Proces doboru odpowiedniego dawcy i biorcy nosi
nazwę typowania tkankowego. Dawca i biorca
powinni wykazywać jak najwięcej wspólnych
antygenów HLA oraz biorca nie powinien być
wcześniej uczulony antygenami
dawcy( wykładnikiem jest brak w surowicy
przeciwciał przeciwko antygenom dawcy).
Ponieważ cząsteczki MHC są głównymi
antygenami indukującymi odpowiedź na
przeszczep , można przypuszczać ,że
maksymalna zgodność między dawcą i biorcą
stanowi sposób na osiągnięcie najlepszych
wyników leczenia .
Przypuszczenie to znajduje potwierdzenie w
wynikach transplantacji nerek uzyskanych od
żywych dawców.
Przeżycie przeszczepów było najlepsze , gdy
dawca i biorca nie różnili się antygenami HLA.
Szansa na dobranie biorcy o identycznych HLA
jest niezwykle mała , choć istnienie zjawiska
niezrównoważenia sprzężeń oraz częste
występowanie pewnych antygenów HLA zwiększa
prawdopodobieństwo ,że przypadkowo wybrana
para dawca i biorca będzie miała identyczne HLA.
Stosuje się strategię doboru najbardziej zgodnego
biorcy do dawcy o określonym zestawie
antygenów HLA.
Jako zasadę preferuje się pary o jak najmniejszej
liczbie niezgodnych antygenów ( mismatch ), niż
zestawienie dawcy z biorcą o największej liczbie
zgodnych antygenów.
Najlepsze wyniki zapewnia zgodność w zakresie
HLA -DR i HLA -B. Dodatkowa zgodność w locus A
ma niewielki korzystny wpływ , natomiast nie ma
znaczenia dobór w zakresie HLA –C .
Efekt niezgodności w obrębie HLA –DR zaznacza
się już w ciągu 6 miesięcy od transplantacji
różnice przeżycia nerek od dawców niezgodnych
w zakresie HLA - A stają się wykrywalne dopiero
po 2 latach od zabiegu.
Wprowadzenie bardziej skutecznych leków
immunosupresyjnych nie zmieniło w sposób
znaczący roli doboru tkankowego.
Na przykładzie przeszczepienia nerek
pochodzących ze zwłok można prześledzić wpływ
zgodności HLA na powodzenie transplantacji :
- brak niezgodności w zakresie HLA- A ,-B, -DR
daje 65%szansy na co najmniej 10 letniego
funkcjonowania przeszczepu , a czas jego
półtrwania szacuje się na 20lat.
- jeden niezgodny antygen w locus HLA – A, -B,-
DR- 40-50 % szansy , czas półtrwania 10- 12 lat
Lepszy dobór w zakresie HLA zmniejsza częstość
epizodów ostrego odrzucania w ciągu 1 roku po
transplantacji oraz obniża ryzyko powstawania
zmian przewlekłych.
Cząsteczki MHC klasy I kodowane przez różne
allele tego samego locus można zgrupować w
”rodziny” cząsteczek o zbliżonej budowie ,które
następnie dzielą się na antygeny o niewielkich
odrębnościach .Bardziej dokładny dobór dawcy i
biorcy ,uwzględniający istnienie wspomnianych „
splitów”, poprawia wyniki transplantacji.
Okazuje się ,że pewne antygeny HLA –A i HLA -B
mogą wykazywać zbliżoną zdolność do indukcji
swoistych przeciwciał .
Te grupy antygenów przyjęto określać skrótem
CREG(cross - reakting groups ) i ich posiadanie
zarówno przez dawcę ,jak i przez biorcę
zmniejsza prawdopodobieństwo wystąpienia
swoistych przeciwciał anty –HLA.
Kombinacje „zabronione” tabu zwiększają ryzyko
utraty narządu.
Pewne niezgodności nie mają większego
znaczenia dla dalszych losów przeszczepu i
określa się je mianem „dopuszczalnych”
(permissible mismatch).
Cząsteczka MHC ma na swojej powierzchni 4 -5
regionów ,które zawierają odrębne epitopy .
Biorca o określonym MHC może pewne z tych
epitopów rozpoznawać jako silne ( efekt tabu) ,a
inne jako słabe immunogenny (dopuszczalna
niezgodność).
Kilkanaście procent HLA identycznych nerek
zostaje utraconych w wyniku różnic w tak
zwanych słabych antygenach zgodności
tkankowej.
Różnice genetyczne między dawcą a biorcą
sprawiają ,że układ odpornościowy biorcy
rozpoznaje antygeny przeszczepu jako obce i
uruchamia reakcję (odrzucanie) dążącą do jego
zniszczenia.
Odpowiedź na antygeny przeszczepu wymaga
rozpoznania ich i aktywacji odpowiednich
swoistych wobec tych antygenów klonów
limfocytów T.
W jej przebiegu zostają pobudzone limfocyty T
pomocnicze ,które stymulują limfocyty B do
wytwarzania swoistych przeciwciał, a także
zwiększają aktywność limfocytów
cytotoksycznych ,makrofagów i komórek NK
wobec komórek przeszczepu.
Równocześnie , w trakcie reakcji odrzucania
dochodzi do bezpośredniej indukcji i proliferacji
swoistych limfocytów T cytotoksycznych.
W przebiegu odpowiedzi na antygeny
przeszczepu można wyróżnić :
Fazę indukcji odpowiedzi ( aferentną ) ,w czasie
której dochodzi do prezentacji i rozpoznania
obcych antygenów.
Fazę efektorową( eferentną ), w której zostają
uruchomione swoiste i nieswoiste mechanizmy
odpowiedzi na przeszczep.
W obrębie układu HLA co najmniej trzy geny
:HLA - A , HLA- B,HLA-BRB1 występują np. w
postaci kilkuset alleli. Nie ma innego genu ,który
by im się równał pod względem stopnia
polimorfizmu.
Najważniejszą funkcja cząsteczek MHC jest
wiązanie i prezentacja antygenów limfocytom T.
Zdolne są do niej prawie wszystkie komórki i
odbywa się ona różnymi drogami w zależności od
tego ,czy dotyczy cząsteczek MHC klasy I ,czy
MHC klasy II.
Rozpuszczalne cząsteczki MHC występujące w
niewielkich ilościach w osoczu krwi wydają się
brać udział w immunomodulacji.
Głównym ich źródłem jest wątroba. Od tej
właściwości wątroby zależy jej skłonność do
indukowania tolerancji transplantacyjnej po jej
przeszczepieniu.
Rozpuszczalne cząsteczki MHC dawcy mogą
blokować rozpoznające je przeciwciała i limfocyty
Tc ,a nawet indukować ich apoptozę.
Cząsteczki MHC wiążą antygeny podobnie jak to
czynią immunoglobuliny ,choć ze znacznie
mniejszą swoistością i z różnym skutkiem.
Cząsteczki MHC są kodowane przez geny
należące do nadrodziny genów
immunoglobulinopodobnych.
Bardzo ciekawym zjawiskiem związanym z
głównym układem zgodności tkankowej jest tak
zwane niezrównoważenie sprzężeń.
Jeżeli allel x genu A występuje w haplotypach
danej populacji z częstotliwością 10% ,a allel y
genu B z częstotliwością np., 20% ,to łatwo
obliczyć ,że w około 2% haplotypów allele te
będą występowały razem.Czasami to zjawisko
dotyczy wielu alleli genów leżących obok siebie ,
przykładem może być kombinacja alleli
kodujących cząsteczki HLA-A1, B-8 i DR-3.Jest to
najczęściej występujący haplotyp u
przedstawicieli rasy kaukaskiej.
Najstarszą ,rzadko już używana metodą
identyfikacji HLA jest typowanie serologiczne ,
wykorzystujące reakcje wiązania swoistych
przeciwciał z antygenami na powierzchni
komórek ,najczęściej limfocytów . Wady tej
metody : brak możliwości różnicowania dużej
części znanych wariantów allelicznych HLA
(dotyczy to szczególnie cząsteczek MHC klasy
II),konieczność wykorzystywania do badania
żywych komórek.
Metodą identyfikacji cząsteczek MHC klasy II
,która wychodzi także z użycia jest typowanie
serologiczne oparte na mieszanej hodowli
limfocytów czyli MLC.
Najbardziej powszechnym sposobem typowania
HLA jest typowanie genetyczne ,wykorzystujące
analizę polimorfizmu na poziomi DNA.
Podstawą interpretacji jest jednoznaczna
zależność między sekwencją nukleotydową DNA a
sekwencją aminokwasów kodowanego białka (kod
genetyczny).
Zalety: możliwość rozróżnienia praktycznie
wszystkich alleli, znikomy odsetek błędów , łatwa
standaryzacja oraz możliwość badania martwych
komórek.
Najczęściej używane metody typowania
genetycznego to metoda hybrydyzacyjna (dot
blot i reverse dot blot),swoista w stosunku do
sekwencji reakcja PCR.
Coraz szerzej stosowane jest typowanie oparte na
sekwencjonowaniu DNA (SBT).
Najszybszą metodą typowania HLA jest metoda
PCR – SSP , gdyż wyniki znane są bezpośrednio
po zakończeniu reakcji PCR.W innych metodach
wykonanie PCR jest jedynie wstępem do
właściwego typowania.
Metoda PCR- SSP wykorzystuje zależność reakcji
PCR od zgodności między sekwencją starterów a
sekwencjami obecnymi w badanym DNA.
Typowanie to polega na przeprowadzeniu szeregu
reakcji PCR z różnymi parami starterów
,dobranymi tak , by poszczególne pary
umożliwiały reakcję tylko w wypadku obecności
określonego allelu lub grupy alleli.
Typowanie HLA jest istotne w transplantologii
ponieważ zgodność HLA między dawcą a biorcą
zmniejsza ryzyko odrzucenia przeszczepu.
Efekt ten jest silny przy przeszczepach szpiku
,słabszy ,choć wyraźny, przy przeszczepach nerek
, serca a najsłabszy w przypadku przeszczepienia
wątroby.
Słabe antygeny zgodności tkankowej tworzą
bardzo heterogenną grupę peptydów i
najczęściej definiowane są jako antygeny
zgodności tkankowej nie kodowane przez
MHC.
Określenie „słabe” jest mylące , gdyż
niektóre z tych antygenów indukują
odpowiedź transplantacyjną silniejszą niż
indukowana przez określone antygeny MHC
i nawet niezgodność w obrębie jednego z
nich może prowadzic do odrzucenia
przeszczepu.
Nawet jeśli biorca i dawca są zgodni pod
względem HLA ,to jeżeli nie są bliźniętami
monozygotycznymi ,mogą się różnić pod
względem innych genów i białek . Peptyd
jednego z takich białek łączy się z
cząsteczką HLA w kompleks. Kompleks
różni się kształtem u biorcy i u dawcy,
limfocyty biorcy rozpoznają cząsteczkę HLA
połączoną z obcym peptydem i mogą
inicjować odrzucanie przeszczepu.