weterynaria artykul 2011 01 31321

background image

CHOROBY ZAKAŹNE

WETERYNARIA W PRAKTYCE

52

www.weterynaria.elamed.pl

STYCZEŃ-LUTY • 1-2/2011

utrzymywania się przeciwciał matczynych
pierwsze szczepienie zaleca się wykonać
w 8.-10. tygodniu życia, po 3-4 tygodniach
należy je powtórzyć. Jeśli w danym środo-
wisku choroba nabiera charakteru ende-
micznego, zaleca się rutynowe szczepie-
nia raz w roku (4).

B

ORDETELOZA

KOTÓW

Obecnie uważa się, że Bordetella bronchi-
septica
może mieć istotne znaczenie w pa-
togenezie chorób układu oddechowego
u kotów, jednak czy choroba ujawni się
klinicznie zależy od wielu czynników, jak:
niski poziom higieny, osłabienie odporno-
ści, stłoczenie zwierząt i obecność wirusów
atakujących układ oddechowy (FHV-1 –
herpeswirus typu 1 oraz FCV – kaliciwirus
koci). B. bronchiseptica jest często izolowa-
na od zwierząt zdrowych, wysoka jest tak-
że seroprewalencja – w zależności od typu
badanej populacji wynosi ona od 24%
do 79% (5, 6, 7). Dlatego prawdopodob-
nie z populacji kotów rola tego patogenu
jako czynnika odpowiedzialnego za infek-
cje dróg oddechowych u kotów jest często
niewielka. Choroba stanowi realne zagro-
żenie w skupiskach kotów, jak schroniska
czy hodowle, gdzie znaczna część kotów
klinicznie zdrowych lub po przechorowa-
niu jest nosicielem wirusa nawet do 19 ty-
godni po zakażeniu (8). Patogen ten może
być również przenoszony pomiędzy psami
i kotami, co potwierdziły eksperymental-
ne kontakty chorych psów z grupą zdro-
wych kotów (9).

W niektórych krajach dostępne są dono-

sowe szczepionki przeciwko B. bronchisepti-
ca
. Preparaty te zawierają żywe atenuowane
zarazki. Po ich podaniu możliwe są łagodne
objawy uboczne w postaci kichania i wy-
pływu z nosa. Zastosowanie tych szczepio-
nek nie jest działaniem rutynowym i po-
winno być podjęte jedynie w przypadku,
gdy bordeteloza stanowi problem. Po jed-
norazowym podaniu szczepionki odpor-
ność poszczepienna utrzymuje się przez ok.
rok (10). Szczepionka nie powinna być po-
dawana kociętom poniżej 4. tygodnia życia
i zwierzętom w trakcie antybiotykoterapii.
Z żywej szczepionki należy zrezygnować
także, jeśli wiadomo, że zwierzę cechuje się

Szczepienia przeciwbakteryjne i przeciw-
grzybicze nie są powszechnie wykonywa-
ne zarówno u psów, jak i kotów, choć na-
leży je, podobnie jak szczepienia przeciwko
zakażeniom wirusowym, traktować jako
procedurę medyczną będącą wypadkową
zysku (niewrażliwości na zakażenie) i ry-
zyka zakażenia.

Stąd też w poniższej publikacji przedsta-

wiono mało popularne, zależne od indywi-
dualnych uwarunkowań możliwości zasto-
sowania szczepień ochronnych przeciwko
zakażeniom bakteryjnym. Również o mało
powszechnych szczepieniach przeciwko
dermatofi tom pisano w numerze 3/2009
„Weterynarii w Praktyce”.

C

HLAMYDOFILOZA

KOTÓW

Chlamydophila felis wywołuje u kotów ostre
lub przewlekłe zapalenie spojówek. Spo-
radycznie jest odpowiedzialna za infekcje
górnych i dolnych dróg oddechowych. Od-
porność na ten patogen zwiększa się wraz
z wiekiem kotów (1, 2). Do ok. 8. tygodnia
życia utrzymują się przeciwciała matczyne,
a wraz z ich spadkiem zwiększa się podat-
ność na infekcje. Najczęściej chorują koty
między 2. a 6. miesiącem życia, a powy-
żej 5. roku życia zachorowania stwierdza
się sporadycznie. Dostępne szczepionki
przeciwko chlamydofi lozie zawierają żywy
osłabiony lub inaktywowany patogen. Do-
stępne są preparaty złożone, uodparniają-
ce także przeciwko najczęściej występują-
cym zakażeniom wirusowym kotów. Żadna
z tych szczepionek nie daje pełnej ochro-
ny przed zakażeniem chlamydofi lozą – nie
zapobiega namnażaniu się oraz siewstwu
zarazka. Objawy kliniczne obserwowane
u kotów szczepionych są znacznie łagod-
niejsze w porównaniu do tych obserwowa-
nych u zwierząt nieszczepionych. Dodatko-
wo u kotów uodpornionych szczepionką
żywą atenuowaną sporadycznie stwier-
dzano efekty uboczne w postaci gorączki,
apatii, braku apetytu i bolesności kończyn
utrzymujące się nawet do 3 tygodni (3).

Rutynowe szczepienie przeciwko chla-

mydofilozie kotów nie jest konieczne.
Szczepienie to należy rozważyć w hodow-
lach, gdzie zwierzęta żyją w stłoczeniu i na-
rażeniu na duży stres. Ze względu na okres

dr hab. n. wet. Krzysztof Rypuła, lek. wet. Aleksandra Kumala

Zakład Chorób Zakaźnych i Administracji Weterynaryjnej Wydziału Medycyny Weterynaryjnej Uniwersytetu Przyrodniczego we Wrocławiu

Abstract

Antibacterial and antifungal vaccina-
tions are administered to dogs and
cats mostly when infection with these
pathogens is possible. Regardless of
their utility limitations, including their
availability, vaccination is an impor-
tant procedure in specifi c prophylaxis,
especially in a large group of animals.
To achieve the full effi cacy of the exa-
mination as described above it must be
preceded by a diagnosis confi rming the
infection in the group.

Key words

vaccination, bacterial disease, dogs,
cats

Streszczenie

Szczepienia przeciwbakteryjne i przeciw-
grzybicze są wykonywane u psów i kotów
głównie w sytuacjach zagrożenia zaka-
żeniem tymi patogenami. Mimo dużych
ograniczeń w ich stosowaniu, głównie
dostępności, stanowią one ważny ele-
ment w postępowaniu swoistym ogra-
niczającym zachorowania, szczególnie
w dużych skupiskach zwierząt. Jednakże
by przedstawione w poniższym artyku-
le postępowanie było skuteczne, musi
być poprzedzone wykonaniem badania
diagnostycznego potwierdzającego za-
każenie w danej grupie zwierząt.

Słowa kluczowe

szczepienia, choroby bakteryjne, psy,
koty

Profi laktyka swoista
w chorobach bakteryjnych

SPECIFIC PROPHYLAXIS IN BACTERIAL DISEASES

background image

CHOROBY ZAKAŹNE

WETERYNARIA W PRAKTYCE

54

www.weterynaria.elamed.pl

STYCZEŃ-LUTY • 1-2/2011

obniżoną odpornością ze względu na okre-
sowe siewstwo poszczepienne i możliwość
transmisji zarazka na człowieka (11).

M

YKOPLAZMOZA

Mykoplazmy zarówno u psów, jak i u ko-
tów mogą być zaangażowane w szereg
chorób dotyczących błon śluzowych oraz
surowiczych górnych i dolnych dróg od-
dechowych, układu moczowo-płciowe-
go, zapaleń stawów, gruczołu mlekowe-
go oraz spojówek. M. felis jest przyczyną
ok. 25% zakażeń spojówek stwierdzanych
u kotów. Do tej pory brak szczepień prze-
ciwko tym patogenom. Zaniechano badań
nad donosową szczepionką ze względu
na konieczność użycia adjuwantu toksy-
ny cholery (12).

L

EPTOSPIROZA

PSÓW

Leptospiroza to choroba wielu gatunków
zwierząt przenoszona poprzez kontakt bez-
pośredni lub kontakt pośredni, co jest waż-
ne w epizootiologii tych zakażeń, podobnie
jak to, że baterie te nie namnażają się poza
organizmem żywiciela. Dodatkowo często-
tliwość wyników dodatnich uzyskiwanych
w badaniach serologicznych często nie ko-
responduje z objawami klinicznymi choro-
by, co wskazuje na zakażenia bezobjawowe,
a to budzi wątpliwości w sytuacjach dia-
gnostyki tych zakażeń i podjęcia ewentu-
alnych szczepień ochronnych (13).

Podejmując się szczepienia przeciwko

zakażeniu leptospirami, należy wspomnieć
o historii tych szczepień. Wprowadzenie
w latach 70. szczepień przeciwko zaka-
żeniu leptospirami ograniczało się do za-
pobiegania chorobom wywołanym przez
drobnoustroje z serowaru canicola i ictero-
haemorrhagiae
. Obie serogrupy były pierw-
szymi, które identyfi kowano u psów z ob-
jawami leptospirozy, stąd też one znalazły
jako pierwsze zastosowanie w immuno-
profi laktyce u psów. Zatem wieloletnie sto-
sowanie szczepień u tego gatunku dopro-
wadziło do znacznego spadku zachorowań
powodowanych przez te serowary, a tym
samym znacząco wzrosła liczba zachoro-
wań powodowanych przez inne serowary,
jak: grippotyphosa, pomona i bratislava oraz
w mniejszym stopniu hardjo, autumnalis,
tarrasovi i australis (14).

To sprawia, że wskazane jest wykony-

wanie badań w kierunku zakażenia lepto-
spirami, szczególnie u psów z objawami
niewydolności nerek, objawami grypo-
podobnymi czy wskazującymi na uszko-
dzenie wątroby. Określenie serotypu bę-
dącego przyczyną zachorowań na danym
terenie umożliwi skuteczniejsze zapobie-
ganie tej chorobie, dzięki poznaniu dróg
transmisji oraz wprowadzeniu szczepień
przeciwko aktualnie zagrażającym sero-
warom leptospir.

Dostępne na rynku szczepionki prze-

ciwko leptospirozie psów zawierające in-
aktywowane serotypy icterohaemorrhagiae
oraz canicola nie zabezpieczają psów przed
zagrażającymi im i dominującymi obec-
nie serotypami. Szczepionki dla zwierząt
gospodarskich (np. Leptoferm 5

®

) zawie-

rają szerszy zakres serotypów (grippoty-
phosa, hardjo, pomona, canicola, icteroha-
emorrhagiae
), jednak ich zastosowanie nie
daje wystarczającej ochrony psów przed
zakażeniem (15). Dodatkowo szczepion-
ki zawierające zabite hodowle leptospir
są słabo immunogenne i indukują niskie
miana przeciwciał (do 1:400), które utrzy-
mują się do 3, maksymalnie 6-8 miesięcy.
W miarę skuteczną ochronę zapewniłoby
2-krotne szczepienie co najmniej 2 razy
w roku (16).

Dodatkowo ważny jest fakt, iż ze wzglę-

du na obecność w tych szczepionkach
całych korpuskół lub ściany bakterii –
pierwsze szczepienie należy przeprowa-
dzić dwukrotnie w odstępie 2-3 tygodni
przy uwzględnieniu, iż szczepienia poniżej
9. tygodnia życia nie są zalecane, a najlepiej
jeśli rozpocznie się je dopiero od 12. tygo-
dnia życia lub później ze względu na moż-
liwość wystąpienia poszczepiennej reak-
cji alergicznej.

Pewnym wzorem do postępowania może

być bydło, gdzie w stadach zagrożonych za-
każeniem przy typowym dla tego gatun-
ku programie szczepień uwzględnia się
okres braku ochrony do momentu wy-
kształcenia odporności poszczepiennej, tj.
około 30 dni, zabezpieczając w tym czasie
zwierzęta poprzez doustne podawanie te-
tracyklin. Taki program szczepień psów
znajdowałby uzasadnienie w hodowlach
o podwyższonym ryzyku zakażeń leptospi-
rami, m.in.: u psów myśliwskich, w ośrod-
kach tresury psów na terenach podmo-
kłych czy na obszarach endemicznego
występowania leptospirozy. Należy również
uwzględnić fakt, że szczepienie nie zabez-
piecza psów przed nosicielstwem i siew-
stwem leptospir. Zatem podstawą zwal-
czania leptospirozy psów powinno być
uwrażliwienie lekarzy weterynarii i ujęcie
tej choroby m.in. w przypadkach niewydol-
ności nerek. Potwierdzenie zakażenia lep-
tospirami jest ważne nie tylko ze względu
na epizootiologię, ale także z uwagi na wła-
ściwe ukierunkowanie terapii. Drugą istot-
ną kwestią jest uświadomienie właścicie-
lom psów potencjalnego zagrożenia dla
człowieka poprzez kontakt z moczem za-
każonego psa (17).

Duże nadzieje wiąże się z wykorzysta-

niem antygenów LPS do immunizacji
zwierząt, jednakże one, w odróżnieniu
od antygenów białkowych, odpowiedzial-
ne są jedynie za wykształcenie poszcze-
piennej odporności homologicznej. Z kolei

szczepionki podjednostkowe i rekombino-
wane cechuje szerokie spektrum ochron-
ne oraz brak nadwrażliwości na zawarte
w nich antygeny.

B

ORELIOZA

PSÓW

Borelioza jest chorobą odkleszczową,
a ze względu na różnorodność gatunków,
u których Borrelia burgdorferi może powo-
dować zakażenia u psów. Trudności w po-
twierdzeniu choroby sprawiają, że brak
danych określających częstotliwość zacho-
rowań i rozmieszczenie geografi czne tych
zakażeń zarówno u ludzi, jak i zwierząt. Sy-
tuacja ta może być powodem ograniczonej
skuteczności lub źle prowadzonych szcze-
pień ochronnych, dlatego też nie poleca
się szczepień jako jedynej metody zapo-
biegania chorobie po kontakcie z zakażo-
nym kleszczem.

Podejmując szczepienie przeciwko Bor-

relia burgdorferi, należy w pierwszym eta-
pie kwalifi kacji określić miejsce bytowania
zwierzęcia, częstotliwość przemieszczania
oraz miejsca docelowe podróży. W pierw-
szej kolejności szczepieniu poddajemy psy
polujące i pracujące na terenach endemicz-
nego występowania kleszczy (lasy, jezio-
ra). W odniesieniu do wieku, kiedy roz-
poczynamy szczepienie, jest to 4., 6., 9. lub
12. tydzień życia zwierzęcia, co uzależniamy
od stosowanego preparatu podanego pod-
skórnie lub domięśniowo. Drugie szcze-
pienie należy wykonać po 3 tygodniach,
a kolejne dawki przypominające w odstę-
pie roku. Należy podkreślić, że preparaty
podane już w młodym wieku, przed eks-
pozycją na kleszcze chronią najlepiej. U lu-
dzi narażonych na ekspozycję zastosowanie
trzech dawek w odstępach 3-4 tygodni po-
wodowało silny wzrost poziomu przeciw-
ciał ochronnych (18, 19).

Na rynku dostępne są preparaty zawiera-

jące całe komórki bakteryjne oraz prepara-
ty zawierające rekombinanty białka OspA
Borrelia burgdorferi. Po podaniu jednych,
jak i drugich dochodzi do indukcji prze-
ciwciał ochronnych skierowanych głów-
nie przeciwko białku Osp A, Osp B i innym
białkom niesklasyfi kowanym. W praktyce
powstałe przeciwciała przeciwko białku
OspA po dostaniu się do organizmu że-
rującego kleszcza hamują namnażanie się
borreli i zapobiegają zasiedlaniu gruczołów
ślinowych przez te bakterie, jednak nie li-
kwidują ich w całości, a tylko zmniejszają
ich liczebność. Powoduje to, że nie docho-
dzi do przejścia krętków do organizmu psa.
Tej sytuacji nie obserwuje się w przypadku
szczepienia psów już zakażonych. Szcze-
pienie także nie usuwa zarazka z zakażo-
nego organizmu i nie eliminuje objawów
klinicznych choroby (20, 21).

Mimo wielu pozytywnych aspek-

tów szczepienia ochronnego przeciwko

background image

CHOROBY ZAKAŹNE

WETERYNARIA W PRAKTYCE

56

www.weterynaria.elamed.pl

STYCZEŃ-LUTY • 1-2/2011

zakażeniu Borrelia burgdorferi należy wspo-
mnieć także o możliwych niekorzystnych
następstwach, gdyż po wykonanym szcze-
pieniu przeciwciała poszczepienne utrzy-
mują się nawet przez kilka lat, co uniemoż-
liwia wykorzystanie badań serologicznych
w ocenie stopnia zakażenia Borrelia burg-
dorferi
u psów. Ponadto poziom ochronny
uzależniony jest od wysokości miana prze-
ciwciał poszczepiennych, które nie utrzy-
mują się długo na poziomie ochronnym.
Stąd ważne jest regularne doszczepianie
zwierząt. Z kolei indukowane po szcze-
pieniu białko Osp A jest antygenowo róż-
ne u poszczególnych gatunków Borrelia
burgdorferi
, tak więc indukowane przeciw-
ciała reagujące dodatnio w badaniach se-
rologicznych nie muszą zapewnić pełnej
ochrony przed zakażeniem. Tak więc nie-
wrażliwość krzyżowa na zakażenie gatun-
ków blisko spokrewnionych ze sobą jest
ograniczona. Nie wykazano także odpor-
nościowych reakcji krzyżowych po zakaże-
niu Borrelia burgdorferi sensu lato (22).

T

ĘŻEC

PSÓW

Rozważając podjęcie profi laktyki swoistej
przeciwtężcowej, należy z jednej strony
uwzględnić, iż w weterynarii jest ona ogra-
niczona przez rynek producentów prepa-
ratów weterynaryjnych. Z drugiej strony
objawy choroby związane są z działaniem
neurotoksyny produkowanej przez formy
wegetatywne przekształcone z form prze-
trwalnikowych. Także objawy chorobo-
we u psów są sporadyczne, gdyż są one
600 razy mniej wrażliwe (koty 7200 razy)
na działanie toksyny niż konie.

Zatem u tych gatunków nie poleca się

podejmowania profi laktyki przeciwtężco-
wej, a także szczepień poekspozycyjnych
i przypominających. Zwykle wystarczy
przestrzeganie podstawowych zasad an-
tyseptyki rany i zastosowanie właściwej
chemioterapii.

Nieco odmienną od wymienionych me-

tod postępowania jest ochrona przed za-
kaźnym zapaleniem tchawicy i oskrzeli,
potocznie zwanym kaszlem kennelowym
lub psiarnianym. Ochrona przed zaka-
żeniem odnosi się, mimo polietiologicz-
nego charakteru zakażenia, do ochrony
przed zakażeniem Bordetella bronchiseptica,
wirusem parainfl uenzy i adenowirusem
psim typu II. Zwykle podjęcie szczepienia
ma na celu ochronę zwierząt wrażliwych,
szczególnie młodych, przed wprowadze-
niem do środowiska, w którym endemicz-
nie występują zachorowania górnych dróg
oddechowych.

Do ochrony przed zakażeniem mamy

do wyboru szczepionki zawierające żywy
antygen Bordetella bronchiseptica oraz wi-
rus parainfl uenzy lub inaktywowany an-
tygen Bordetella bronchiseptica w posta-

ci fragmentów ściany bakterii lub całych
komórek bakteryjnych. W odniesieniu
do tych ostatnich wiek, w którym podda-
jemy szczepieniu zwierzęta, to 6.-8. tydzień
życia z powtórzeniem po 3-4 tygodniach.
Czas utrzymywania się niewrażliwości
na zakażenie to około 6 miesięcy, choć za-
leca się powtórzenie szczepienia na 1 ty-
dzień przed planowaną ekspozycją na za-
każenie. Nieco inna przesłanka ma miejsce
w odniesieniu do szczepionek żywych,
gdzie możliwe jest ich stosowanie na błonę
śluzową jamy nosowej już od 3. tygodnia
życia z powtórzeniem po 2-3 tygodniach,
choć producenci preparatu rekomendu-
ją, iż jednokrotne podanie preparatu jest
wystarczające, ponieważ uzyskanie sku-
tecznej ochrony przeciwko kaszlowi ken-
nelowemu zapewnia uzyskanie wysokiej
odporności miejscowej. Dzięki temu chro-
nią one przed zakażeniem i hamują równo-
cześnie wystąpienie choroby, a dodatkowo
tak podany antygen nie interferuje z prze-
ciwciałami matczynymi (23). Zastosowanie
takich preparatów ma szczególne znacze-
nie, kiedy szybkość uzyskania odporności
jest bardzo istotna, co ma miejsce przed
grupowym szkoleniem czy wystawą lub
przed pobytem psa w hotelu.

W schroniskach dla zwierząt psy nale-

ży szczepić zaraz po przybyciu i do czasu
uzyskania odporności powinny być one
izolowane od pozostałych już zaszczepio-
nych zwierząt. Wynika z tego, że szybkość
uzyskania odporności w bardzo wielu sytu-
acjach jest bardzo istotną cechą szczepion-
ki przeciwko zakaźnemu zapaleniu tchawi-
cy i oskrzeli.

Piśmiennictwo
1. Rampazzo A., Appino S., Pregel P.: Prevalence

of Chlamydophila felis and feline herpesvirus
1 in cats with conjunctivitis in Northern Italy
. „J. Vet.
Intern. Med.” 2003, 17:799-807.

2. Sykes J.E., Anderson G.A., Studdert V.P.,

Browning G.F.: Prevalence of feline Chlamydia
psittaci and feline herpesvirus 1 in cats with upper
respiratory disease as determined by duplex polyme-
rase chain reaction.
„J. Vet. Intern. Med.”, 1999,
13:153-162.

3. Sykes J.E., Studdert V.P., Anderson G.: Com-

parison of Chlamydia psittaci from cats with upper
respiratory tract disease by polymerase chain reaction
of the ompA gene.
„Vet. Rec.”, 1997, 140:310-
313.

4. Tim Gruffyd-Jones: Chlamydophila felis infection:

ABCD guidelines on prevention and management.
„Journal of Feline Medicine and Surgery”, 2009,
11: 605-609.

5. Bergman J.G.H.E., Vernooij J., Zegers E.M.:

Prevalence of antibodies against Bordetella bronchi-
septica in cats with a history of respiratory disease
.
„Vet Q”, 1997, 19 (Suppl 1):S50.

6. Binns S.H., Dawson S., Speakman A.J.:

Prevalence and risk factors for feline Bordetella
bronchiseptica infection.
„Vet. Rec.”, 1999,
144:575-580.

7. Hoskins J., Richards J., Rayne E.M.: Roundtable

discussion: feline Bordetella bronchiseptica, part 1.
„Feline Pract.”, 1999, 27:10-12.

8. Coutts A.J., Dawson S., Binns S.: Studies

on natural transmission of Bordetella bronchiseptica
in cats.
„Vet. Microbiol.”, 1996, 48:19-27.

9. Binns S.H., Dawson S., Speakman A.J.:

Prevalence and risk factors for feline Bordetella
bronchiseptica infection.
„Vet. Rec.”, 1999,
144:575-580.

10. Williams J., Laris R., Gray A.W.: Studies of the

effi cacy of a novel intranasal vaccine against feline
bordetellosis.
„Vet. Rec.”, 2002, 150:439-442.

11. Egberin H.: Bordetella bronchiseptica infections

in cats: ABCD guidelines on prevention and mana-
gement
. „Journal of Feline Med. and Surgery”,
2009, 11: 610-614.

12. Hodge L.M., Simecka J.W.: Role of upper and

lower respiratory tract immunity in resistance
to Mycoplasma respiratory disease
. „J. Infect. Dis.”,
2002, 186:290-294.

13. Myburgh J.G., Posnett S.J., Lawrence J.V.: Sero-

logical survey for canine leptospirosis in the Pretoria
area.
„J. S. Afr. Vet. Assoc.”, 1993, 64:37-38.

14. Thomas R.E., Evans L.B.: The distribution of lep-

tospirosis in the German shepherd dog population
of the United States.
„J. Am. Vet.Med. Assoc.”,
1967, 150:33-36.

15. Bradley K.K.: Leptospirosis. „J. Okla. State. Med.

Assoc.”, 1999, 92:114-115.

16. Klaasen H.L., Molkenboer M.J., Vrijen-

hock M.O.: Duration of immunity in dogs vaccina-
ted against leptospirosis with a bivalent inactivated
vaccine
. „Vet Microbiol.”, 2003, 95:121-132.

17. Śmielewska-Łoś E., Rypuła K., Płoneczka K.:

Leptospiroza jako potencjalna przyczyna niewy-
dolności nerek u psów.
„Magazyn Wet.”, 2002,
1, 19-21.

18. Sigal L.H., Zahradink J.M., Lavin P.: A vaccine

consisting of recombinant Borrelia burgdorferi outer
surface protein to prevent Lyme disease
. „N. Eng.
J. Med.”, 1998, 339:216-222.

19. Steere A.C., Sikand V.K., Meurice F.: Vacci-

nation against Lyme disease with recombinant
Borrelia burgdorferi outer surface lipoprotein
A with adjuvant
. „N. Eng. J. Med.”, 1998,
339:209-215.

20. De Silva A.M., Fish D., Burkot T.R.: OspA anti-

bodies inhibit the acquisition of Borrelia burgdorferi
by Ixodes ticks.
„Infect. Immun.”, 1997, 65:3146-
3150.

21. DeSilva A.M., Telford S.R., Brunet L.R.: Borrelia

burgdorferi OspA is an arthropod-specifi c transmis-
sion-blocking Lyme disease vaccine
. „J. Exp. Med.”,
1996, 183:271-275.

22. Barthold S.W.: Specifi city of infection-induced

immunity among Borrelia burgdorferi sensu lato
species.
„Infect. Immun.”, 1999, 67:36-42.

23. Datz C.: Bordetella infections in dogs and cats:

treatment and prevention. „Compend. Contin.
Educ. Pract. Vet.”, 2003, 25, 902-914.

dr hab. n. wet. Krzysztof Rypuła

Zakład Chorób Zakaźnych

i Administracji Weterynaryjnej

Wydziału Medycyny Weterynaryjnej

Uniwersytetu Przyrodniczego

we Wrocławiu

50-366 Wrocław, pl. Grunwaldzki 45


Document Outline


Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
technik artykul 2011 01 31484
technik artykul 2011 01 31499
technik artykul 2011 01 31495
weterynaria artykul 2010 01 28062
technik artykul 2011 01 31483
technik artykul 2011 01 31493
weterynaria artykul 2011 03 31763
weterynaria artykul 2004 01 11806
technik artykul 2011 01 31490
technik artykul 2011 01 31491
technik artykul 2011 01 31476
technik artykul 2011 01 31479
technik artykul 2011 01 31494
technik artykul 2011 01 31496
weterynaria artykul 2010 01 28060
technik artykul 2011 01 31482
technik artykul 2011 01 31500
technik artykul 2011 01 31486

więcej podobnych podstron