Krzepnięcie krwi
Jego istotą jest zamiana rozpuszczalnego białka osocza- fibrynogenu- w nierozpuszczalny włóknik (fibrynę)
Bierze w nim udział co najmniej 14 czynników krzepnięcia, a 12 z nich oznaczono cyframi
Wyróżnia się czynniki osoczowe (zespołu protrombiny, wrażliwe na trombinę i czynniki kontaktu) oraz czynnik tkankowy (tkankowa tromboplastyna)
Czynniki krzepnięcia krwi
Czynnik | Synonimy |
---|---|
I | Fibrynogen |
II | Protrombina |
III | Czynnik tkankowy (tromboplastyna tkankowa) |
IV | Wapń (Ca+2) |
V | Proakceleryna, Ac- globulina, czynnik chwiejny |
VI | Akceleryna |
VII | Prokonwertyna |
VIII | Globulina przeciwhemofilowa A |
IX | Czynnik Christmasa (czynnik przeciwhemofilowy B) |
X | Czynnik Stuarta |
XI | PTA |
XII | Czynnik Hagemana (kontaktu) |
XIII | Czynnik stabilizujący skrzep (FSF), (Fibrynaza) |
Proces krzepnięcia
Proces krzepnięcia odbywa się na powierzchni płytek, które przylegając do miejsca uszkodzenia ściany naczynia (adhezja) i łącząc się ze sobą w większe zlepy (agregacja) tworzą czop hemostatyczny w hemostazie pierwotnej
Układ wewnątrzpochodny- kontakt cz. XII z uszkodzoną ścianą naczyń aktywuje cz. XI , IX, płytki krwi i VIII, a te cz. X
Układ zewnątrzpochodny- tkankowa tromboplastyna i cz. VII aktywują cz. X
Część wspólna- aktywacja cz. X przekształca protrombinę w trombinę co powoduje przejście fibrynogenu w fibrynę, a pod wpływem jonów Ca i cz. XIII powstanie fibryny stabilizowanej
Fazy hemostazy
Naczyniowa (2-5 s) | Skurcz w odpowiedzi na tromboksan A2, serotoninę płytek krwi |
---|---|
Płytkowa (3-10s) | Przyleganie do uszkodzonej tkanki, agregacja i uwalnianie tromboksanu A2 i serotoniny |
Osoczowa czynników krzepnięcia (1-3 min) | Aktywacja kaskady krzepnięcia , tworzenie skrzepu włóknika |
Fibrynoliza
Trawienie fibryny o fibrynogenu przez plazminę (enzym proteolityczny osocza) doprowadza do powstania produktów degradacji fibrynogenu i fibryny (FDP), które zwiększają chemotaksję komórek żernych
Postępowanie z pacjentem
Wywiad i badanie kliniczne pacjenta
Ocenić lokalizację i wielkość wykwitów na skórze, błonach śluzowych, jamach ciała
Wykonać próbę kliniczną oceniającą czas krwawienia z błon śluzowych – 5 mm długości i 1 mm głębokości – pies 2-4 min, kot-1,5-2,5 min)
Wykonać badania laboratoryjne
Badania laboratoryjne
Liczba i morfologia płytek krwi (trombocytów)- norma psa: 200-500x109/l, kota: 300-700x109/l
Orientacyjna ocena ilości trombocytów w rozmazie krwi – norma psa: 12-15 w polu widzenia przy powiększeniu 1000x, kota; 10-12, co daje przelicznik: 1 trombocyt to 12000-15000 płytek/mm³
Czas krzepnięcia krwi (ACT-test)- czas upływający od momentu pobrania 2 ml krwi do chwili jej skrzepnięcia w szklanej probówce w temp 37 st C . Probówkę trzymamy w dłoni i przechylamy co 30 sek. Prawidłowy czas pojawienia się skrzepu- 60-105 sek. Test ocenia nieprawidłowości układu wewnątrzpochodnego lub części wspólnej- końcowej
Koagulopatie (osoczowe zaburzenia krzepnięcia, osoczowe skazy krwotoczne)
Nabyte:
Niedobór wit.K lub antagonizm wit.K
Zespół rozproszonego wykrzepiania wewnątrznaczyniowego (DIC)
Choroby wątroby, mocznica, zespół nerczycowy
Wrodzone:
Koagulopatie dziedziczne (Hemofilia A, choroba von Willebranda)
Koagulopatie wrodzone
Czynnik | Choroba | Rasa predysponowana |
---|---|---|
VII | Hemofilia A | Beagle malamuty |
VIII | Choroba von Willebrandta | ON pointer bokser golden retriver setter irlandzki doberman terrier szkocki wilczarz irlandzki |
IX | Hemofilia B | Spaniele Terriery |
X | Niedobór czynnika X | Cocker spaniel Terrier jack russel |
I | Dyshipofibrynogemia | Chart rosyjski |
Wrodzone koagulopatie
To skazy krwotoczne spowodowane niedoborem lub nieprawidłowością budowy czynnika krzepnięcia objawiające się samoistnymi krwawieniami z dziąseł, do stawów i jam ciała, po iniekcjach i zabiegach chirurgicznych
Leczenie
Nie usuwać/ opróżniać krwiaków
Doraźnie podawać świeżo mrożone osocze lub krew psią/kocią (10-15 ml/kg m.c)
Skazy krwotoczne płytkowe
Małopłytkowość (trombocytopenia) i wielopłytkowość (trombocytoza)
Zaburzenia czynnościowe płytek (trombocytopatie) polekowe (kwas acetylosalicylowy, dekstran, acepromazyna, niestrydowe przeciwzapalne)
Trombocytopenia
Jest to spadek liczby płytek krwi (trombocytów Tc) we krwi < 100 000 /μl wskazująca na przyspieszone niszczenie, wzmożone zużycie lub zaburzenia powstawania płytek
Wartości prawidłowe: 150 000-450 000 /μl
Samoistne krwawienia występują u psów < 40 000 /μl, a kotów< 100 000 /μl
Objawy kliniczne
Krwawienia samoistne (wybroczyny podspojówkowe, punkcikowe małżowiny usznej)
Niedokrwistość
Przewlekły przebieg
Leczenie
Leczyć pierwotną przyczynę
Objawowo:
podawać świeżą krew lub osocze,
glikokortykosteroidy (prednison 1 mg/kgm.c 2x dziennie per os lub dexametazon 0,3-0,6 mg/kgmc/dzień per os lub i.v) ponieważ zmniejszają aktywność żerną makrofagów, wytwarzanie przeciwciał i przepuszczalność naczyń
Wazopatie (naczyniowe skazy krwotoczne)
Naczyniakowatość krwotoczna
Hemosyderoza płuc samoistna
Zaburzenia czynnościowe tkanki łącznej
TRANSFUZJE KRWI U PSÓW I KOTÓW
Wskazania do transfuzji:
Nagła utrata krwi
Ostra niewydolność hemolityczna
Niedokrwistość z hematokrytem o wartości 12-15%
Wrodzone lub nabyte koagulopatie
Trombocytopenia/patia
Leukopenia
Obniżenie ilości białek we krwi ( wystarczy przetoczenie osocza)
Parametry brane pod uwagę przy przetaczaniu
Nagłe zmniejszenie objętości krwi krążącej ( poniżej 30%)
Obniżenie hematokrytu poniżej 20% ( u psa), lub 15% ( u kota)
Nieustający krwotok lub hemoliza
Brak reakcji na leczenie konwencjonalnymi metodami
Bladość błon śluzowych
Wydłużenie czasu wypełniania naczyń włosowatych ( powyżej 2 sek)
Tachykardia i przyspieszony oddech
Oceniając zasadność transfuzji należy wziąć pod uwagę także i inne czynniki
Stopień niedokrwistości i tempo utraty krwi
Czynność szpiku kostnego, oznaczoną według liczby retikulocytów w rozmazie krwi obwodowej lub szpiku kostnego
Przyczynę niedokrwistości, która może znacznie wpłynąć na rokowanie
Wybór dawcy i metoda pobrania krwi
Psy:
Masa ciała powyżej 25 kg
Wiek od 2-8 lat
Spokojny temperament
Hematokryt powyżej 40%
Odbyte regularne szczepienia
Brak objawów choroby w badaniu klinicznym
( wskazane jest wykonanie badania hematologicznego i biochemicznego krwi)
Oznaczona grupa krwi, wykonane badanie koagulogramu
Krew pobiera się aseptycznie, najczęściej z żyły jarzmowej. Miejsce pobrania wygolić i odkazić.
Objętość pobranej krwi nie powinna być wyższa niż 20 ml/kg, a odstępy między pobraniami powinny przekraczać 3 tygodnie.
Stały dawca powinien otrzymywać żelazo w dawce 10 mg/kg codziennie
Krew pobieramy do plastikowych woreczków z fosforocytrynianem dekstrozy i adeniną w stosunku 14 ml środka przeciwkrzepliwego na 100 ml krwi
Przechowywanie 35 dni w temp. 4-6 stopni.
Koty:
Masa ciała między 5-7 kg
Wiek 2-8 lat
Przebyta kastracja, spokojny temperament
Hematokryt powyżej 35%
Odbyte regularne szczepienia
Brak klinicznych objawów choroby i zakażeń Felv, Fiv, Fip, Hemobartonella felis
Oznaczona grupa krwi
Krew pobieramy w dawce 11 ml/kg, odstępy powyżej 3 tyg.
Zgodność między dawcą a biorcą
Przeprowadzić próby krzyżowe!!!
Podstawowa próba krzyżowa:
Erytrocyty dawcy ( trzykrotnie przemyte i rozcieńczone 3-5% NaCl) umieszcza się na szkiełku podstawowym lub w probówce z jedną lub dwiema kroplami heparynizowanego osocza lub surowicy biorcy.
Wystąpienie reakcji aglutynacji lub hemolizy wskazyje na niezgodność grup między dawcą a biorcą!!!
Druga próba krzyżowa:
Jej wykonanie jest identyczne z podstawową próbą krzyżową, ale do badania stosuje się erytrocyty biorcy i surowicę lub heparynizowane osocze dawcy.
U psów można próby przeprowadzić w trzech temperaturach 4, 25 i 37 stopni. Wskazane jest w temperaturze 25 stopni!!!
Wykonanie transfuzji
Krew podajemy do żyły jarzmowej przy użyciu wenflonu lub kateteru, krew należy uprzednio ogrzać do temperatury 37 stopni.
Krew podajemy przez pierwsze 30 minut w dawce 0,25 ml/kg , a następnie 5 ml/kg/godzinę
U zwierząt z hipowolemią możemy podawać do 20 ml/kg/godzinę
Przy niewydolności krążenia 0,5 – 1,0 ml/kg/godzinę
Dawka w ml krwi
K x MC x ( pożądany Ht – Ht biorcy)
Ht dawcy
K – stała wyznaczająca objętość krwi u danego gatunku
Pies – 88, kot – 66
MC – masa ciała biorcy w kg
Reakcje po przetoczeniu: hemoglobinemia, hemoglobinuria, leukocytoza z przesunięciem obrazu w lewo i erytrofagocytoza.
Objawy kliniczne – niepokój, spadek ciśnienia krwi, ślinotok, wymioty, nietrzymanie kału i moczu, wzrost temperatury ciała. Reakcje późne – bilirubinuria, bilirubinemia, spadek Ht.
Próba krzyżowa- psy
Konieczna przy drugiej transfuzji w czasie >4 dni od pierwszej
Metodyka: krew dawcy i biorcy pobieramy do probówek z EDTA. Po wirowaniu 1000 obr/min 1 min oddzielamy osocze, a krwinki 3x płuczemy PWE i rozcieńczmy do 5% erytrocytów. Dla dawcy przygotowujemy 3 probówki i opisujemy: duża, mała i kontrola. Do każdej probówki dodajemy 50 μl (2 krople) osocza i 25 μl (1 kropla) roztworu erytrocytów według schematu
Schemat próby krzyżowej
Duża- osocze biorcy+ erytrocyty dawcy
Mała- osocze dawcy+ erytrocyty biorcy
Kontrola- osocze+ erytrocyty biorcy
Probówki wymieszać i inkubować 37 st.C 15 min. wirować 1000 obr/min 15 sek. Sprawdzić stopień hemolizy. Ocenić aglutynację na szkiełku podstawowym makroskopowo i mikroskopowo.
Transfuzja- biorcy psy
Podaż 2 ml/kg pełnej krwi (1 ml/kg koncentratu erytrocytów) powoduje wzrost Ht o 1%
Wyliczenie objętości krwi pełnej
Objętość krwi (ml)= żądany Ht (%)x masa biorcy (kg)x2
Transfuzja osocza 10 ml/kg
Szybkość transfuzji 1-3 ml w 5 min
Normowolemiczne zwierzę 10-20 ml/kg/godz
Przy niewydolności 5 ml/kg/godz
Transfuzja- biorcy koty
Normowolemiczny 15 ml/kg m.c/godz
Przy niewydolności 5 ml/kg/godz
Trwałość preparatów przeznaczonych do transfuzji
Świeża krew- 1 dzień +4 st.C
Krew z cytrynianem sodu i stabilizatorem CPD przechowywana 3-4 tyg +4 st.C
Koncentrat erytrocytów 3-5 tyg +4 st C
Osocze świeżo mrożone 1 rok -20 st.C
Osocze zamrożone 4 lata -20st.C
Osocze bogate w płytki 1 dzień
Reakcje na transfuzje
Nieimmunologiczne: wymioty, duszność, hemoliza, gorączka, bakteriemia, niedobór wapnia, hipotermia
Immunologiczne: pokrzywka, obrzęk, gorączka, wymioty, tachycardia, hemoglobinemia, hemogloibinuria, anafilaksja, spadek Ht, żółtaczka
Podać glikokortykosterydy 2 mg/kg/i.v i adrenalinę 1:10000 0,5-1,5 ml/psa i.v