CHOROBY ZAKAŹNE NOWORODKÓW I MŁODYCH ZWIERZĄT
(wykłady)
Choroby wirusowe
Choroba wymiotna i wyniszczająca
Drgawki zakaźne
Enterowirusowe zapalenie mózgu i rdzenia świń
Wścieklizna
Choroba Aujeszkyego
Choroby bakteryjne
Listerioza
Tężec
Botulizm
Inne choroby zakaźne przebiegające z objawami nerwowymi
Zapalenie mózgu i mięśnia sercowego
Zespół zapalenia mięśnia sercowego prosiąt ssących
Klasyczny pomór świń
Afrykański pomór świń
Choroba pęcherzykowa świń
Streptokokoza
Zakaźne zapalenie błon surowiczych i stawów
Choroba obrzękowa
Leptospiroza świń
Salmoneloza świń
Ropnie podskórne
„Egzotyczne” choroby zakaźne przebiegające z objawami nerwowymi
Rubulawiroza świń
Zakażenie wirusem Menangle
Zakażenie wirusem Nipah
Japońskie zapalenie mózgu
CHOROBA WYMIOTNA I WYNISZCZAJĄCA
(ang. Vomiting and wasting disease)
Choroba
zakaźna i zaraźliwa, wirusowa, prosiąt ssących
wymioty i wyniszczenie
zapalenie mózgu i rdzenia kręgowego
objawy kliniczne – rzadko
niskie straty ekonomiczne
Występowanie
1958 r. – pierwsze przypadki w Kanadzie, potem w innych krajach
izolacja wirusa z mózgu prosiąt ssących
z encephalomyelitis
nazwa wirusa – HEV – Hemagglutinating Encephalomyelitis Virus
1969 r. – Anglia – izolacja identycznego wirusa od prosiąt ssących wykazujących brak apetytu, apatię, wymioty, zahamowanie wzrostu, bez encephalomyelitis
nazwa choroby – „choroba wymiotna i wyniszczająca”
1971 r. – klasyfikacja HEV do Coronaviridae
1976 r. – eksperymentalne wywołanie obu form przy użyciu izolatów terenowych
szerokie rozprzestrzenienie HEV w świecie
lata 70. XX w. – przypadki choroby w zachodniej części Polski
Etiologia
HEV – Coronaviridae (1 serotyp)
>90% homologia nukleotydów z koronawirusami bydła i ludzi
wrażliwy na temp. 56oC (30 min.)
oporny na temp. 4oC (7 dni)
CPE w PK i innych HK świń
Źródła i drogi zakażenia
świnie wrażliwe na zakażenie naturalne
zakażenia eksperymentalne – myszy i szczury (encephalitis)
większość zakażeń subkliniczna (lochy, tuczniki, warchlaki – źródła zakażenia)
różny przebieg choroby w stadach i miotach
zjadliwość szczepu HEV
odporność siarowa i wiek świń (odporność pozakaźna)
zakażenie przez układ oddechowy
szerzenie przez wydzieliny z nosa
Patogeneza
Pierwotna replikacja – nabłonek - jamy nosowe, migdałki, tchawica, płuca, jelita cienkie
wydalanie HEV przez 8-10 dpz z wydzielinami z nosa
Przejście do OUN – 3 drogi:
Nabłonek nosa i migdałki nerw trójdzielny zwój nerwu trójdzielnego jądro czuciowe nerwu trójdzielnego w pniu mózgu
Nerw błędny zwój n. błędnego jądro czuciowe n. błędnego w pniu mózgu
Sploty jelitowe zwoje czuciowe rdzeń kręgowy
IF – HEV w aksonach i perykarionie neuronów rdzenia kręgowego, rdzenia przedłużonego, pnia mózgu, czasami móżdżku i mózgu
zaburzenia perystaltyki żołądka i jelit
zakażenie splotów śródściennych żołądka powodujące długie zaleganie treści
wymioty
rezultat replikacji HEV w błędnym zwoju czuciowym lub przekazywania impulsów do ośrodka wymiotnego przez zakażone neurony
z różnych miejsc organizmu
wyniszczenie
Objawy kliniczne
najczęściej prosięta w wieku 2 dni - 4 tyg.
niekiedy starsze (30-50 dni) – sporadyczne wymioty, apatia, objawy nerwowe
2 syndromy kliniczne
Postać wymiotna i wyniszczająca
przebieg przewlekły
inkubacja 4-7 dni
nudności i wymioty (ssanie szybka rezygnacja odejście od lochy wymioty)
apatia, bladość, zbijanie w grupy, wygięcie kręgosłupa
zwyżka wcc (1-2 dni)
zgrzytanie zębami, nieudane próby picia (porażenie gardła)
dalsze wymioty, zaparcie, spadek kondycji
niekiedy rozdęcie brzucha
odwodnienie, duszność, sinica, śpiączka, śmierć do 100% (kilka dni – kilka tyg.)
ozdrowieńcy – zahamowanie rozwoju (prosięta starsze)
Postać nerwowa (encephalomyelitis)
przebieg ostry
często rozpoczyna się objawami postaci wymiotnej
i wyniszczającej
krótkotrwałe (1-2 dniowe) wymioty
niekiedy kichanie, kaszel
szybka utrata m.c. i nastroszenie szczeciny
po 1-3 dniach różne objawy nerwowe
rozległe drgawki mięśniowe, przeczulica
cofanie i pozycja siedzącego psa (porażenie zadu)
ruchy wiosłowe, opisthotonus, oczopląs, ślepota
duszność, śpiączka, śmierć po 3-5 dniach (do 100%)
prosięta starsze – przebieg łagodniejszy, ale śmiertelność do 100%
przebieg w stadzie – 2-3 tyg.
nabywanie przez lochy odporności
prosięta – odporność bierna
po zakażeniu HEV – przeciwciała SN i HI w surowicy
Zmiany anatomopatologiczne
brak zmian swoistych
wyniszczenie, rozdęcie brzucha
żołądek wypełniony ściętym mlekiem i gazem
histopatologia
nieropne encephalomyelitis
zwyrodnienie nabłonka i nacieki – jamy nosowe, migdałki, oskrzela, płuca
zwyrodnienie zwojów nerwowych w ścianie żołądka
Rozpoznanie
wiek, objawy
badania wirusologiczne
izolacja HEV z migdałków, mózgu i płuc (PK)
CPE – syncytia
potwierdzenie – HA i HAD
badania serologiczne
SN, HI, test redukcji łysinek
pary surowic – interpretacja trudna
Różnicowo
Enterowirusowe zapalenie mózgu i rdzenia
objawy bardziej nasilone u starszych świń
Choroba Aujeszkyego
ronienia, objawy nerwowe i oddechowe
Zapobieganie i zwalczanie
w większości stad – endemie
zakażenie subkliniczne dróg oddechowych
zakażenie loch przed I porodem
prosięta – odporność bierna (3-4-8 tyg.)
lochy wrażliwe
brak odporności siarowej – objawy u prosiąt
2-3 tyg. po wybuchu choroby – nabycie przez lochy odporności
po wybuchu choroby – naturalne zakażenie loch ciężarnych – kontakt ze zwierzętami chorymi
fermy nowo tworzone (zapobieganie wprowadzaniu HEV z zewnątrz)
wprowadzanie loch remontowych – aklimatyzacja
surowica hyperimmunizowana bezpośrednio po urodzeniu – wyniki wątpliwe
objawowo prosiętom płyny wieloelektrolitowe, preparaty chroniące przed śmiercią głodową (Energy-milk) i właściwe warunki termiczne
brak skutecznych szczepionek
DRGAWKI ZAKAŹNE
syn. wrodzona drżączka
(łac. myoclonia infectiosa, s. congenita , ang. Congenital tremors – CT)
Choroba
złożona etiologia
zakaźna (u prosiąt noworodków)
dziedziczna (u niektórych ras świń)
intoksykacja
hypo- lub demielinizacja w mózgu i rdzeniu kręgowym
uogólnione skurcze kloniczne mięśni szkieletowych
przypadki ciężkie - śmierć
przypadki lekkie - zdrowienie po jednym do kilku dni
Występowanie
wiele krajów świata (Europa, Ameryka Płn. i Płd., Australia, Nowa Zelandia)
niektóre rasy świń (Landrace)
Holandia – 0,2% (1992)
Niemcy – 0,23% - 0,01%
Etiologia
6 kategorii CT - podział w oparciu o etiologię, zmiany patologiczne i rozprzestrzenienie w stadzie
→ typy główne A i B – różnice na podstawie zmian morfologicznych w układzie nerwowym
→ typy A → A I – A V i B
Typ A I – wirusowa
terenowe lub szczepionkowe szczepy wirusa kpś
Typ A II – wirusowa
wirus nieznany – czynnik CT
USA (1994) - zakażenie loch płynem z HK nerek prosiąt chorych
podejrzenie PCV2
Typ A III – genetyczna
gen recesywny związany z płcią
prosięta płci męskiej rasy Landrace
Typ A IV – genetyczna
gen recesywny
prosięta obu płci rasy Saddleback
Typ A V – chemiczna
zatrucie trichlorfonem
Typ B – nieznana (wieloczynnikowa)
wirus chA
wirus japońskiego zapalenia mózgu
zaburzenia pourodzeniowe (hypoglikemia, hipoksja, anoksja)
Źródła i drogi zakażenia
zwierzęta chore i zakażone (wirusy)
prosięta loszki – nosiciele – wirus (+), przeciwciała (-) → późniejsze zakażanie własnych płodów
nosiciele genów recesywnych
drogi zakażenia:
pionowa – lochy → prosięta
pozioma – lochy ⇔ knury
Patogeneza
hamowanie mielinizacji włókien w mózgu, móżdżku i rdzeniu kręgowym
hypomielinizacja lub demielinizacja
hypoplazja móżdżku
zmniejszenie zawartości lipidów i syntezy cerebrozydów w rdzeniu kręgowym
z wiekiem natężenie objawów ulega zmniejszeniu
Objawy kliniczne
objawy w kilka godzin po urodzeniu
drgawki kloniczne
słabe lub silne (całe ciało)
głównie mięśnie szyi i kończyn
zmniejszenie lub zanik – odpoczynek, sen
zwiększenie – wybudzenie, hałas, zimno
utrudnione chodzenie i ssanie
CT może towarzyszyć niedowład zadu i splayleg
Śmierć – głód, hipotermia, przygniecenie przez lochę
stopniowe zmniejszanie objawów do 4 tyg. życia
w miotach loszek więcej CT – niższa odporność
czasami drgawki podobne do CT u świń 3-6 mies.
drgawki różnego natężenia okolic głowy i barków
związane z szybkim wzrostem i skłonnością do syndromu PSE
zachorowalność - w zależności od przyczyny
większość prosiąt w wielu miotach przez 2-3 mies.
sporadycznie kilka prosiąt w kilku miotach
śmiertelność 0 – 25 – 100%
A I , III, IV, V, B – wysoka
A II - niska
Zmiany anatomopatologiczne
brak zmian makroskopowych
hypoplazja móżdżku (kpś)
histopatologia
demielinizacja włókien nerwowych w OUN i rdzeniu kręgowym
Rozpoznanie
wiek, objawy
histopatologia – myelina
badania wirusologiczne i serologiczne
wirus CT (PCV2, PCV1)
CSFV, ADV, JEV
badania genetyczne – geny recesywne
badania toksykologiczne – trichlorfon
Leczenie
brak, spokój, promienniki
kontrola ssania, ułatwienie poruszania się
Zapobieganie i zwalczanie
zależy od przyczyny
programy kontroli (zwalczania) chorób wirusowych
aklimatyzacja loszek nowo wprowadzanych (ekspozycja na prosięta chore)
eliminacja z hodowli prosiąt z miotów z CT
eliminacja knurów - nosicieli genów recesywnych
trichlorfon (Neguvon) – ostrożność (lochy ciężarne)
dobre warunki utrzymania i żywienia loch ciężarnych – zaburzenia pourodzeniowe prosiąt
DZIEDZICZNA DRŻĄCZKA ŚWIŃ
Choroba
opisana w 1995 r.
Syndrom Campusa (CPS – Campus syndrome)
występuje u młodych świń
w Polsce nie opisano
Etiologia
podłoże genetyczne (dziedziczne)
lokalizacja hipotetycznego genu CPS w chromosomie 7
Patogeneza
na razie nieznana mutacja przyczynowa choroby
w trakcie drżenia mięśni
wzrasta poziom kwasu mlekowego
wzrasta podatność na stres – podłoże inne niż w PSS (mutacja genu ryanodiny RYR1)
Objawy kliniczne
objawy w 1 - 9 tyg. życia
nasilające się z czasem drżenie mięśni
drżenia w pozycji stojącej lub w ruchu, zanik w spoczynku
atak drżączki
wzrost wcc (40-41oC)
wzrost podatności na stres
część świń osiąga ubojową m.c.
większość pada przed osiągnięciem dojrzałości płciowej
Zmiany anatomopatologiczne
nie opisano
Rozpoznanie
pełna krew do badań genetycznych
Zwalczanie
eliminacja knurów - nosicieli genu CPS
ZAPALENIE MÓZGU I MIĘŚNIA SERCOWEGO
(łac. Encephalomyocarditis)
Choroba (EMC)
ostra, wirusowa
wrażliwe różne gatunki zwierząt, w tym świnie
2 postacie choroby u świń:
ostre myocarditis – nagłe upadki młodych świń
(często towarzyszy encephalitis)
zaburzenia rozrodu u loch (lata 80. ub. wieku)
Występowanie
w populacji świń na całym świecie
1958 r. – Panama – I izolacja EMCV od świń
wybuchy EMC w różnych krajach –
Australia (1970), N. Zelandia (1977), RPA (1981), Kuba (1983), Kanada (1991)
Europa – od 1986 r.
Włochy (1988), Grecja (1990), Szwajcaria (1992), Cypr (1996), Belgia (1999)
Polska – brak (brak badań)
zakażenia – często, objawy – rzadko
tereny endemiczne – zakażenia bezobjawowe
Etiologia
EMCV – Picornaviridae (Cardiovirus), RNA
różnice między szczepami od świń i gryzoni
zróżnicowana patogenność szczepów
inaktywacja w 60oC (30 min.) – niektóre szczepy termooporne
zdolność hemaglutynacji
Źródła i drogi zakażenia
naturalny rezerwuar – gryzonie (szczury i myszy)
EMCV u > 30 innych gatunków
ssaki – małpy, słonie, lwy, wiewiórki, szopy, świnie
ptaki, owady
gryzonie roznoszą EMCV w fermie i między fermami
siewstwo z kałem, moczem
zanieczyszczenie paszy, wody
zakażenie
per os – kontakt, zanieczyszczona pasza, woda lub zwłoki
transplacentarne
szczyt zachorowań – jesień
Patogeneza
postać i przebieg choroby zależą od patogenności
i pochodzenia szczepu EMCV, dawki, wieku i ciąży
zakażenie per os
6 godz. pz – migdałki, jelita (płytki Peyera) – namnażanie
do krwi i narządów (wiremia)
30 godz. pz – mięsień sercowy (upadki)
3 dpz – wątroba, nerki, śledziona, płuca, układ rozrodczy
zakażenie transplacentarne
niedokładnie poznane - śmierć płodów > 2 tyg. pz
zakażenie loch we wczesnej ciąży – wpływ na płody niejasny
zakażenie loch w połowie i późnej ciąży – defekty rozwojowe i zamieranie, mumifikacje, ronienia, przedwczesne porody
w płodach – wirus i przeciwciała
różne natężenie zmian w płodach – słabe do rozległych
Objawy kliniczne
zależne od zjadliwości szczepu i wieku świń
ciężkie u prosiąt do odsadzenia (80-100% śmiertelności)
świnie starsze – często postać subkliniczna, ale upadki nawet u świń dorosłych (10-20%)
prosięta (przebieg ostry)
nagłe upadki – zatrzymanie akcji serca (śmierć sercowa)
silna sinica skóry
brak apetytu, apatia, wymioty, duszność, biegunka
drżenie mięśni, zaburzenia równowagi
zaburzenia ze strony OUN
lochy
brak objawów lub zaburzenia rozrodu
przedwczesne porody (107-111 dzień ciąży)
poronienia, mumifikacje
rodzenie martwych lub słabych prosiąt (zaburzenia OUN)
zaburzenia w rozrodzie i straty prosiąt – przez 2-3- mies. po zakażeniu stada
świnie starsze (60-70 kg)
silna sinica, duszność, kwiczenie, padnięcia często późnym popołudniem (największa aktywność)
Zmiany anatomopatologiczne
wybroczyny pod nasierdziem
często hydropericardium, hydrothorax i obrzęk płuc
serce – powiększone, wiotkie, blade
szaro-białe ogniska martwicowe w myocardium
nieropne zapalenie mózgu
śródmiąższowe zapalenie płuc (płucne warianty EMCV)
płody, obrzękłe z wybroczynami, zmumifikowane
Histopatologia
ogniska martwicy w myocardium (IHC-dodatnie)
nieropne encephalitis (często u płodów)
Rozpoznanie
objawy
nagłe upadki w wieku 3 dni - 5 tyg.
upadki świń 60-70 kg m.c. – sinica, duszność
zaburzenia rozrodu u loch
różnicowo – PPV, PRRS, chA, leptospiroza
sekcja i histopatologia
nieropne myocarditis i encephalitis (często równocześnie)
badania wirusologiczne
izolacja EMCV w HK (BHK-21) z mięśnia sercowego i wysięku z klatki piersiowej
identyfikacja – SN, IF
RT-PCR
badania serologiczne
SN i ELISA (najczęściej), HI, IFA, LAT, AGID
przeciwciała utrzymują się od 7 dpz do 6-12 mies.
Zapobieganie i zwalczanie
brak leczenia
unikanie sytuacji stresowych (zmniejszenie śmiertelności w ostrej fazie choroby)
optymalne warunki środowiskowe
deratyzacja, zwłaszcza na terenach endemicznych
dezynfekcja pomieszczeń i wody (chlor, jodofory)
nie sprowadzanie świń ze stad zakażonych
immunoprofilaktyka swoista
szczepionka inaktywowana dostępna w USA - skuteczna
lochy niskoprośne – kał z kojców, w których stwierdzono padnięcia prosiąt na EMC
zoonoza – zagrożenie minimalne (ksenotransplantacje)
ZESPÓŁ ZAPALENIA MIĘŚNIA SERCOWEGO PROSIĄT SSĄCYCH
(Porcine Myocarditis Syndrome – PMCS)
Choroba
wirusowa
poronienia i rodzenie martwych prosiąt
częsta mumifikacja płodów
nagły wzrost śmiertelności prosiąt w okresie przedodsadzeniowym
brak zagrożenia dla człowieka
Występowanie
czerwiec 2003 r. – Australia
Etiologia
wirus z rodzaju Pestivirus (Flaviviridae)
Bungowannah virus (2007 r.)
niskie pokrewieństwo z CSFV, BVDV 1 i 2, BDV
spełnia wymogi triady Henlego-Kocha
wymaga dalszych badań
Patogeneza
prawdopodobnie lochy – bezobjawowi nosiciele
lochy ciężarne
powinowactwo do tkanek płodów
głównie zapalenie i dysfunkcja mięśnia sercowego
Objawy kliniczne
wzrost odsetka
poronionych płodów
martwych płodów, często zmumifikowanych
nagłej śmierci prosiąt w okresie przedodsadzeniowym
w stadzie łączne straty mogą przekroczyć 50% ogółu prosiąt
Zmiany anatomopatologiczne
obrzęk tkanki podskórnej (jelly piglet)
obszary bladości w mięśniu sercowym
powiększenie i przekrwienie wątroby
płyn wysiękowy w jamach piersiowej i brzusznej oraz worku osierdziowym
wzrost poziomu IgG w płynach ustrojowych martwo urodzonych prosiąt zakażenie wewnątrzmaciczne
Histopatologia
powiększenie i wieloogniskowe nieropne zapalenie mięśnia sercowego z ogniskami martwicy
niekiedy śródzrazikowe zapalenie płuc, zapalenie mózgu, wątroby i węzłów chłonnych
Rozpoznanie
objawy kliniczne i zmiany sekcyjne
materiał do badań – płody, padłe prosięta, mięsień sercowy, surowica spulowana od prosiąt z miotu
próba biologiczna
zakażenie wrażliwych prosiąt – osesków
badania wirusologiczne
zakażenie HK
SN z surowicą prosiąt – ozdrowieńców
badania molekularne
RT-PCR, sekwencjonowanie RNA
Rozpoznanie różnicowe
EMC, kpś, cha, leptospiroza, zatrucie mikotoksynami
Zapobieganie i zwalczanie
brak danych na temat zwalczania PMCS
zakaz wprowadzania do ferm wolnych świń z ferm zapowietrzonych PMCS
w Australii podlega obowiązkowi zgłaszania