Obrazek 0007

Składa się nań także wiele innych czynników. Trudno jest zatem podać proste reguły, które należy stosować aby uzyskać prawidłową sterylizację. Spowodowane jest to tym, że lampy ulegają stopniowemu zużyciu i nie jest możliwe precyzyjne określanie wypromieniowywanej dawki opierając się jedynie na podanej przez producenta mocy lampy. Najwłaściwszym jest przestrzeganie wytycznych producenta lamp, który podaje czasy naświetlania w zależności od odległości do powierzchni naświetlanej.

OSTBZElENIA

! Podczas pracy z lampami UV należy zwracać baczną uwagę na i osłonę oczu. Nawet kilkusekundowe naświetlenie powoduje bardzo bolesne zapalenie spojówek. Może też prowadzić do uszkodzenia wzroku.

Jest to rodzaj promieniowania, KTÓRE NIE OPALA a powoduje jedynie uszkodzenie naskórka.

fćWICZENIE 3

! TEMAT: WPŁYW PROMIENIOWANIA JV NA MIKROORGANIZMY

Cel: Zapoznanie studentów ze skutecznością działania

promieniowania ultrafioletowego na różne drobnoustroje

Materiały:

1. Probówka z 24h hodowlą Escherichia coli na bulionie odżywczym Z. Probówka z 24h hodowlą Bacillus subtilis na bulionie odżywczym 3. Probówka z 24 godzinną hodowlą Candlda tropicalis I    4. Hodowla Aspergillus fumigatus

5.    Płytki 7 agarem odżywczym (AO)

6.    Jałowe pipety 1 ml

7.    Jałowe bagietki (głaszczki)

8.    Dermatograf

jWykonanie:

1.    Przenieść po 0,1 ml hodowli bulionowej Escherichia coli na 4 płytki z AO

2.    Rozprowadzić materiał po powierzchni podłoża jałową bagietką.

3.    Przenieść po 0,1 ml hodowli bulionowej Bacillus subtilis na 4 płytki z AO

;    4.    Przenieść po 0,1 ml hodowli płynnej Candida tropicalis na 4 płytki z podłożem.

Sabouraud

5. Rozprowadzić materiał po powierzchni podłoża jałową bagietką i    6.    Oznakować płytki w sposób pozwalający na identyfikację posianego szczepu

^:    7.    Pobrać ezą zarodniki z hodowli Aspergillus niger i rozprowadzić je po;

;    powierzchni 4 płytek z podłożem stałym Sabouraud

i    8.    Płytki ustawić na stole w odległości ~ 1m od źródła promieni UV.    ;i

9.    Zsunąć wieczka płytek w sposób pozwalający na ekspozycję, na bezpośrednie działanie promieni UV, części materiału na płytce

10.    Płytki z posianymi szczepami doświadczalnymi eksponować na działanie promieni UV przez 1, 5, 10 i 15 min

11.    Po każdym interwale czasowym ekspozycji płytki oznaczyć dodatkowo, odpowiednio 1,5,10,15, co odpowiada czasowi ekspozycji każdej z płytek

12.    Płytki inkubować w 37°C/24h, hodowle z A niger inkubować przez 3-5 dni

13.    Określić skuteczność bakteriobójczą różnych czasów ekspozycji na działanie promieni UV

•    brak wzrostu na eksponowanej części płytki = proces skuteczny = ( + )

» wzrost na eksponowanej części płytki = proces nieskuteczny = (*)

•    wzrost mniej intensywny na eksponowanej części płytki w porównaniu z częścią osłoniętą = redukcja liczby skuteczność częściowa = (+/-)

Rys. 4

SCHEMAT WYKONANIA ĆWICZENIA 3

Barittas subtilislB.suDtiiis] Ssutlitis tropi rstis W. tropu ainUsp ery i Hus merU. o/gerl