95

95



2.    Dwie osoby badają wpływ stężenia enzymu na szybkość reakcji i wyznaczają stałą K(4godz.>

3.    Dwie osoby wyznaczają stałąKm i każda z nich oznacza aktywność enzymu (4 godz.)

Odczynniki

1.    Wyciąg enzymu: do 150 mg kiełków pszenicy dodać 100 ml wody i homogenizować przez 5 min (przy wydawaniu prób do kolbek miarowych odpowiednio zwiększyć ilość kiełków). Homogenat przesączyć przez sączek z waty i przechowywać w chłodziarce.

2.    0,0075-molowy 4-nitrofenylofosforan disodowy.

3.    0,1-molowy bufor octanowy o pH 5,3 (przygotowanie p. str. 133).

4.    10-proc. w^lan sodowy.

Szkło i inne pomoce

Do wykonania części a ćwiczenia w' układzie 2 lub 3 na 1 studenta przypada: 16 probówek, 1 pipeta chemiczna na 1 ml, 1 pipeta chemiczna na 5 ml, po 1 pipecie serologicznej na 1,2 i 5 ml, 1 zlewka na 400 ml (lub łaźnia wodna), termometr.

Uwaga! Wyciąg enzymu dla studentów' wykonujących część a ćwiczenia w układach 1 lub 2 przygotowany jest w' butelkach na stole. Natomiast studenci wykonujący tę część ćwiczenia w układzie 3 otrzymują wyciąg enzymu wr kolbie miarowej na 25 ml, którą należy uzupełnić wodą do kreski i dokładnie wymieszać.

Wykonanie

~ 1. Wyznaczanie stałej Michaełisa-Menten. Do 6 ponumerowanych probówek odmierzyć kolejno 0,1; 0,2; 0,4; 0,6; 0,8 i 1,0 ml 4-nitrofenylofosforsnu (2 ), dodać po 1,5 ml buforu octanowego (3) i uzupełnić wrodą do objętości 4 ml, a do próby kontrolnej odmierzyć 1.5 ml buforu (3 ) i 2^ ml wody.

Wszystkie probówki wstawić do łaźni wodnej o temp. 38°C i po ok. 5 min dodać kolejno do każdej probówki po 1 ml wyciągu enzymu, wymieszać, zanotować czas, wstawić do łaźni wodnej na 10 min.

Po 10 min przerwać działanie enzymu, dodając kolejno do probówek po 5 ml węglanu sodowego (4 ), wymieszać i oznaczyć absorbancję w' fotometrze przy 420 nm, ustawionym na zero wobec próby kontrolnej.

2. Badanie wpływu stężenia enzymu. Do 5 ponumerowanych probówek odmierzyć kolejno: 0,5; 1,0; 1,5; 2,0 i 2,5 ml wyciągu enzymu (i ), dodać po 1 ml buforu octanowego (3) i uzupełnić wodą do objętości 3,5 ml, a do próby kontrolnej odmierzyć 1 ml buforu (3)12,5 ml wody.

Probówki wstawić do łaźni wodnej o temp. 38°C i po ok. 5 min dodać kolejno do wszystkich po 1 ml 4-nitrofenylofosforanu (2 ), wymieszać i wstawić do łaźni wodnej dokładnie na 10 min. Czynność tę najlepiej jest wykonywać w odstępach czasu, np. co 0,5 min, notując czas do każdej probówki. Dalej postępować tak jak w punkcie 1.


Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
DSC00036 (39) Wpływ stężenia substratu na szybkość reakcji enzymatycznej    _
Wpływ stężenia katalizatora na szybkośćinwersji sacharozyCel: Wyznaczenie zależności stałej
WYKŁAD 2 enzymy cz 1 (30) KINETYKA REAKCJI ENZYMATYCZNEJ 0 Wpływ stężenia substratu na szybkość r
DSC00038 (38) Wpływ pH i temperatury na szybkość reakcji enzymatycznej
kolo 2 4) Wpływ stężenia subsiratu na prędkość reakcji enzymatycznej “j" 6) Inhibitory niekompe
122 Enzymy4.4.5. Wpływ inhibitorów enzymów na szybkość reakcji enzymatycznej . Wyróżnia się zasadnic
Wpływ stężenia enzymu i substratu na szybkość reakcji enzymatycznej. W stałej temperaturze i pH. prz
Wpływ stężenia enzymu i czasu na aktywność enzymów Zależność szybkości reakcji od stężenia enzymu
IMAG0331 (4) Czynniki wpływające na szybkość reakcji enzymatycznej S Stężenie enzymu - szybkość reak
Wpływ stężenia substratu na aktywność enzymów Szybkość reakcji enzymatycznej (V) rośnie wraz ze
CCI20130725086 Rys. 6.2. Wpływ stężenia substratu na właściwą szybkość wzrostu bowiem zjawiska inhi
egz fiz3 5. Napisz wyrażenie na szybkolć reakcji odwracalnej A <-* 2B wiedząc, że stężenie począt
Imię i nazwisko: 1.    Wyjaśnij, dlaczego pH środowiska ma wpływ na szybkość reakcji
IMAG0335 (4) 3. Wpływ pH na szybkość reakcji enzymatycznej Każdy enzym ma optymalne pH. w którym wyk
IMAG0336 (5) 4. Wpływ temperatury na szybkość reakcji enzymatycznej Reguła Van t HofFa - podwyższeni

więcej podobnych podstron