Małgorzata Ligęza
ŁAŃCUCHOWA REAKCJA
POLIMERYZACJI- PCR
PCR (Polymerase Chain
Reaction)
• Metoda amplifikacji-powielania
łańcuchów DNA w warunkach
laboratoryjnych, polegająca na
sekwencji wielokrotnego
podgrzewania i oziębiania próbki.
• Technika została wynaleziona w 1983
roku przez Kary'ego Mullisa, za co
otrzymał w roku 1993 Nagrodę
Nobla.
Składniki mieszaniny
reakcyjnej
• matrycowy DNA
• trifosforany deoksyrybonukleozydów
• startery (primery)
krótkie (najczęściej ok. 20 nukleotydów) fragmenty
DNA
komplementarne do fragmentów matrycy, znajdujących
się na obu końcach interesującego nas genu
• Termostabilna polimeraza DNA
polimeraza Taq wyizolowana z bakterii Thermus
aquaticus
polimeraza Pfu z archeowców Pyrococcus furiosis
• Reakcję PCR przeprowadza się w bloku grzejnym,
który jest kontrolowany przez termocykler. Produkt
reakcji ocenia się przez elektroforezę i barwienie
bromkiem etydyny.
3 etapy reakcji PCR:
• Denaturacja dwuniciowego DNA
15-30s, 90-95
○
C
• Przyłączenie starterów
30-60s, 50-60
○
C
• Elongacja
różny czas trwania, 72
○
C
Wymienione etapy tworzą 1 cykl.
Etap I-
Denaturacja dwuniciowego DNA
• W wysokiej temperaturze pękają
wiązania wodorowe i podwójna
helisa DNA rozdziela się na dwa
pojedyncze łańcuchy.
• W celu uzyskania tego efektu
podnosi się temperaturę mieszaniny
reakcyjnej do wymaganych 95° na 15
sekund.
Etap II-
Przyłaczanie starterów
• Tworzą się odcinki dwuniciowe, składających
się z przygotowanych starterów
(oligonukleotydów hybrydyzujących z końcem
3` każdej nici,komplementarnych do sekwencji
DNA oskrzydlających gen mający ulec
namnożeniu) z matrycową cząsteczką DNA.
• Etap ten zachodzi w temperaturze niższej,
ściśle określonej dla danej pary starterów
(pomiędzy 45-60 °C).
Etap III-
Elongacja
• Właściwa synteza DNA i tym samym
amplifikacja pożądanego genu.
• Podwyższenie temperatury do około 72 °C
powoduje rozpoczęcie się syntezy nici
komplementarnej do matrycy.
• Pod koniec pierwszego cyklu otrzymujemy
dwie kopie DNA zawierające region, który
chcieliśmy zwielokrotnić.
• Proces powtarza się, zwykle
przeprowadza się od 20 do 40 cykli
• Ilość kopii DNA wzrasta wykładniczo
• Wydajność reakcji nie jest 100%-owa
(niespecyficzne produkty)
• Niespecyficzne produkty są związane
z powstawaniem lokalnych struktur
drugorzędowych lub niespecyficznym
łączeniu się starterów z matrycą
Eliminacja niespecyficznych
produktów
• Optymalizacja warunków
• Dodanie DMSO (dimetylosulfotlenek)
lub glicerolu
• Zastosowanie polimerazy TopoTaq
• Zastosowanie polimerazy typu hot
start
Odmiany reakcji PCR-
RT PCR Reverse Transcriptase PCR
• Synteza DNA na
matrycy
dojrzałego mRNA
przy pomocy
odwrotnej
transkryptazy.
• Dzięki temu
kopiowane są
tylko egzony.
Odwrotna transkryptaza – struktura
III-rzędowa
Odmiany reakcji PCR-
Real Time PCR
• Wprowadzenie do
środowiska reakcji
znakowanych
fluorescencyjnie
sond w celu
określenia ilości
matrycy użytej w
reakcji oraz
śledzenia ilości
powstającego
produktu.
Odmiany reakcji PCR-
Multiplex PCR
• Zastosowanie starterów dla różnych
genów lub odmiennych fragmentów
tego samego genu. Pozwala na
jednoczesne wykrywanie DNA kilku
patogenów. Szczególnie przydatny w
genetyce sądowej i kryminalistyce.
Zalety metody PCR
• Sekwencja badanego genu nie musi być
znana – wystarczy znajomość sekwencji
oskrzydlających
• Startery nie muszą być komplementarne do
matrycy w 100%
• Specyficzność – dobór odpowiednich
starterów pozwala na amplifikację
odpowiedniego odcinka
• Czułość – możliwe wykrycie nawet
pojedynczej cząsteczki DNA
Cechy badania:
• Analiza liczby kopii
wirusa/bakterii
• Możliwość śledzenia
postępów leczenia
Co można wykryć:
Wirus opryszczki
Entero- i parvowirusy
Cytomegalia
HIV
Badania PCR w medycynie
Badanie ilościowe Badanie
jakościowe
Cechy badania:
•Identyfikacja materiału
genetycznego wirusa/bakterii
a nie przeciwciał
•Identyfikacja możliwa na
wczesnym etapie zakażenia
Co można wykryć:
Wirus różyczki
Wirus hepatitis B i C
Bakteria Salmonella
Bakteria Ureaplasma
Inne zastosowania PCR
• Ustalanie ojcostwa
• Kryminalistyka
• Ustalanie nosicielstwa zmutowanego
genu
• Antropologia
• Diagnostyka preimplantacyjna
Bibliografia:
• Podstawy genetyki dla studentów i
lekarzy, Gerard Drewa, Tomasz
Ferenc, Elsevier Urban & Partner,
Wrocław 2003, wyd. 2
• PCR wczoraj i dziś, czyli "stara
śpiewka" w nowej aranżacji, Wojciech
Bobela
• Źródła internetowe