Analiza żywności mikrobiologicznej
Cele analizy
Ustalenie poziomu ogólnej liczby drobnoustrojów saprofitycznych
Określenie stanu sanitarnego żywności za pomocą wskaźników bakterii
Badania obecności bakterii chorobotwórczych w celu oznaczenia, czy badana żywność nie zagraża zdrowiu konsumenta
Analiza:
Pobieranie próby i opis cech zewnętrznych oraz organoleptycznych
Przygotowanie próby do analizy
Preparat mikroskopowy
Pobieranie próby:
Pobrana próba powinna być reprezentatywna dla całej partii badanego materiału
Próba średnia – np.: różne opakowania jednostkowe
Pobrana w warunkach aseptycznych do jałowego naczynia
Materiał sypki 100g, płynny 10cm3 (małe opakowania), 500g/500 cm3 (duże opakowania)
Cechy sensoryczne – wygląd, zapach, konsystencja
Sprawdzenie stanu i szczelności opakowania danego produktu (w chłodniach mogą być przechowywane do 4h, konserwy, produkty suche mogą być przez trochę przechowywane w temperaturze pokojowej.)
Właściwe pobranie próby warunkuje brak zakażenia
Przygotowanie
Rozcieńczenie (przygotowanie do posiewu (10 bądź 50g w 10-krotnie większej ilości rozpuszczalnika))
Rozdrabnianie
Płyn fizjologiczny, 0.1% wodą pektonową, 2% roztwór cytrynianu sodu (pierwsze rozcieńczenie – służy do dalszych rozcieńczeń)
Warunki aseptyczne
Ocena w preparatyce mikroskopowej
- preparaty odciskowe, barwne (ryby, wędliny)
- ilość mikroorganizmów żywych i martwych
Oznaczanie ogólnej liczby mikroorganizmów saprofitycznych
Metoda płytkowa (wykorzystanie szalek Petriego z odpowiednim podłożem)
Badania przetrwalników (10 min ogrzewanie w 80 ) – unieszkodliwienie wegetatywnych mikroorganizmów
Oznaczanie drożdży i pleśni – odżywki selekcyjnie
Po 2 powtórzenia z każdego rozcieńczenia
Oznaczenie konkretnych grup coli:
- pożywki selektywne i różnicujące zawierające laktozę:
Podłożą BLB – żółć i zieleń brylantowa lub siarczan sodowo-laurynowy
Podłoże Eijkmanta – indykatory pH (purpura bromokrezolowa)
- potwierdzenie obecności bakterii pochodzenia kałowego:
Posiew do pożywki BLB (żółć i zieleń brylantowa + laktoza), inkubacja 24/48h, temperatura 44 (metoda fermentacyjno-probówkowa)
Posiew do wody peptonowej, inkubacja 24-48h w 44 dla stwierdzenia zdolności bakterii do wytwarzania indolu z tryptofanu.
Oznaczanie gronkowców chorobotwórczych
Selektywne pożywki stałe Baird-Barkera (telluryn potasu redukuje się do telluru – czarny metaliczny połysk + lecytyna ( z żółtka jajka) hydrolizowana przez lipazy z wytworzeniem kwasów tłuszczowych, które dają strefę zmienionego podłoża)
Aktywność katalazy – hodowla na agarze odżywczym 37 18-24h, hodowle zalewa się H2O2 i wydzielają się pęcherzyki gazu
Aktywność koagulaty – inkubacja hodowli z udziałem liofilizowanej krwi królika. Pod jej wpływem powstają skrzepy – wynik pozytywny.
Szybszy test
Cząsteczki lateksu powleczone przeciwciałami otrzymanymi z surowicy krwi królika immobilizowanego.
Enterotoksyna – antygen
Test ten nie wymaga izolacji czystych kultur
Wykrywanie beztlenowych laseczek przetrwalnikujących redukujących siarczany IV
Szok termiczny – 10 min - 80
Hodowla w warunkach beztlenowych namnażającej, nieselektywnej pożywce wrzoska (zmętnienie, pęcherzyki gazu – wynik pozytywny, który świadczy o obecności względnych beztlenowców
Barwienie gram – laseczkami +
Wykluczenie względnych beztlenowców – hodowla na podłożu stałym w warunkach tlenowych
Podłoże selekcyjne Wilsona-Bloura – siarczan IV sodu, związki żelaza FE3+ (jeśli wzrost mikroorganizmów występuje – wytrąca się siarczan żelaza – czarne zabarwienie)
Clostridium perfingens
- TSC-agar (podłoże tryptozo-siarczanowe z cykloseryną)
- Fluorocult TSC (C-cykloseryna (inhibitor wzrostu mikroflory towarzyszącej), związek fluorogenny – MIF – fosforan 4-metyloumbeliferylu)
- Clostridium botulinum – badania na zwierzętach
Wykrywanie bakterii z rodzaju Salmonella
- Salmonella bardzo inwazyjna
a. przed namnażaniem
- warunki selekcyjne
- próbka (25g lub 25cm3) + 225cm3 zbuforowanej wody peptonowej, inkubacja 16-20h w 37
b. namnażanie selektywne ( równolegle w 2 pożywkach)
1. pożywka Rappaport VAsilia dis – 1cm3 hodowli + podłoże, inkubacja w 42 stopniach, 18-24h
2. pożywka z kwaśnym selenianem sodowym, 16cm3 hodowli + pożywka, inkubacja w 37 stopniach, 18-24h
c. posiew na pożywkach różnicujących
Składniki selektywne (zieleń brylantowa, sole kwasów żółciowych) + laktoza, barwniki (czerwień fenylowa, błękit tymidylanowy) – pozwalają zobaczyć produkty fermentacji laktozowej
Inkubacja w 37 stopniach 24-48h
Salmonella nie fermentuje laktozy
d. identyfikacja
Selekcyjna : 5 charakterystycznych kolonii z każdej płytki
Przesiew na agar odżywczy
Inkubacja 37 stopni 24-48h
e. badania biochemiczne i serologiczne
gotowe testy
System salmosys
- podłoże nieselektywne
- 7-8h inkubacji w buforze
- następnie wrzuca się tabletki, które przez 30 min zmieniają warunki na selektywne (mikroorganizmy powoli adoptują się do nowych warunków)
System API
- deaminaza fenyloalaninowa
- beta-galaktozydazy
- beta-ksylozydazy
- specyficzna ligaza
- po 2h mamy odpowiedź
Salmonella Rapid Test – w 2 probówkach z podziałkami, z 2 podłożami: górnej, selekcyjnej i dolnej różnicującej. Salmonella „idzie” do góry, bo poczebuje tlenu – zmiana zabarwienia na seledynowy wykazuje obecność bakterii
Pożywka MSRVM (pożywka stała, zmodyfikowany agar, wykorzystuje salmonellę. Łatwość izolacji czystej hodowli.)
Mikrobiologiczna kontrola wody
Drobnoustroje chorobotwórcze rozmnażają się w H2O
Wraz z upływem czasu maleje ich liczba
Trudne jest badanie H2O w kierunku wszystkich organizmów chorobotwórczych
Najczęstsze zanieczyszczenia – fekalne
Mikroflora jelita człowieka i zwierząt – E. coli (107-108) paciorkowce kałowe, Enterococcus faecalis, beztlenowe przetrwalnikujące Clostridium perfingens
Wskaźnikami zanieczyszczeń feralnych powinny być bakterie spełniające następujące kryteria:
Muszą stale występować w kale ludzi i zwierząt w liczbie znacznie przewyższającej liczbę organizmów chorobotwórczych
Ich liczba powinna być proporcjonalna do stopnia zanieczyszczenia wody
Nie mogą występować w czystej wodzie
Nie mogą się namnażać w środowisku wodnym
W wodzie powinny przeżywać dłużej niż patogeny chorobotwórcze
Nie powinny zmieniać sowich cech fizjologicznych pod wpływem środowiska zewnętrznego
Ich wrażliwość na środki stosowane do dezynfekcji wody powinna być obliczona do wrażliwości patogenów
Metody ich wykrywania powinny być proste i szybkie
Badanie E. coli jako wskaźnika sanitarnego wody:
Przetrwalność E. coli zależy od temperatury 4 stopnie – 48 dni, 20 stopni – 20 dni
Gr. Coli, E. klebsiella, Enterobacter, Citrobacter
Ocean stanu sanitarnego wody : bakterie grupy coli, bakterie grupy coli typu fekalnego, coli termotolerancyjne
Problem zróżnicowania E. coli pochodzenia ludzkiego i zwierzęcego – różne techniki – elektroforeza, pulsacyjna analiza DNA, analiza wrażliwości na antybiotyki
Duże skupiska ludzi – stąd zanieczyszczenia
Miano coli – najmniejsza ilość wody wyrażona w cm3, w której stwierdza się obecność pałeczek z grupy coli.
1 pałeczka w 100cm3 = miano 100
1 pałeczka w 10cm3 = miano 10
Im woda jest bardziej zanieczyszczona, tym miano jest mniejsze
Inne organizmy wskaźnikowe:
Paciorkowce kołowe – Enterococcus fekalia, E. feacium
W wodzie giną szybciej niż E. coli, ale później niż patogeny (świeże zanieczyszczenia)
Większa odporność na zanieczyszczenia, wysoka temperatura, środki dezynfekcyjne
Nie mają zdolności do wytwarzania katalazy
Zdolność wzrostu w temperaturze 45 stopni w obecności soli, żółci oraz azydku sodu
Zanieczyszczenia rolnicze
Clostridium perfingens
Obecność w wodzie tych mikroorganizmów świadczy o starym zanieczyszczeniu (mogą przetrwać w wodzie długi czas)
Odporne przetrwalniki
Dobry wskaźnik skuteczności procesów uzdatniania wody (sedymentacja, filtracja)
Badania wód studziennych
Zdolność redukcji siarczanów do siarczków
Odporne na środki dezynfekcyjne
Pseudomonas aeruginosa
Duża odporność na czynniki dezynfekcyjne i antybiotyki
Wytwarzają barwnik pyocygamine (zielona)
Ostatnio ich liczba wzrosła, bo używamy zbyt dużo antybiotyków
Alternatywne mikroorganizmy – określają jednoznaczne pochodzenia zanieczyszczeń
Rinodococcus copraphilus
Streptococcus
Bifadobacter
Fagi
Ocena wody
Woda użytkowa (każda powinna podlegać kontroli)
Woda produkcyjna
Woda do mycia (zmiękczenie)
Woda do użytku technicznego
Wymagania
Woda w instalacjach zakładów spożywczych (klimatyzacja) – potencjalne zagrożenie bakteriologiczne
Legionella pneumofila – wdychanie aerozoli
Badanie wody na 2 razy w roku (ISO 11731)
- myjnie samochodowe, szpital
- taru, gdzie tworzy się aerozol
- zapobieganie: zmiękczanie wody, niedoprowadzenie do korozji
c. pobieranie wody
Sterylnie zamknięte naczynie z szeroką szyjką
Próba wody nie więcej niż ¾ objętości naczynia
Woda chlorowana +0.1cm3 , 10% tiosiarczanu sodowego na 100cm3 wody – wiąże resztki chloru które mogłyby przereagować
Dezynfekcja wylotu kranu, rury
Opis próby (miejsce, godzina, źródło
Przechowywanie: do 2h w temperaturze otoczenia, do 6h w zamrażarce
d. ogólna liczba drobnoustrojów
Metoda płytkowa
Podłoża – agar odżywczy, agar z glukozą, z ekstraktem drożdżowym, bulionem z żelatyną
Inkubacja równoległa w 20 (organizmy wodne) i 37
Jej wzrost może świadczyć o dopływie substancji odżywczych
Oznaczanie bakterii z grupy coli
Metoda filtrów membranowych (przesączanie pod ciśnieniem wodnym prze filtry) – badanie wody o małej zawartości mikroorganizmów
Fermentacyjna metoda próbkowa – podłoże LPB (laktoza, pepton, purpura bromokrezolowa, NaCl, fiolet zmienia się na żółty – duża zawartość mikroorganizmów
Identyfikacja grupy coli
Badania wstępne
Pożywka LPB, inkubacja w 37 stopniach przez 24-48h, fermentacja laktozy z wytworzeniem kwasu i gazu
Wynik pozytywny
Badania potwierdzające
Endoagar, inkubacja w 37 stopniach przez 24h, wykorzystanie aldehydu octowego (wynik pozytywny) e. coli rosną różowo lub metalicznie
Badania uzupełniające
Pożywka laktozowa lub EPB, inkubacja w 37 stopniach przez 24-48h, wtórna fermentacja laktozy, barwienie grama, oksydaza cytochromu
Identyfikacja E. coli typu fekalnego
Badania wstępne (tak jak wyżej)
Badania potwierdzające: 2 podłoża BLB i endoagar, inkubacja w 44 stopniach przez 18-48h, fermentacja laktozy z wytworzeniem kwasu i gazu
Badanie uzupełniające: sprawdzenie obecności acetylometylokarbinolu, wytwarzanie indolu, asymilacja podłoża Claria, inkubacja w 37 stopniach przez 24h
W nowoczesnych laboratoriach biochemicznych badanie wody jest uproszczone i składa się z następujących etapów:
Hodowla selektywna na podłożu z laktozy
Wysiew materiału biologicznego zakwalifikowanego jako próba dodatnia lub wątpliwie dodatnia na agar
Identyfikacja diagnostyczna API
Testy API (20E)
20 oznaczeń biochemicznych
- oksydaza cytochromowa
- redukcja azotanów do azotynów
- uwalnianie azotu z azotanów
W badaniach rutynowych wody w kierunku pałeczki E. coli można zwiększyć wiarygodność identyfikacji wykorzystując zdolność do wytwarzania enzymu beta-d-glukoronidazy
Nowa definicja bakterii gr. Coli:
- gr. Coli to bakterie fermentujące laktozę z wytworzeniem gazu
- bakteria E. coli wytwarza enzym beta-D-glukoronidaze oraz wytwarza indol z tryptofanu w temperaturze 44 stopniach.