Mechanizm zapobiegający skracaniu chromosomów
Chromosomy nie ulegają skracaniu dzięki syntezie sekwencji telomerowych. 5’ – C(1-8) T(0-1) A (0-4) – 3’
Większość telomerowego DNA ulega kopiowaniu w prawidłowym procesie replikacji. Jednakże w celu uzupełnienia braków stwarzanych przez proces replikacji, telomery są wydłużane w niezależnym procesie syntezy, katalizowanym przez enzym telomerazę.
Telomeraza – duży nukleoproteid zawierający białko (odwrotną transkryptazę) i krótką cząsteczkę RNA, której sekwencja w części jest komplementarna do powtarzających się sekwencji w telomerach. RNA działa jako matryca do syntezy powtórzeń tych sekwencji na wystającym końcu 3’, a synteza przebiega w powtarzających się cyklach wydłużania (polimeryzacji) i translokacji.
Sekwencje nukleotydowe powtarzających się odcinków telomerowego DNA
Nazwa gatunku | Sekwencje powtarzalnych odcinków DNA (5’ -> 3’) |
---|---|
Tetrahymena pyriformis | C(4) A(2) ... |
Saccharomyces cerevisiae | C(2-3) A(CA) (1-3) |
Arabidopsis thaliana | C(3) TA(3) |
Homo sapiens | C(3) TA(2) |
Starterem jest końcowa sekwencja telomeru pozostałego z poprzedniego cyklu replikacyjnego. Enzym dołącza się do końca chromosomu, wykorzystując końcową trójkę nukleotydów i dołącza kolejne nukleotydy aż do wypełnienia matrycy. Po odłączeniu telomerazy brakująca nić jest doreplikowywana w sposób semikonserwatywny.
Długość telomerów jest prawdopodobnie regulowana przez białka wiążące telomery DNA (TBP – telomere binding proteins). Aktywność telomerazy ulega represji, gdy odpowiednia ilość cząsteczek TBP przyłączy się do telomeru.
Wolny koniec telomeru, zawierający powtórzenia sekwencji guaninowych, ulega zwinięciu w strukturę „szpilki do włosów” przez wytworzenie nietypowych wiązań wodorowych między parami G-G.
Struktury są niedostępne dla nukleaz i stanowią zabezpieczenie końców chromosomów przed degradacją.
Uszkodzenia i naprawa DNA
Uszkodzenie DNA jest to zmiana jego prawidłowej budowy chemicznej lub struktury fizycznej. Może powstać w wyniku błędów w procesie replikacji, ale także na skutek działania czynników chemicznych lub fizycznych, powstających zarówno w wyniku przemian metabolicznych zachodzących w komórkach, jak i docierających z zewnątrz komórek.
Wszelkie zmiany strukturalne w DNA stanowią jedynie zmiany premutacyjne, które jeśli nie zostaną usunięte w procesach reperacji, mogą doprowadzić do zmian mutacyjnych po następnych cyklach replikacyjnych DNA.
Organizmy są genetycznie stabilne. Wynika to nie tylko z bardzo dokładnego mechanizmu replikacji, ale również z funkcjonowania mechanizmów korygujących pomyłki popełnione przez aparat replikacyjny oraz dokonujących naprawy przypadkowych uszkodzeń DNA.
Polimeraza DNA jest tak dokładna, że popełnia tylko jeden błąd na 107 nukleotydów poprawnie wprowadzonych podczas replikacji. Obok zdolności do katalizowania reakcji polimeryzacji enzym ten może dokonywać korekcji błędów – redagowanie.
Polimeraza DNA ma aktywność polimerazową w kierunku 5’ -> 3’ oraz aktywność nukleazową (tzn. zdolność do odcinania nukleotydu znajdującego się na końcu 3’ łańcucha; z polimerazą DNA związana jest egzonukleaza sprawdzająca) w kierunku 3’ -> 5’.
Aktywność egzonukleazowa 3’ -> 5’
Polimeraza DNA sprawdza wynik każdego połączenia nukleotydu przed przystąpieniem do następnego etapu polimeryzacji i usuwa niesparowane nukleotydy na końcu nowosyntetyzowanej nici.
Aktywność egzonukleazowa 5’ -> 3’
Polimeraza DNA może hydrolizować DNA od końca 5’ łańcucha. Cięcie może zachodzić na końcowym wiązaniu fosfodiestrowym lub na wiązaniu oddalonym o kilka reszt od końca 5’. Ta aktywność usuwa starterowy odcinek RNA podczas replikacji.
Naprawa źle dopasowanych par zasad w DNA (DNA mismatch repair)
Jest to system, którego zadaniem jest korekta pomyłek aparatu replikacyjnego. Koryguje 99% tych błędów, zwiększając dokładność dopasowania par zasad do jednej pomyłki na 109 nukleotydów poprawnie dopasowanych.
Systemy naprawy DNA
naprawa bezpośrednia (wypełnianie pęknięć i korygowanie niektórych rodzajów modyfikacji nukleotydów),
naprawa przez wycięcie zasady (BER, base excision repair),
naprawa przez wycięcie nukleotydu (NER, nucleotide excision repair),
naprawa rekombinacyjna
Etapy mechanizmu naprawy uszkodzonego DNA przez wycinanie
rozpoznanie i wycięcie uszkodzonego odcinka przy użyciu nukleaz, które zrywają wiązania kowalencyjne łączące zmienione nukleotydy z resztą łańcucha,
wypełnienie powstałej luki nukleotydowej przez polimerazę naprawczą DNA, która wiąże się z końcem 3’ przeciętego łańcucha i syntetyzuje kopię informacji zachowanej w łańcuchu nieuszkodzonym,
połączenie końców naprawionej nici za pomocą ligazy DNA.
Jeśli mechanizm naprawy DNA zawiedzie, powstają trwałe, dziedziczne zmiany w strukturze DNA – mutacje.
Mutacje powstają na skutek:
spontanicznych błędów w replikacji DNA,
działania mutagenów fizycznych lub chemicznych.
Rodzaje mutacji spontanicznych:
tranzycja – jedna puryna (lub pirymidyna) jest zastępowana przez inną,
transwersja – puryna zostaje zastąpiona pirymidyną lub odwrotnie,
insercja (addycja) – wstawienie jednego lub kilku nukleotydów,
delecja – wycięcie jednego lub kilku nukleotydów.
Efekt, jaki może wywołać mutacja punktowa, zmieniająca sekwencję kodonu:
zmiana synonimiczna, gdy nowy kodon odpowiada temu samemu aminokwasowi, co kodon nie zmutowany (mutacja cicha; najczęściej występuje w części niekodującej lub nieregulatorowej genu lub zachodzi w trzeciej pozycji kodonu, co w efekcie nie prowadzi do widocznych zmian fenotypowych),
zmiana niesynonimiczna (zmiana sensu), gdy mutacja zmieni kodon tak, że odpowiada on innemu aminokwasowi; może wpłynąć na aktywność biologiczną białka,
zmiana kodonu kodującego aminokwas w kodon terminacyjny (mutacja nonsens). W rezultacie powstaje skrócone białko; najczęściej białko to nie jest zdolne do pełnienia swej funkcji,
zmiana kodonu terminacyjnego na taki, który odpowiada jakiemuś aminokwasowi. Powoduje to ominięcie kodonu terminacyjnego i wydłużenie białka; może spowodować osłabienie jego aktywności.
Gorące miejsca w genomie (hot spots) – miejsca w genomie mutujące z częstością wielokrotnie wyższą niż pozostałe.
Mutacje mutatorowe – mutacje w genach, w których zmiany prowadzą w konsekwencji do zwiększenia częstotliwości zachodzenia mutacji spontanicznych.
Mutacja odpowiedzialna za anemię sierpowatą – zmiana jednego ze 146 aminokwasów. Hemoglobina S ma na powierzchni niepolarną resztę aminokwasową, co zmienia jej własności i prowadzi i prowadzi do niedokrwistości.
Mechanizm korekty źle sparowanych zasad w DNA
Sygnałem dla białek naprawianych jest przerwa w nowosyntetyzowanym łańcuchu DNA (na nici opóźnionej).
Insercje i delecje (mutacje zmiany fazy odczytu) są szczególnie częste, gdy matryca DNA zawiera krótkie, powtórzone sekwencje (np. w mikrosatelitach). Sekwencje powtórzone mogą wywołać poślizg replikacji, przy którym nić matrycowa i jej kopia przesuwają się względem siebie, przez co część matrycy jest powielana dwukrotnie lub opuszczana.
Przykłady ludzkich chorób powodowanych insercją:
choroba Huntingtona (gen Hdh) (CAG)10-15 -> (CAG)36-121
epilepsja miokloniczna z ruchami pląsawiczymi (gen B37) (CAG)7-25 -> (CAG)49-75
Mutageny wywołują mutacje trzema różnymi sposobami:
działają jako analogi zasad i są mylnie wykorzystywane jako substraty podczas syntezy DNA,
reagują bezpośrednio z DNA, wywołując zmiany strukturalne,
działają pośrednio na DNA, nie wywołują u niego zmian strukturalnych; powodują wytworzenie w komórce związków chemicznych o działaniu mutagennym.
Każda zasada azotowa nukleotydu może występować w postaci jednego z dwóch tautomerów, czyli izomerów strukturalnych pozostających w stanie równowagi dynamicznej. Np. tymina występuje w postaci dwóch tautomerów – formy ketonowej i enolowej, przy czym pojedyncze cząsteczki przechodzą niekiedy z jednej formy tautomerycznej w inną.
Analogi zasad to zasady purynowe i pirymidynowe na tyle podobne do normalnych, że są włączone do nukleotydów podczas ich syntezy w komórce. Np. analog tyminy, ale równowaga między dwoma tautomerami 5-bU (5-bromouracyl) jest bardziej przesunięta w stronę rzadszej formy enolowej i w kolejnej rundzie replikacji enol-5-bU tworzy parę z G zamiast z A – mutacja punktowa.
Bezpośrednie zmiany w DNA:
depurynacja,
deaminacja,
uszkodzenie oksydacyjne,
alkilacja,
interkalacja.
Depurynacja – zrywanie wiązania N-glikozydowego między N-9 zasady purynowej (A lub G) a C-1 deoksyrybozy -> utrata zasady purynowej z cząsteczki DNA.
Deaminacja – utrata grupy aminowej reszt A, C lub G, powodowana np. przez kwas azotawy,
adenina -> hipoksantyna (-C),
cytozyna -> uracyl (-A),
guanina -> ksantyna (blokuje replikację).